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植物基因組DNA提取

2008-04-29 00:00:00敬國(guó)興賴(lài)小玲李伏欽曾富華
中國(guó)教育技術(shù)裝備 2008年20期

摘要 介紹在教學(xué)實(shí)驗(yàn)中分別采用SDS法和CTAB法對(duì)辣椒基因DNA進(jìn)行提取的過(guò)程,結(jié)果表明,改進(jìn)的CTAB法提取的DNA含量較高且純度較好;同時(shí)發(fā)現(xiàn)在電泳檢測(cè)過(guò)程中,恒定電流檢測(cè)圖像結(jié)果中呈現(xiàn)的基因組DNA條帶要比恒定電壓檢測(cè)結(jié)果平整。

關(guān)鍵詞 辣椒;DNA;電泳

中圖分類(lèi)號(hào):G642.423 文獻(xiàn)標(biāo)識(shí)碼:A 文章編號(hào):1671-489X(2008)20-0127-02

DNA提取是進(jìn)行分子生物學(xué)研究的第一步,也是大學(xué)生必須掌握的專(zhuān)業(yè)實(shí)驗(yàn)技能。現(xiàn)有的植物DNA提取方法很多,在教學(xué)過(guò)程中可根據(jù)材料本身特點(diǎn)的不同而選擇不同的方法。目前使用較多的是SDS(十二烷基硫酸鈉)法、CTAB(十六烷基三甲基溴化胺)法[1],主要用于草本植物和不含酚類(lèi)或含酚類(lèi)較少的植物DNA提取。在辣椒基因組DNA提取過(guò)程中,由于葉片中富含的酚類(lèi)物質(zhì)可使DNA降解,也可與DNA結(jié)合形成沉淀物,嚴(yán)重影響DNA的提取效果[2-3]。本文以教學(xué)實(shí)驗(yàn)植物基因組DNA提取中SDS方法[4]為基礎(chǔ),然后利用改進(jìn)的CTAB(十六烷基三甲基溴化胺)法提取辣椒基因組DNA與之進(jìn)行比較,摸索適合辣椒基因組DNA提取的方法,以便更好地服務(wù)于實(shí)驗(yàn)教學(xué)。

1 材料與方法

1.1 實(shí)驗(yàn)材料以常規(guī)辣椒品種保加利亞尖椒幼嫩葉片為實(shí)驗(yàn)材料,采集新鮮葉片數(shù)片洗凈后再用去離子水清洗2次,晾干,置于4 ℃冰箱冷藏室內(nèi)備用。

1.2 方法

1.2.1 DNA提取

1)SDS(十二烷基硫酸鈉)法見(jiàn)參考文獻(xiàn)[4]。

2)CTAB(十六烷基三甲基溴化胺)法[5]。

①稱(chēng)取干燥新鮮葉片約0.4 g置于干凈的研缽中,剪成小片,加液氮充分研磨約8 min,至粉末呈淺灰綠色即可。

②將磨碎的粉末等量分裝于4個(gè)1.5 mL的微量離心管中,各加1 mL預(yù)熱(約50 ℃)的2×CTAB緩沖液[含2% CTAB(Cetyltrimethy Ammonium Bromide,Sigma),1.4 mol/L NaCl,25 mmol/L EDTA,100 mmol/L Tris-Cl,pH8.0,0.2%β-巰基乙醇(V/M)],充分搖勻。

③60 ℃保溫1.5 h,每隔15 min~20 min搖勻一次。然后室溫放置30 min,其間搖動(dòng)1~2次。

④10 000 r/min離心5 min,棄沉淀,取上清液移至新管,加氯仿-異戊醇至滿(mǎn)管,并用力搖勻。

⑤10 000 r/min離心10 min,棄沉淀,取上清液移至新管,加氯仿-異戊醇至滿(mǎn)管,并用力搖勻。

⑥10 000 r/min離心10 min,棄沉淀,取上清液。先加1/10體積預(yù)冷(4 ℃)的3 mol/L NaAc,再加預(yù)冷(4 ℃)的異丙醇至新管,將離心管輕輕翻轉(zhuǎn)幾次(約5 s),-20 ℃放置2 h以上或過(guò)夜。

⑦10 000 r/min離心10 min,棄上清液,沉淀用70%乙醇洗脫2次,再用無(wú)水乙醇洗脫一次。晾干(或用滅菌過(guò)的濾紙吸干)后,加50 μL 1×TE溶液溶解。

⑧加入1 μL 10 mg/mL的RNase溶解DNA,30 ℃水浴或室溫1 h去除RNA,置-20 ℃保存?zhèn)溆谩?/p>

1.2.2 電泳檢測(cè)在恒定電壓(80 V)或恒定電流(80 mA)的條件下,取5 μL DNA加2 μL上樣緩沖液,于1%的瓊脂糖凝膠(含0.5 μg/μL EB)中電泳檢測(cè),用凝膠成像系統(tǒng)保存圖像,通過(guò)帶形分析來(lái)比較DNA的完整性等質(zhì)量特點(diǎn)。

2 結(jié)果分析

如圖所示,經(jīng)SDS法、CTAB法提取辣椒基因組DNA均獲得成功(圖1、圖2),但通過(guò)帶形分析,等量DNA經(jīng)電泳檢測(cè)后亮度呈現(xiàn)不同,表明這兩種方法提取的DNA總量有較大差別。由圖2可知,CTAB法提取的DNA含量較高且純度較好,能直接用于PCR、RAPD和RFLP等分子實(shí)驗(yàn)。

此外,在實(shí)驗(yàn)中還發(fā)現(xiàn),恒定電流條件下DNA條帶比恒定電壓電泳結(jié)果平整,表明在此實(shí)驗(yàn)中恒定電流更適合于電泳檢測(cè)。

3 討論

DNA提取方法主要是采用破壁和破膜的方法,SDS、CTAB等去污劑均能夠破壞細(xì)胞膜使蛋白質(zhì)沉淀下來(lái),從而釋放DNA;同時(shí)在一定的鹽濃度下,它們也可以沉淀色素和多糖。本研究表明,在富含酚類(lèi)物質(zhì)的辣椒葉片DNA提取過(guò)程中,改進(jìn)的CTAB法提取的DNA含量較高且純度較好,比SDS法好。所以在以后的實(shí)驗(yàn)教學(xué)過(guò)程中,一般應(yīng)采用CTAB法,因?yàn)镃TAB法不僅簡(jiǎn)便、快速,而且DNA產(chǎn)量高,適用于一般分子生物學(xué)操作。

在電泳過(guò)程中,將電泳儀調(diào)至水平,然后在恒定電壓條件下進(jìn)行電泳檢測(cè),多次DNA條帶電泳結(jié)果均呈現(xiàn)一定程度的不平整現(xiàn)象。在采用CTAB法提取DNA后,采用恒定電流的條件進(jìn)行電泳檢測(cè),結(jié)果大有改觀(guān)。出現(xiàn)此現(xiàn)象的原因可能是在電泳過(guò)程中電泳液和凝膠溫度不斷升高,導(dǎo)致電阻變化,從而引起電流不穩(wěn)定造成的。

通過(guò)研究表明,用改進(jìn)的CTAB法提取植物基因組DNA,在恒流電泳的條件下DNA電泳檢測(cè)更有利于植物基因組DNA提取的實(shí)驗(yàn)教學(xué),可以進(jìn)一步在實(shí)驗(yàn)中推廣使用。

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