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微藻色素的研究進展

2010-03-23 05:36:55吳吉林麻明友彭密軍
食品科學(xué) 2010年23期
關(guān)鍵詞:研究

吳吉林,周 波,麻明友,3,彭密軍,3,*

(1.吉首大學(xué)城鄉(xiāng)資源與規(guī)劃學(xué)院,湖南 張家界 427000;2.中南林業(yè)科技大學(xué)食品科學(xué)與工程學(xué)院,湖南 長沙410004;3.吉首大學(xué) 林產(chǎn)化工工程湖南省重點實驗室,湖南 張家界 427000 )

微藻色素的研究進展

吳吉林1,周 波2,麻明友1,3,彭密軍1,3,*

(1.吉首大學(xué)城鄉(xiāng)資源與規(guī)劃學(xué)院,湖南 張家界 427000;2.中南林業(yè)科技大學(xué)食品科學(xué)與工程學(xué)院,湖南 長沙410004;3.吉首大學(xué) 林產(chǎn)化工工程湖南省重點實驗室,湖南 張家界 427000 )

色素作為一種著色劑,廣泛應(yīng)用在食品、紡織和醫(yī)藥等領(lǐng)域。本文對微藻類天然色素,尤其是已經(jīng)成功進入市場或?qū)碛泻艽髴?yīng)用前景的微藻類天然色素的研究狀況,包括其物理、化學(xué)、生物學(xué)性質(zhì)以及生產(chǎn)工藝優(yōu)化進行概述,并對微藻天然色素的未來發(fā)展趨勢和應(yīng)用前景進行預(yù)測。

著色劑;微藻;天然色素;生物活性

近年來,由于某些食用合成色素存在毒性問題,其應(yīng)用受到了限制,尤其是蘇丹紅事件發(fā)生后,世界各國進一步完善了食品安全的管理體系及相關(guān)法律法規(guī)。如日本于2006年正式實施《食品中殘留農(nóng)業(yè)化學(xué)品肯定列表制度》,大幅提高了進口農(nóng)產(chǎn)品的門檻,淘汰了大部分有毒的化學(xué)合成色素。天然食用色素跟人工合成食用色素相比,最大的優(yōu)點是安全性高,具有天然和健康特點,并且世界天然色素市場正在以兩倍于人工合成色素的速度快速增長,具有廣闊的市場前景。

微藻是一類非維管植物,可通過光合作用機制代謝合成很多高附加值代謝產(chǎn)物,可廣泛應(yīng)用在食品、飼料和服裝等領(lǐng)域,主要包括有不飽和脂肪酸、蛋白質(zhì)、維生素、色素等,微藻代謝合成的色素種類很多,如β-胡蘿卜素、藻藍素、葉黃素等,隨著微藻代謝合成的色素的生物活性和抗氧化性被證實,這些色素在食品、醫(yī)藥和紡織領(lǐng)域都將具有更廣闊的應(yīng)用前景。

來源于微藻的類胡蘿卜素的種類較多(表1)。如玉米黃素(zeaxanthin)因為其在減少心血管疾病發(fā)病率、增強免疫功能和視覺保護等方面具有獨特的生理功能而受到關(guān)注[1],國內(nèi)外研究較多的是利用微綠球藻(Nannochloropsis gaditana)生產(chǎn)玉米黃素[2]。目前工業(yè)化生產(chǎn)葉黃素主要是從萬壽菊(Tagetes erecta)花瓣中提取,但其具有含量低、分離純化難度大、產(chǎn)品純度不高等缺陷[2]。利用微藻(如Chlorella和Muriellopsis sp.)生產(chǎn)葉黃素是國際上近年來研究的新熱點,其產(chǎn)量比目前從萬壽菊中提取葉黃素的產(chǎn)量高出許多倍,可以大大節(jié)約成本,具有很好的發(fā)展前景[3]。但是通過微藻生產(chǎn)玉米黃素和葉黃素都未實現(xiàn)工業(yè)化,而通過鹽藻(Dunaliella salina)大規(guī)模工業(yè)化生產(chǎn)β-胡蘿卜素的技術(shù)已經(jīng)很成熟[4]。本文對已經(jīng)工業(yè)化生產(chǎn)及近年研究較多

并在將來應(yīng)用前景廣闊的幾類微藻天然色素的研究進展進行了較全面的闡述,旨在增強人們對微藻天然色素的了解與重視。

1 來源于微藻的β-胡蘿卜素

1.1 產(chǎn)β-胡蘿卜素的鹽藻Dunaliella

代謝生成β-胡蘿卜素的微藻較多,研究得較多是Dunaliella,一般用Dunaliella salina和Dunaliella bardawil作為β-胡蘿卜素的主要生產(chǎn)微藻[5]。

關(guān)于Dunaliella的生物學(xué)特性已有深入研究,此藻類代謝合成3類主要物質(zhì):甘油、蛋白質(zhì)和β-胡蘿卜素[5]。Dunaliella的代謝產(chǎn)物具有各種生物學(xué)活性,如抗高血壓等[5]。Dunaliella相對于其他生物生產(chǎn)類胡蘿卜素具有如下優(yōu)勢:產(chǎn)量高、有順式和反式兩種異構(gòu)體、高生物利用性和有效性、產(chǎn)物成分較多、具有高生物活性和良好的抗腫瘤特性[5]。來源于Dunaliella的蛋白質(zhì)可以應(yīng)用到其他領(lǐng)域,整個藻體可以再利用,如用于動物或家禽的飼料,安全性高[6]。

近幾年,關(guān)于Dunaliella的培養(yǎng)主要是集中在生產(chǎn)β-胡蘿卜素。在合適的培養(yǎng)條件下,每平方米培養(yǎng)面積中的Dunaliella salina能積累400mg水平左右的β-胡蘿卜素[7]。

1.2 Dunaliella生產(chǎn)β-胡蘿卜素的工藝條件及代謝調(diào)控研究

Dunaliella是一種耐鹽微藻,需要雙碳化合物作為碳源,初始生長階段需在硝酸鹽富集條件下生長12~14d[7]。類胡蘿卜素合成階段,硝酸鹽耗盡,但必須維持一定鹽度,此條件下較有利于類胡蘿卜素的合成[6]。D. salina生長的鹽分(NaCl)一般維持在18%~22%之間,而類胡蘿卜素代謝合成的鹽分一般都在27%以上[6]。

光照強度大小對于類胡蘿卜素的合成十分重要。光照強度在20~50 μmoL/(光量·m2·s-1)之間比較有利于β-胡蘿卜素在D. salina的代謝合成[8]。另外可見光和紫外光也是影響β-胡蘿卜素代謝生成的重要因素,光量子通量密度高的紫外光能使每單位蛋白的類胡羅素與葉綠素之間的比例提高80%~310%[8]。Salguero 等[9]研究也表明在UV-A光照84h,葉黃素和玉米黃素的生成量在總類胡羅素含量中提高3~5倍,但必須在開放的培養(yǎng)系統(tǒng)中培養(yǎng)。

營養(yǎng)物質(zhì)對于D. salina代謝生成類胡蘿卜素也是十分重要的。當(dāng)受某些營養(yǎng)物質(zhì)脅迫時,微藻的生長和代謝活動受到影響,微藻會改變其生理功能積累某些化合物來抵抗這樣的逆境。研究表明在很多微藻中,硝酸鹽和硫酸鹽的脅迫能引起β-胡蘿卜素代謝合成量的增加[10]。氮和磷的脅迫能影響D. tertiolecta的光合作用;有利于D. salina 和D. viridis生長的KH2PO4質(zhì)量濃度在0.002~0.025g/L,質(zhì)量濃度過高 (>5g/L) 明顯抑制這些微藻的生長,在氮和磷脅迫條件下,具一定保護作用的色素(如α-胡蘿卜素和β-胡蘿卜素)的積累量有所增加[11]。在兩相培養(yǎng)系統(tǒng)中,N2的脅迫使類胡蘿卜素與葉綠素含量的比值增加33倍,但是營養(yǎng)物質(zhì)的脅迫對于甘油和α-胡蘿卜素的積累沒明顯的影響[12]。在氯鹽和硫酸鹽脅迫的環(huán)境下,D.salina的生長受到明顯的抑制,有利于D. salina的生長的Cl/SO42-濃度比值為3.2,然而此濃度比值高(如8.6)有利于β-胡蘿卜素的代謝生成[13]。

β-胡蘿卜素的代謝積累是在脂質(zhì)體外進行的,通過與一個胡蘿卜素球蛋白質(zhì)(38kD)結(jié)合來維持其穩(wěn)定性,胡蘿卜素球蛋白質(zhì)和三酰基甘油的積累跟β-胡蘿卜素積累是平行的;另外,油脂合成抑制劑也影響β-胡蘿卜素的代謝生成[14],此研究表明,胡蘿卜素球蛋白質(zhì)的生成和穩(wěn)定是影響β-胡蘿卜素代謝生成的主要因素。有研究顯示,脫落酸代謝量的增加以及其轉(zhuǎn)化成菜豆酸對于β-胡蘿卜素的代謝生成能起到明顯的調(diào)控作用,這些成分隨后通過類異戊二烯途徑提高類胡蘿卜代謝生成量[15]。

表1 不同微藻含類胡蘿卜素的種類及含量Table 1 Carotenoid content in carotenoid-rich microalgae

1.3 β-胡蘿卜素非傳統(tǒng)方式生產(chǎn)

盡管現(xiàn)在可以通過開放培養(yǎng)系統(tǒng)利用Dunaliella大規(guī)模工業(yè)化生產(chǎn)β-胡蘿卜素,但是因為存在很多不利因素,如過程控制難、低效率的高CO2消耗、污染問題等,導(dǎo)致90%商業(yè)化的β-胡蘿卜素還是通過化學(xué)合成得到的,其中環(huán)境影響因子(如光照、鹽度、溫度等)

是影響室外開放培養(yǎng)最主要的因素[16]。基于此原因,構(gòu)建能代謝類胡蘿卜素的基因工程菌,篩選能誘導(dǎo)β-胡蘿卜素代謝生成的因素以及單氧發(fā)生器的開發(fā)等成為現(xiàn)在研究的熱點[16]。

研究表明,通過添加不同濃度的海藻提取物如Sargassum wightii和Ulva lactuca可以明顯提高Dunaliella的生長速率和β-胡蘿卜素的得率[17]。更有研究表明,當(dāng)培養(yǎng)基中的有害成分降低到標(biāo)準(zhǔn)水平時,是十分有利于Dunaliella代謝生成β-胡蘿卜素,但因為β-胡蘿卜素本身能積累重金屬,即使Dunaliella 生長在很好的環(huán)境下,其代謝生成的β-胡蘿卜素也沒有絕對的安全可言[18]。有研究表明,有些有機物質(zhì)如癸烷對于類胡蘿卜素的合成有一定的誘導(dǎo)作用,這是由β-胡蘿卜素的高疏水特性所決定的[19]。在培養(yǎng)系統(tǒng)開發(fā)方面,有研究者開發(fā)出操作穩(wěn)定的封閉管狀生物反應(yīng)器,在此培養(yǎng)系統(tǒng)中生長的Dunaliella其類胡蘿卜素合成效率高,產(chǎn)率高[20]。除此以外,通過一些方法來篩選高產(chǎn)β-胡蘿卜素的Dunaliella菌株或構(gòu)建產(chǎn)β-胡蘿卜素的工程菌也是一個研究方向,如通過PCR或定點突變等現(xiàn)代分子生物學(xué)手段可以獲得高產(chǎn)率β-胡蘿卜素的菌株[13,21]。盡管通過誘導(dǎo)或基因工程構(gòu)建成功了一些能代謝生成β-胡蘿卜素的工程菌株,但尚未能實現(xiàn)其工業(yè)化生產(chǎn)[22]。

1.4 β-胡蘿卜素代謝合成途徑研究

關(guān)于通過微藻代謝生成類胡蘿卜素的代謝生成機理不是很清楚,但是關(guān)于這方面的研究成果有一部分得到了研究者的認(rèn)同。

圖1 微藻類胡蘿卜素的代謝合成途徑Fig.1 Pathway of carotenoid biosynthesis in microalgae

微藻類胡蘿卜素的代謝合成途徑見圖1[23-26]。兩分子香葉酰香葉酰焦磷酸通過八氫番茄紅素合成酶聚合而成八氫番茄紅素,然后再通過八氫番茄紅素脫氫酶生成ζ-胡蘿卜素,而它在ζ-胡蘿卜素脫氫酶的作用下生成番茄烯。番茄烯在番茄烯β-環(huán)化酶和ε-環(huán)化酶作用下生成α-胡蘿卜素,然后在β-胡蘿卜素羥化酶和ε-胡蘿卜素羥化酶作用下生成黃體素;番茄烯還可以在番茄烯β-環(huán)化酶作用下生成β-胡蘿卜素,然后在β-胡蘿卜素羥化酶作用下生成蝦青素,進而在相關(guān)酶作用下生成紫黃素和新黃素。其中八氫番茄紅素合成酶和八氫番茄紅素脫氫酶在一些植物中的類胡蘿卜素生物合成中起十分重要的調(diào)節(jié)作用[24],但是在D. salina類胡蘿卜素代謝合成中是否起關(guān)鍵的轉(zhuǎn)錄調(diào)控作用還不是很清楚,因為關(guān)于八氫番茄紅素合成酶和八氫番茄紅素脫氫酶在D. salina類胡蘿卜素生物合成中的作用有不同的研究報道[25-26]。1.5β-胡蘿卜素功能特性的研究

一般情況下化學(xué)合成的類胡蘿卜素成分單一,所以在某些領(lǐng)域應(yīng)用起來較難,而Dunaliella代謝生成的類胡蘿卜素的種類多且存在多種必需營養(yǎng)物質(zhì),并且天然的β-胡蘿卜素在體內(nèi)能被代謝掉從而十分安全,這是化學(xué)合成的β-胡蘿卜素不可能具有的特性。研究表明,人體能將β-胡蘿卜素轉(zhuǎn)化為VA,增強人體的免疫功能,預(yù)防一些疾病的發(fā)生[27],對哺乳動物和小鼠的肺泡松弛可以起到抑制作用[28],能明顯抑制倉鼠卵巢細(xì)胞的癌變[29],能抑制人淋巴細(xì)胞的增值[30],對人外圍單皮細(xì)胞抗原的表達起到促進作用[31],能刺激人多樣無核白細(xì)胞分泌細(xì)胞激素[32],提高黑素瘤的分化,減少腺苷酸環(huán)化酶的分泌[27]等。β-胡蘿卜素是一種在食品領(lǐng)域應(yīng)用廣泛的主要食品著色劑,可以提高食品和飲料的色彩,同時也可以作為著色劑和VA的前體添加到寵物食品中去[33]。

2 來源于微藻的蝦青素

蝦青素(Astaxanthin)是一種酮類胡蘿卜素,廣泛存在于鮭魚、蝦、蟹以及植物和水果中。蝦青素是一種天然的紅色素,除具有色素的特性外,還具有較強的抗氧化活性、抗腫瘤、增加免疫力等功效。因此,蝦青素在食品、飼料及醫(yī)藥等工業(yè)領(lǐng)域具有廣泛的應(yīng)用前景。產(chǎn)蝦青素的藻類主要是小球藻(C h l o r e l l a zofingiensis)、衣藻(Chlamydomonas nivalis)和雨生紅球藻(Haematococcus pluvialis)。C. zofingiensis 生長速度快,易培養(yǎng),環(huán)境適應(yīng)能力強,細(xì)胞濃度較大,已成為生產(chǎn)蝦青素另一重要的微藻資源[34]。C. zofingiensis的培養(yǎng)方式主要有混合營養(yǎng)培養(yǎng)與異養(yǎng)培養(yǎng),IP等[34-35]、del Campo等[36]和Chen[37]對此研究較多。C. nivalis是一種生長在極地和高海拔地區(qū)的雪地衣藻,非常適合在營養(yǎng)缺乏、酸性、冰凍、高強度紫外輻射等極度惡劣的環(huán)境條件下生長[38],但目前對于C. nivalis積累蝦青素的研究還很少。H. pluvialis是一種淡水的單細(xì)胞綠藻,其紅孢囊中蝦青素的質(zhì)量分?jǐn)?shù)超過其總胡蘿卜素質(zhì)量分?jǐn)?shù)的80%,被公認(rèn)為自然界中生產(chǎn)天然蝦青素最好的生物,用H. pluvialis已實現(xiàn)了蝦青素的商業(yè)化生產(chǎn)[39]。來源于H. pluvialis的蝦青素已經(jīng)被美國和歐洲一些國家認(rèn)

可,并證實可以作為膳食添加劑使用,在預(yù)防疾病等方面也極具廣闊的應(yīng)用前景[40]。除此外還可以利用Phaffia rhodozyma酵母發(fā)酵生產(chǎn)蝦青素代謝物,但其含量不高[41]。

2.1 產(chǎn)蝦青素Haematococcus pluviali的特性

H. pluvialis相對于Dunaliella而言有幾個缺陷:首先,淡水藻極易被其他藻類污染,從而需要封閉的培養(yǎng)系統(tǒng),這些培養(yǎng)系統(tǒng)要求高[40];其次,H.pluvialis在培養(yǎng)中從一個游動的鞭毛藻轉(zhuǎn)變?yōu)殪o止的厚壁的紅孢囊,而蝦青素就存在于這些紅孢囊中,這意味著培養(yǎng)條件是比較復(fù)雜的[42];第三,蝦青素在紅孢囊內(nèi)的含量是細(xì)胞干質(zhì)量的1%~2%,在蝦青素提取前必須進行破壁[43]。

2.2 蝦青素功能特性的研究

蝦青素相對于其他類胡蘿卜素的優(yōu)點如下:光穩(wěn)定性高,抗氧化性高,色樣特性高,容易被人體吸收。

蝦青素有很高的抗氧化特性,能明顯加速動物或人的斑點(導(dǎo)致人眼盲的主要因素)的退化。通過體外研究表明,蝦青素對單線氧具有很強的抗氧化功能,其抗氧化性是β-胡蘿卜素的10倍,生育酚的500倍[44]。也有研究表明,蝦青素能明顯抑制脂肪過氧化[45]。

用蝦青素來喂養(yǎng)小鼠(連續(xù)兩周,每天的劑量為14.4mg),研究結(jié)果表明蝦青素?zé)o任何致癌特性,證明蝦青素是無毒的,且對于小鼠膀胱癌、口腔癌和結(jié)腸癌的形成有一定的抑制功效[46]。同時有研究表明,蝦青素能誘導(dǎo)小鼠肝臟產(chǎn)生降解生物異源物質(zhì)的酶[47]。蝦青素能預(yù)防幽門螺旋菌(Helicobacter pylori)對哺乳動物腸道的感染,并且能調(diào)節(jié)體液和非體液免疫系統(tǒng),促進細(xì)胞介素和腫瘤壞死因子的釋放[47],還能促進免疫球蛋白的釋放以及T助細(xì)胞抗體的產(chǎn)生[48]。關(guān)于人體吸收蝦青素的相關(guān)研究報道不多,有研究表明蝦青素對人肌肉組織功能無任何有毒影響,但對人體的血漿濃度有一定的影響[49]。同時蝦青素能預(yù)防和治療因神經(jīng)損傷而導(dǎo)致的老年斑,在局部缺血方面也有積極的治療效果[50]。當(dāng)蝦青素與阿司匹林混用時,能有效提高抗炎癥的功效[47]。

在水產(chǎn)養(yǎng)殖方面的應(yīng)用研究表明,含有6%蝦青素的藻類飼料對于水生動物的生產(chǎn)無任何不利影響,并且飼料中添加適量的蝦青素能防止低密度脂蛋白氧化[51]。蝦青素在水產(chǎn)養(yǎng)殖中主要是用作必需維生素[48]。

2.3 H. pluvialis生產(chǎn)蝦青素的工藝研究

H. pluvialis具有特殊的生物學(xué)特性,即在弱光、氮磷豐富的環(huán)境中以游動的綠色營養(yǎng)細(xì)胞存在,而在不利生存的條件下,則以厚壁的紅孢囊存在,同時在細(xì)胞內(nèi)積累大量的蝦青素而呈紅色[10]。強光照、高溫、營養(yǎng)鹽(氮、磷)缺乏、鹽脅迫和氧化壓力等許多環(huán)境因素都可誘導(dǎo)細(xì)胞內(nèi)蝦青素的積累。高光量子通量密度是細(xì)胞內(nèi)蝦青素合成最重要的誘導(dǎo)條件,在一定范圍內(nèi)蝦青素的積累量隨溫度和光量子通量密度的升高而增加[52]。氮缺乏、磷缺乏以及氮缺乏與高光量子通量密度相結(jié)合可顯著促進細(xì)胞內(nèi)蝦青素的合成,而且可通過培養(yǎng)基配方的優(yōu)化而保持高積累量[53]。研究表明,細(xì)胞在積累蝦青素的過程中,氮源濃度起著非常重要的作用。當(dāng)培養(yǎng)基中氮質(zhì)量濃度為0.15g/L 時,很快就被消耗,且能獲得最高的細(xì)胞濃度,有利于蝦青素的積累。在鹽脅迫條件下, 當(dāng)培養(yǎng)基中醋酸鹽高于0.5%就會抑制細(xì)胞的生長,不利于蝦青素的積累[54]。溶解氧和多種活性氧分子都可有效地誘導(dǎo)細(xì)胞積累蝦青素。Zhang等[55]系統(tǒng)研究了異養(yǎng)化和混合營養(yǎng)培養(yǎng)H. pluvialis生產(chǎn)蝦青素。由于H. pluvialis特殊的生物學(xué)特性,其生長繁殖和蝦青素的積累明顯分為兩個截然不同的生理階段。目前,國際上成功的商業(yè)化生產(chǎn)模式都采用了兩階段生產(chǎn)方式, 先采用封閉式培養(yǎng)繁殖大量綠色細(xì)胞,但細(xì)胞不積累蝦青素;當(dāng)進入第二階段即采用光合自養(yǎng)培養(yǎng)時,細(xì)胞中開始大量積累蝦青素,蝦青素的含量占總類胡蘿卜素含量的92%[56]。

因為H. pluvialis生長環(huán)境為中性,所以容易被其他微生物感染,但是在高強度的光照下,該微生物的生長受到很大的不利影響。現(xiàn)在用藻類培養(yǎng)生產(chǎn)蝦青素的研究主要集中在研發(fā)高度封閉型培養(yǎng)系統(tǒng)和選育高產(chǎn)蝦青素并且耐高溫的菌株等方面。

3 來源于紅藻的類胡蘿卜素

Porhyridium 這類紅藻其代謝產(chǎn)物是一類重要的生物營養(yǎng)物質(zhì)和生物醫(yī)藥物質(zhì)的來源,其代謝產(chǎn)物包括多聚糖、長鏈不飽和脂肪酸、類胡蘿卜素(藻膽蛋白)等。其中類胡蘿卜素以膽藻體的形式存在于細(xì)胞內(nèi),黏附在葉綠體的類囊體膜上。其中水溶性的藻紅素和藻藍素,能以天然著色劑形式應(yīng)用于食品、紡織和醫(yī)藥等領(lǐng)域[57]。

Porhyridium sp.能代謝生成的類胡蘿卜素主要為B-藻紅素和b-藻紅素,其最大吸收峰波長為545nm,分子質(zhì)量為240kD。在一個光照以及營養(yǎng)物質(zhì)存在的生物反應(yīng)器中,培養(yǎng)溫度為20~30℃,經(jīng)培養(yǎng)后,經(jīng)過細(xì)胞破壁、離心及經(jīng)過其他工藝流程就可以得到藻紅素。室外分批發(fā)酵培養(yǎng)Porhyridium sp.時,藻紅素的含量大約占15%,最大可以達到30%。色素耐高溫,在pH6~7間其半衰期比較長,適合應(yīng)用在低濕干燥的食品中的[57]。此外藻紅素還有一個具有黃色熒光的特性[57]。

紅藻Porphyridium aerugineum能代謝生成一種藍色色素。Porphyridium aerugineum與其他產(chǎn)藻紅素的微藻生物學(xué)性質(zhì)很相似,但是它不代謝生成藻紅素和R-藻藍素,而是C-藻藍素。該藻藍素的最大吸收波長為642nm。其產(chǎn)物主要成分藻膽蛋白和C-藻藍素與絕大多數(shù)藻藍細(xì)菌中所代謝的藻藍素是一樣的,其生色基團是藻藍素通過硫醚鍵與蛋白質(zhì)結(jié)合而成[57]。Porphyridium

aerugineum是一種單細(xì)胞生物,在淡水環(huán)境中以及一定二氧化碳壓力條件下培養(yǎng),它對光照,二氧化碳壓力等要求比較高,不利的條件能使色素的產(chǎn)量和其可溶解性都降低,而多聚糖產(chǎn)量增加,整個工藝還包括離心、細(xì)胞破碎、抽提等。用鹽溶液提取能提高色素在分離過程的穩(wěn)定性,最終藻藍素占干質(zhì)量最高達60%。pH值對色素的穩(wěn)定沒什么影響,光穩(wěn)定性好,但是對熱敏感。在pH4~5,溫度60℃條件下,藻藍素的穩(wěn)定性時間達到40min,此特性非常適合于食品領(lǐng)域的應(yīng)用,尤其是在酸性食品中的應(yīng)用。

藻紅素和藻藍素還并沒有被允許應(yīng)用到食品或服裝領(lǐng)域,其毒性研究還有待進一步深入,但是初步研究表明其安全性比較高,具有廣闊的應(yīng)用前景[57]。

4 微藻色素未來的發(fā)展趨勢

微藻是天然色素的重要來源之一,其能在室外大規(guī)模培養(yǎng),色素的色價高、穩(wěn)定性好以及抗氧化性高,且天然色素具有安全和健康的效果。所以微藻色素在將來的市場前景廣闊,是一類很重要的色素來源和營養(yǎng)物來源。但是很多微藻色素因為產(chǎn)率較低或成本太高而難以實現(xiàn)工業(yè)化生產(chǎn)。將來對微藻色素的研究主要集中在以下幾方面:一是尋找各種微藻色素資源,尤其是能實現(xiàn)工業(yè)化生產(chǎn)的微藻色素資源;二是通過現(xiàn)代分子生物學(xué)技術(shù)來構(gòu)建能代謝生成微藻色素的工程菌,來開發(fā)色價高且具有市場應(yīng)用價值的色素;三是利用現(xiàn)代分子生物學(xué)技術(shù)研究微藻色素的代謝合成機理,從代謝調(diào)控角度來為實現(xiàn)微藻色素的工業(yè)化生產(chǎn)提供基礎(chǔ)理論支持。

[1]BONE R A, LANDRUM J T, DIXON Z, et al. Lutein and zeaxanthin in the eyes, serum and diet of human subjects[J]. Exp Eye Res, 2000, 71 (3): 239-245.

[2]GENTILE M P, BLANCH H W. Physiology and xanthophyll cycle activity of Nannochloropsis gaditana[J]. Biotechnology and Bioengineering, 2001, 75(1):1-12.

[3]del CAMPO J A, RODRIGUEZ H, MORENO J, et al. Lutein production by Muriellopsis sp. in an outdoor tubular photobioreactor[J]. Journal of Biotechnology, 2001, 85: 289-295.

[4]GARCIA-GONZALEZ M, MORENO J, MANZANO J C, et al. Production of Dunaliella salina biomass rich in 9-cis-β-carotene and lutein in a closed tubular photobioreactor[J]. Journal of Biotechnology, 2005, 115: 81-90.

[5]YEUM K J, RUSSEL R M. Carotenoids bioavailability and bioconversion[J]. Annual Review of Nutrition, 2002, 22: 483-504.

[6]MOKADY S, ABRAMOVICI A, COGAN U. The safety evaluation of Dunaliella bardawil as a potential food supplement[J]. Food and Chemical Toxicology, 1989, 27: 221-226.

[7]FINNEY K F, POMERANZ Y, BRUINSMA B. Use of algae Dunaliella as a protein supplement in bread[J]. Cereal Chemistry, 1994, 61: 402-406.

[8]ORSET S, YOUNG A J. Exposure to low irradiances favours the synthesis of 9-cis-β, β-carotene in Dunaliella salina Teod[J]. Plant Physiol , 2000, 122: 609-617.

[9]SALGUERO A, LEON R, MARIOTTI A, et al. UV-A mediated induction of carotenoid accumulation in Dunaliella bardawil with retention of cell viability[J]. Appl Microbiol Biotech, 2005, 66:506-511.

[10]BECKER W. Microalgae for aquaculture. The nutritional value of microalgae for aquaculture[M]// RICHMOND A. Handbook of microalgal culture. Oxfor: Blackwell, 2004: 380-391.

[11]GEIDER R J, HUGH L, MACINTYRE LISA M G, et al. Responses of the photosynthetic apparatus of Dunaliella tertiolecta Chlorophyceae to nitrogen and phosphorous limitation[J]. Eur J Phycol, 1998, 33: 315-332.

[12]LEON R, MARTIN M, VIGARA J, et al. Microalgae mediated photo production of β-carotene in aqueous: organic two phase systems[J]. Biomol Eng, 2003, 20: 177-182.

[13]RAJA R, HEMAISWARYA S, BALASUBRAMANYAM D, et al. PCR-identification of Dunaliella salina (Volvocales, Chlorophyta) and its growth characteristics[J]. Microbiol Res, 2007, 162: 168-176.

[14]GARCIA-GONZALEZ M, MORENO J, MANZANO J C, et al. Production of Dunaliella salina biomass rich in 9-cis-β-carotene and lutein in a closed tubular photo bioreactor[J]. J Biotech, 2005, 115: 81-90.

[15]COWAN K A, ROSE P D. Abscisic acid metabolism in salt stressed cells of Dunaliella salina[J]. Plant Physiol, 1991, 97: 798-803.

[16]OGBONNA J C, TANAKA H. Light requirement and photosynthetic cell cultivation: development of processes for efficient light utilization in photobioreactors[J]. J Appl Phycol, 2000, 12: 207-218.

[17]RAJA R, ANBAZHAGAN C, LAKSHMI D, et al. Nutritional studies on Dunaliella salina (Volvocales, Chlorophyta) under laboratory conditions[J]. Seaweed Res Util, 2004, 26: 127-146.

[18]RAJA R, ANBAZHAGAN C, GANESAN V, et al. Efficacy of Dunaliella salina (Volvocales, Chlorophyta) in salt refinery effluent treatment[J]. Asian J Chem, 2004, 16: 1081-1088.

[19]HEJAZI M A, HOLWERDA E, WIFFELS R H. Milking microalga Dunaliella salina for β-carotene production in two-phase bioreactors [J]. Biotechnol Bioeng, 2004, 85:475-481.

[20]GARCIA-MALEA LOPEZ M C, del RIO SANCHEZ E, CASAS LOPEZ J L, et al. Comparative analysis of the outdoor culture of Haematococcus pluvialis in tubular and bubble column photo bioreactors [J]. J Biotech, 2006, 123: 329-342.

[21]KIM S W, KIM J B, JUNG W H, et al. Overproduction of β-carotene from metabolically engineered Escherichia coli[J]. Biotechnol Lett, 2006, 28: 897-904.

[22]RAO R A, DAYANANDA C, SARADA R, et al. Effect of salinity on growth of green alga Botryococcus braunii and its constituents[J]. Bioresour Technol, 2007, 98: 560-564.

[23]RABBANI S. Induced β-carotene synthesis driven by triacylglycerol deposition in the unicellular alga Dunaliella bardawil[J]. Plant Physiol, 1998, 116: 1239-1248.

[24]SANDMANN G, RMER S, FRASER P D. Understanding carotenoid metabolism as a necessity for genetic engineering of crop plants[J]. Metab Eng, 2006, 8: 291-302.

[25]COESEL S N. Nutrient limitation is the main regulatory factor for carotenoid accumulation and for Psy and Pds steady state transcript levels in Dunaliella salina (Chlorophyta) exposed to highlight and salt stress[J]. Mar Biotechnol, 2008, 10(5): 602-611

[26]SANCHEZ-ESTUDILLO L. Regulation of two photosynthetic pigment-related genes during stress-induced pigment formation in the green alga, Dunaliella salina[J]. Biotechnol Lett, 2006, 28: 787-791.

[27]AGARWAL S, RAO A V. Tomato lycopene and its role in human health and chronic diseases[J]. Canadian Medical Association Journal, 2000, 163: 739-744.

[28]WEITZMAN S A,WEITBERG A B, CLARK E P, et al. Phagocytes as carcinogens: Malignant transformation produced by human neutrophils [J]. Science, 1985, 227: 1231-1233.

[29]MORIGUCHI S, JACKSON J C, WATSON R R. Effect of retinoids on human lymphocyte functions in vitro[J]. Human Toxicology, 1985, 4(4): 365-378.

[30]GRUNER S, VOLK H, FALCK P, et al. The influence of phagocytic stimuli on the expression of HLA-DR antigen; role of reactive oxygen intermediates[J]. European Journal of Immunology, 1986, 16: 212-215.

[31]ABRIL E R, RYBSKI J A, SCUDERI P, et al. β-carotene stimulates human leukocytes to secrete a novel cytokinin[J]. Journal of Leukocyte Biology, 1989, 45: 255-261.

[32]HAZUKA M B, EDWARDS-PRASAD J, NEWMAN F, et al. β-Carotene induces morphological differentiation and decreases adenylate catalyse activity in melanoma cells in culture[J]. Journal of the American College of Nutritio, 1990, 9: 143-149.

[33]CANTRELL A, MCGARVEY D J, TRUSTCOTT G, et al. Singlet oxygen quenching by dietary carotenoids in a model membrane environment[J]. Archives of Biochemistry and Biophysics, 2003, 412: 47-54.

[34]IP P F, WONG K H, CHEN Feng. Enhanced production of astaxanthin by the green microalga Chlorella zofingiensis in mixotrophic culture[J]. Process Biochemistry, 2004, 39: 1761-1766.

[35]IP P F, CHEN Feng. Production of astaxanthin by the green microalga Chlorella zofinginesis in the dark[J]. Process Biochem, 2005, 40: 733-738.

[36]del CAMPO J A, RODRIGUEZ H, MORENO J, et al. Accumulation of astaxanthin and lutein in Chlorella zofingiensis (Chlorophyta)[J]. Microbiol Biotechnol, 2004, 64: 848-854.

[37]CHEN Feng. Methods for production of astaxanthin from the green microalgae Chlorella in dark heterotrophic cultures: US, 7063957[P]. 2006-06-20.

[38]MULLER T C, MARTIN D. Snow algae from northwest Svalbard: their identification, distribution, pigmeng and nutrient content[J]. Polar Biol, 1998, 20: 14-32.

[39]DOMINGUEZ-BOCANEGRA A R, LEGARRETA I G, JERONIMO F M, et al. Influence of environmental and nutritional factors in the production of astaxanthin from Haematococcus pluvialis[J]. Journal of Biotechnology, 2004, 92: 209-214.

[40]LORENZ R T, CYSEWSKI G R. Commercial potential for Haematococcus microalgae as a natural source of astaxanthin[J]. Trends in Biotechnology, 2000, 18: 160-167.

[41]AN G H, SCHUMAN D B, JOHNSON E A. Isolation of Phaffia rhodozyma mutants with increased astaxanthin content[J]. Applied and Environmental Microbiology,1989, 55: 116-124.

[42]SARADA R, USHA T, RAVISHANKAR G A. Influence of stress on astaxanthin production in Haematococcus pluvialis grown under different culture conditions[J]. Process Biochemistry, 2002, 37: 623-627.

[43]SOMMER T R, POTT W, MORRISSY N M. Utilization of microalgal astaxanthin by rainbow trout (Oncorhynchus mykiss)[J]. Aquaculture, 1991, 94(1): 79-88.

[44]GRADELET S, ASTORG P, LECLERC J, et al. Effects of canthaxanthin, astaxanthin, lycopene and lutein on liver xenobiotic-metabolizing enzymes in the rat[J]. Xenobiotica, 1996, 26: 49-63.

[45]KOBAYASHI M, SAKAMOTO Y. Singlet oxygen quenching ability of astaxanthin esters from the green alga Haematococcus pluvialis[J]. Biotechnology Letters, 1999, 21: 265-269.

[46]TANAKA T, KAWAMORI T, OHNISHI M, et al. Suppression of azoxymethaneinduced rat colon carcinogenesis by dietary administration of naturally occurring xanthophylls astaxanthin and canthaxanthin during the postinitiation phase[J]. Carcinogenesis,1995,16: 2957-2963.

[47]ALEJUNG P, WADSTROEM T. Oral preparation for treatment of Helicobacter sp. infections-comprises xanthophylls, especially astaxanthin esterified with a fatty acid and derived from the alga Haematococcus sp.: World Patent, 9837874[P]. 1998.

[48]TO RNWALL M E, VIRTAMO J, KORHONEN P A, et al. Effect of αtocopherol and β-carotene supplementation on coronary heart disease during the 6-year post-trial follow-up in the ATBC study[J]. European Heart Journal, 2004, 25: 1171-1178.

[49]CHRISTIANSEN R, LIE O, TORRISSEN O J. Growth and survival of Atlantic salmon, Salmo salar L., fed different dietary levels of astaxanthin. First-feeding fry[J]. Aquaculture Nutrition, 1995, 1(3): 189-198.

[50]STERLIE M, BJERKENG B, LIAAEN-JENSEN S. Blood appearance and distribution of astaxanthin E/Z isomers among plasma lipoproteins in humans administered a single meal with astaxanthin[C]//Abstracts of the Twelfth International Carotenoid Symposium, Cairns, Australia, 1999.

[51]MIKI W. Biological functions and activities of animal carotenoids[J]. Pure and Applied Chemistry, 1991, 63: 141-146.

[52]魏東, 吳汪黔生. 雨生紅球藻(Haematococcus pluvialis)在誘導(dǎo)條件下積累蝦青素的調(diào)控機理研究新進展[J]. 中國海洋藥物, 2002(2): 60-64.

[53]OROSA M, VALERO J F, HERRERO C, et al. Comparison of the accumulation of astaxanthin in Haematococcus pluvialis and other green microalgae under N-starvation and highlight[J]. Biotechnology Letters, 2001, 23: 1079-1085.

[54]OROSA M, FRANQUEIRA D, CID A, et al. Analysis and enhancement of astaxanthin accumulation in Haematococcus pluvialis[J]. Bioresource Technology, 2005, 96: 373-378.

[55]ZHANG Ximing, GONG Xiandi, CHEN Feng. Kinetic models for astaxanthin production by high cell density mixotrophic culture of the microalga Haematococcus pluvialis[J]. Journal of Industrial Microbiology Biotechnology, 2003, 23: 691-696.

[56]FABREGAS J , OTERO A, MASEDA A, et al. Two-stage cultures for the production of Astaxanthin from Haematococcus pluvialis[J]. Journal of Biotechnology, 2001, 89: 65-71.

[57]GLAZERAN. Phycobiliproteins[M]//COHEN Z. Chemicals from microalgae. New York: Taylorand Francis,1999: 261-280.

Research Progress on Microalgae Pigment

WU Ji-lin1,ZHOU Bo2,MA Ming-you1,3,PENG Mi-jun1,3,*
(1. College of Resources and Planning Sciences, Jishou University, Zhangjiajie 427000, China;2. School of Food Science and Engineering, Central South University of Forestry and Technology, Changsha 410004, China;3.Key Laboratory of Hunan Forest Products and Chemical Industry Engineering, Jishou University, Zhangjiajie 427000, China)

It has been long history for pigment used as colorant in foods, cosmetics and pharmaceutical fields. In this paper, the current situation of microalgae pigment, including physical, chemical, and biological properties as well as the production process optimization have been reviewed. The pigments discussed in this paper have been produced at large industrial scale or will be in a wide application in the future. Development and application of microalgae pigment are also predicted.

colorant;microalgae;nature pigment;bioactive

TS264.4

A

1002-6630(2010)23-0395-06

2010-01-25

湖南省教育廳重點項目(08A056)

吳吉林(1978—),男,講師,碩士,主要從事植物生理生化研究。E-mail:wjlin9911@163.com

*通信作者:彭密軍(1964—),女,教授,博士,主要從事天然產(chǎn)物提取分離及分析鑒定研究。

E-mail:pengmj163@163.com

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