材料與方法
藥材來源:膜夾黃芪,購于內(nèi)蒙古。
試藥與試劑:黃芪甲苷對照品。
儀器與設(shè)備:ShimadzuLC-6A高效液相色譜儀,C-R4A數(shù)據(jù)處理機,DU-70分光光度計(Beckman公司)。
處方:北芪精口服液處方是由單味藥黃芪構(gòu)成,其中添加煉蜜(椴樹蜜)、純化水、乙醇、香精、檸檬酸鈉、山梨酸鈉等輔料制成。
提取工藝試驗設(shè)計:根據(jù)黃芪甲苷的理化性質(zhì)及中藥材傳統(tǒng)的提取經(jīng)驗,確定考察因素為藥材浸泡時間(A),加水量(B),煎煮時間(C)和煎煮次數(shù)(D),每個因素確定了3個水平。
藥材的提取:用天平取凈黃芪飲片50g,置于加蓋的鋁鍋中,按正交實驗表設(shè)計的方法,浸泡A小時,B倍量的水,煎煮C小時,煎煮前D次進行試驗。水煎液過濾,濾液濃縮至適宜體積后,用95%乙醇醇沉3次,第1次使濾液含醇量達到45%,放置48小時,取上清液,過濾,濾液回收乙醇;第2次使濾液含醇量達到60%,放置24小時,取上清液,過濾,濾液回收乙醇;第3次濾液使含醇量達到75%放置24小時,取上清液,過濾、濾液回收乙醇,濃縮,定容于500ml容量瓶子,備用。(根據(jù)試驗所設(shè)計的浸泡時間,煎煮時間、煎煮用水量及煎煮次數(shù),按此方法每項分別進行3次試驗,結(jié)果取平均值。)

黃芪甲苷含量測定:根據(jù)文獻報道黃芪苷的測定方法,有比色法[1]薄層層析±紫外分光光度法、薄層掃描法、高效液相色譜法(HPLC)[2]、反相高效液相色譜法。筆者采用高效液相色譜法(HPLC)測定黃芪甲苷的含量[2]。
供試品溶液的制備:用移液管精密量取藥液20ml,置分液漏斗中,加入氫氧化鈉1g,振搖使之溶解,用正丁醇提取3次,每次量為20ml,合并正丁醇層,正丁醇液水浴蒸干,用甲醇溶解,并轉(zhuǎn)入5ml溶量瓶中,加甲醇稀釋至刻度,搖勻。過濾,取續(xù)濾液作為供試品溶液。
對照品溶液的制備:用分析天平精密稱取黃芪對照品5.0mg,用甲醇溶解,制成每1.0000mg/ml的溶液。
色譜條件與進樣分析:Shimpack CLC-ODS色譜柱(150mm×6mm,5μm,id);流動相為乙腈-水(35:65),流速1ml/分;柱溫35℃;檢驗波長203nm,靈敏度0.08AUFS。精密吸取對照品溶液20μl及供試品溶液10μl或20μl,注入高效液相色譜儀,以外標(biāo)法計算含量。在上述色譜條件下,濾液中黃芪甲苷與其他成分分離較好,陰性對照品無干擾。
線性關(guān)系的考察:用分析天平精密稱取黃芪對照品,取2.080mg、4.161mg、8.322mg、12.48mg、16.64mg,置于10ml容量瓶中,用甲醇溶液溶解并稀釋至刻度,配制成0.208、0.416、0.832、1.248、1.664mg/ml的5種濃度的溶液。分別精密吸取20μl注入高效液相色譜儀,每種濃度進樣3次,以峰面積(A)對進樣量(C)進行線性回歸,得回歸方程:A=-542.9+6857.2C,r=0.9998。在進樣量4.16~33.28mg范圍內(nèi)線性關(guān)系良好。
回歸率的測定:用分析天平精密稱取9份已測定濃度為1.002mg/ml的黃芪甲苷溶液,加入一定量的水使總體積為20ml。分別加入黃芪甲苷對照品1mg,按上述方法制成供試品溶液,測定,計算,得平均回收率為98.14%,RSD=1.80%(n=9)。
提取結(jié)果分析:經(jīng)過試驗得出加水量的多少對提取效果的影響小,而且加4倍量的水會增加生產(chǎn)成本,因此考慮加2倍量的水,比較經(jīng)濟。但經(jīng)過綜合恒量得出最佳的提取工藝應(yīng)為,加水浸泡4小時,每次加入藥材3倍量的水,每次煎煮45分鐘,煎煮3次。從最佳提取條件所提取的結(jié)果看,黃芪甲苷的含量約為0.18%,高于藥典所規(guī)定的0.04%。所以此提取工藝具有較強的科學(xué)性,為今后的工藝改革提供了有利的依據(jù)。
對黃芪多糖含量的考察:一是為了證明上述試驗的有效性,二是為今后提高北芪精口服液的質(zhì)量標(biāo)準(zhǔn)提供依據(jù)。試驗[3]采用分光光度法。
標(biāo)準(zhǔn)溶液配制:用分析天平精密稱取105℃干燥至恒重的葡萄糖0.1000g,加蒸餾水溶解,定容于100ml容量瓶中,搖勻。移取10.0ml,以蒸餾水定容于100ml容量瓶搖勻,得到0.1mg/ml標(biāo)準(zhǔn)溶液。
苯酚溶液配制:分別吸取葡萄糖標(biāo)準(zhǔn)溶液0.1、0.2、0.3、0.4、0.5、0.6ml于25ml比色管中,加蒸餾水至刻度,混勻。并移取該溶液2.0ml于比色管中,加入苯酚溶液1.0ml,搖勻,迅速加入濃H2SO45.0ml,搖勻,放置5分鐘,置沸水浴中加熱15分鐘,迅速冷卻至室溫。另以2.0ml蒸餾水作空白對照。在490nm波長處測定吸光度,線性回歸方程C=447A-5505,r=0.9954,并繪出回歸曲線(C:mg/ml),即為標(biāo)準(zhǔn)曲線。
黃芪多糖(APS)的測定:取凈黃芪飲片50g3份,按上述最佳提取工藝提取,按原醇沉工藝醇沉,藥液濃縮,105℃干燥,精密稱取樣品0.0500g置于100ml容量瓶中,加水溶解,并稀釋至刻度,搖勻,得樣品溶液。準(zhǔn)確移取5.0ml于50ml容量瓶中,加水至刻度,搖勻,備用。測定時移取0.5ml,按標(biāo)準(zhǔn)曲線繪制的方法測定吸光度值(每份樣品測定3次,取平均值),并從回歸曲線上查出多糖的對應(yīng)含量(mg/ml),計算出樣品中多糖的含量(mg/ml)。試驗結(jié)果:試驗編號1~9相對應(yīng)的多糖含量分別為10.05、11.31、10.92、10.11、10.94、11.22、10.17、10.11、9.95,平均值10.53。
穩(wěn)定性實驗:取上述樣品溶液每0.5小時測定1次吸光度值,2小時內(nèi)測定值不變。
回收率實驗:準(zhǔn)確移取溶液1.0ml(共取9份),置于10ml比色管中,分別加入10mg/ml標(biāo)準(zhǔn)溶液1.0ml,加水稀釋至刻度,按樣品測定方法,測定共吸光度值。計算回收率為101.2%;RSD=1.5%(n=9)。從試驗結(jié)果看,黃芪多糖含量測定的試驗比較穩(wěn)定,藥液中黃芪多糖的含量大約為10.53mg/ml。
討 論
在北芪精口服液生產(chǎn)中,影響因素較多,本試驗中對其中4項進行了研究,得出最佳提取方法。由于利用正交實驗表安排試驗時,試驗結(jié)果的差異可能是由各因素及其正交作用引起的,也可能是由試驗的其他隨機波動引起的,所以本試驗結(jié)果有待于進一步方差分析。還有待于在生產(chǎn)實際中進一步驗證。試驗時還對正丁醇提取次數(shù)進行了考察,結(jié)果發(fā)現(xiàn):用正丁醇提取2次以上,測得的黃芪甲苷含量基本不變。用最佳提取方法所制備藥液中,黃芪甲苷含量約為18mg/ml,黃芪多糖含量約為10.53mg/ml。
參考文獻
1 俞家華,曹正中,張勤.膜夾黃芪中黃芪甲苷的含量測定.中藥通報,1986,11(9):38-39.
2 歡欣,郝桂明,趙春杰,等,反相高效液相色譜法測定黃芪的含量.中國藥學(xué)雜志,2003,38(3):212.
3 趙文,任永鳳,樊建航.伊利黃芪成分的比較及多糖含量的測定.中草藥,2001,32(2):122-124.