劉樂承,葉云霞(長江大學園藝園林學院,湖北 荊州434025)
菜瓜(CucumismeloL.var.flexuosusNaud)別名梢瓜、脆瓜、蛇甜瓜、老腌瓜、老羊瓜,是葫蘆科甜瓜屬甜瓜種中適于醬漬的變種。染色體數2n=2x=24。分布中近東、南亞及中國,以嫩瓜加工腌制為主,也可炒食,生食口感差[1-2]。菜瓜對土壤要求不甚嚴格,抗熱耐濕,適應性強,管理簡單,在我國栽培普遍[2-3]。然而,由于生食口感差,從上世紀80年代開始菜瓜逐漸為甜瓜、西瓜所淘汰。近年來,隨著人們消費習慣的變化,菜瓜越來越受人們歡迎,栽培面積逐年增加,對豐富市場、增加菜農經濟收入起到了較大的作用[4-6]。但是,菜瓜的研究還不夠系統深入。
種子發芽試驗對種子經營和農業生產具有重要意義。在種子收購、貯藏、播種前做發芽試驗,可正確地進行種子分級、貯藏以及確保播種成功。作物種子萌發的影響因素較為復雜,生產上常通過物理、化學方法處理以促進種子萌發[7]。種子處理可以有效地防止種子帶菌,防治苗期病蟲害,提高種子發芽率,增加幼苗營養,促進生長發育,從而實現苗全、苗齊和苗壯[8]。浸種是最常用的種子處理方法[9-10]。采用植物生長調節劑浸種常常可以打破種子休眠。赤霉素(GA3)是一種常用的植物生長調節劑,采用赤霉素處理種子,可促進種子吸水、萌發,促進胚芽伸長發育,還可促進根系活動,使種子的生活力和幼苗的生長勢得到提高。許多研究表明,采用GA3處理黃瓜[11-13]、茄子[14-16]、辣椒[13,17-20]、西瓜[20]等蔬菜作物的種子,能夠有效打破種子休眠,促進種子萌發及幼苗生長。同樣,利用萘乙酸(NAA)、吲哚乙酸(IAA)和吲哚丁酸(IBA)等生長素類植物生長調節劑溶液處理黃瓜[11,13]、茄子[14-15]、辣椒[13,17,19]、苦瓜[21]種子后,對種子的發芽及幼苗生長都有促進作用。而6-芐基腺嘌呤(6-BA)處理植物種子的應用很少見,但在驅蚊香草和茶中也有研究報道[22-23]。
本研究采用不同濃度的GA3、IAA、6-BA處理菜瓜種子后,調查發芽勢、發芽率、根長和單株鮮重,旨在明確這幾類植物生長調節劑對菜瓜種子發芽和幼苗生長的影響,為進一步發掘利用菜瓜種質資源和生產推廣做一點基礎性工作。
菜瓜品種 ‘青皮綠肉酥’為河北青縣純豐蔬菜良種繁殖場生產;植物生長調節劑GA3、IAA、6-BA均為國藥集團化學試劑有限公司生產,純度分別為BR、CP、LR。
試驗在長江大學園藝園林學院實驗室進行,在2010年12月預備試驗的基礎上,2011年4月進行正式試驗。挑選飽滿、大小一致的菜瓜種子,先用清水洗凈,吸干種子表面水分,再用不同濃度的植物生長調節劑于24℃[9]下浸種3h。GA3設40、120、200、280mg/L 4個濃度處理,IAA設0.5、5、50、100mg/L 4個濃度,6-BA設0.1、0.5、2.5、12.5mg/L 4個濃度,對照組(CK)為蒸餾水。每處理30粒種子,重復3次。浸種結束后用清水沖洗,分別放在墊有幾層濾紙為發芽床的培養皿中,然后將種子均勻放入,加蓋,置于24℃恒溫培養箱中暗培養。
每天下午15:00觀察記載發芽情況。以胚根突破種皮2mm以上作為發芽標準,第3、第7天[7]分別統計發芽勢、發芽率,第7天測根長和單株鮮重。以下述公式計算發芽率和發芽勢[7]。

數據采用DPS數據統計分析軟件進行方差分析,多重比較采用Duncan法。由于發芽勢、發芽率絕大多數在30%~70%之外,所以在進行方差分析前先進行反正弦轉換。
由表1可以看出,GA3、IAA、6-BA處理后的菜瓜種子的發芽勢,200mg/L的GA3,0.5、5、50mg/L的IAA,以及0.1~12.5mg/L的6-BA等8個處理的都顯著或極顯著大于對照(CK)的,而200mg/L的GA3處理的顯著大于0.5、50mg/L的IAA以及12.5mg/L的6-BA處理的,其他各處理間無顯著差異。就每種植物生長調節劑而言,GA3中200mg/L處理的種子的發芽勢顯著大于其余3個濃度處理的,但后三者無顯著差異;6-BA的4個濃度處理之間、IAA的4個濃度處理之間的種子發芽勢均無顯著差異。結果表明,在本研究處理的濃度范圍內,200mg/L的GA3,0.5、5、50mg/L的IAA,以及0.1~12.5mg/L的6-BA處理都能提高菜瓜種子的發芽勢,即GA3僅200mg/L處理有效果,IAA、6-BA宜采用較低的濃度處理。

表1 不同濃度GA3、IAA、6-BA對菜瓜種子發芽勢、發芽率、根長和單株鮮重的影響
由表1可以發現,GA3、IAA、6-BA處理后的菜瓜種子的發芽率,120、200mg/L的GA3,5、50mg/L的IAA,以及0.1~12.5mg/L的6-BA等8個處理的都顯著或極顯著大于對照(CK)的,而200mg/L的GA3處理的顯著大于120mg/L的 GA3、0.5、50mg/L的IAA以及2.5、12.5mg/L的6-BA的,其他各處理間無顯著差異。就每種植物生長調節劑而言,GA3中200mg/L處理的種子發芽率顯著大于另外3個處理的,而120mg/L的GA3處理的種子發芽率又顯著大于其余2個處理的,但后二者無顯著差異;6-BA中0.5mg/L處理的種子發芽率顯著大于12.5mg/L處理的,其他處理之間無顯著差異;IAA的4個濃度處理之間的種子發芽率均無顯著差異。結果表明,在本研究處理的濃度范圍內,120、200mg/L的GA3,5、50mg/L的IAA,以及0.1~12.5mg/L的6-BA處理都能提高菜瓜種子的發芽率,而GA3中200mg/L處理的效果最好,IAA以5~50mg/L處理為宜,6-BA則可以采用較低的濃度處理。
由表1可知,GA3、IAA、6-BA處理菜瓜種子后,除200mg/L的GA3處理的菜瓜苗根長顯著大于對照(CK)的外,其他各個處理均與對照(CK)無顯著差異,而且每種植物生長調節劑的4個濃度處理之間也均無顯著差異。結果表明,本研究濃度范圍的GA3、IAA、6-BA處理中,僅200mg/L的GA3處理能使菜瓜苗根長增加。
表1顯示,GA3、IAA、6-BA處理菜瓜種子后,各個濃度處理的菜瓜苗單株鮮重與對照(CK)的均無顯著差異;而且,就每種植物生長調節劑而言,IAA、6-BA的各個濃度處理之間的菜瓜苗單株鮮重無顯著差異,只是GA3中200mg/L處理的顯著大于40mg/L處理的。結果表明,本研究濃度范圍的GA3、IAA、6-BA處理對菜瓜苗的單株鮮重無顯著影響。
本研究結果表明,在本研究處理的濃度范圍內,200mg/L的GA3不僅能提高菜瓜種子的發芽勢和發芽率,而且能使菜瓜苗根長增加,是本研究中效果最好的處理;5~50mg/L的IAA、0.5mg/L及以下濃度的6-BA也能提高菜瓜種子的發芽率;GA3、IAA、6-BA處理對菜瓜苗的單株鮮重無顯著影響。
影響植物種子發芽的因素有環境因素和休眠因素2類[24]。種子休眠是自然界較為普遍的一種生理現象,是植物進化中產生的保護種子、提高繁殖機率的措施。造成種子休眠的因素有多種,有內因、有外因,且根據植物種類不同而不同。常見的原因主要有種皮障礙、胚未發育完全、種子未完成后熟、含有抑制物等[24]。植物生長調節劑浸種可以打破種子休眠,破壞妨礙種子萌發的活性物質,從而有利于種子的吸水萌發[21]。本研究結果表明,采用GA3、IAA、6-BA處理后,菜瓜種子的發芽率顯著提高。這可能是由于GA3處理種子能使細胞分裂分化,促進種子胚的發育,促進種子解除休眠[11];6-BA能促進細胞的分裂和器官的分化,本身就能促進種子的萌發[25];而IAA則影響促進細胞的分裂、伸長和分化,從而促進種子的萌發[25]。然而,本研究僅采用了1個菜瓜品種進行研究,而且濃度梯度也是參照其他文獻上瓜類研究結果設置的,因此,要完全明確植物生長調節劑對菜瓜種子發芽和幼苗影響,還需要采用更多的品種在本研究的基礎上進一步研究。
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