楊 濱,婁曉明,吳春麗,李婉萍
銀杏(Ginkgo biloba L.)是木本孑遺植物,其葉、果和外種皮皆可入藥。銀杏外種皮是銀杏種子的外皮層,包含有大量的銀杏多糖、銀杏內酯、黃酮及被稱作銀杏酚、酸的化合物等多種物質。有報道表明,銀杏外種皮多糖(Ginkgo biloba exocarp polysaccharides,GBEP)對胃癌、肺癌及肝癌細胞的生長具有一定的抑制效果[1-3],但其在宮頸癌方面的研究較少。本文研究體外銀杏外種皮對人宮頸癌細胞增殖及遷移的影響,探討其對宮頸癌的治療作用。
1.1 細胞株及培養方法 細胞株:Siha細胞株購自中科院,由本實驗室傳代保存。細胞培養:用含有10%小牛血清的高糖RPMI1640培養基,37℃飽和濕度、5%CO2培養箱中培養,細胞貼壁生長,每2~3天傳代1次。
1.2 實驗儀器及試劑 酶標儀(BIOTEKElx800);AE30/31倒置相差顯微鏡(麥克奧迪實業集團有限公司);HF90 CO2細胞培養箱(上海力申科學儀器有限公司)。細胞培養用試劑購自Hyclone公司,RNA prep pure動物組織總RNA提取試劑盒,TIANScript cDNA第一鏈合成試劑盒,2×Taq Real Master Mix(SYBR Green)購自天根生物科技(北京)有限公司,引物由上海生工生物工程技術服務有限公司合成,抗體購自Abcam公司,噻唑藍(MTT)購自Sigma公司,ELISA檢測試劑盒購自RB公司,其他試劑為國產分析純。
2.1 銀杏外種皮粗多糖的制備 稱取適量銀杏外種皮,置于圓底燒瓶中,按料液比1∶10、沸水浸提1 h,在熱水浴中回流浸提3次,冷卻后過濾,合并上清液。上清液經減壓濃縮,三氯乙酸脫蛋白,離心,調pH至中性,加入一定體積的95%乙醇,使終濃度為80%。充分攪動,靜置沉淀,所得沉淀依次用無水乙醇、丙酮、無水乙醚洗滌,真空干燥即可得粗多糖。經計算,得到外種皮原料中多糖含量為6.684 g/100 g。
2.2 MTT法檢測GBEP對Siha細胞的增殖影響
將GBEP用PBS溶出,調pH至中性,過濾除菌,于4℃冰箱中保存備用,GBEP稀釋為 10、20、40、80、160、320 μg/mL 濃度梯度。取對數生長期細胞,調節細胞濃度為5×104個/mL,將細胞以每孔200 μL接種于96孔培養板,培養12 h,使其充分貼壁,然后換為無血清的RPMI-1640培養,加入含GBEP的無血清RPMI-1640培養液培養,每個濃度設3個復孔。對照組為不含GBEP的RPMI-1640 培養基,5%CO2,37 ℃ 中孵育 24、48、72 h。每孔加入5 mg/mL MTT 20 μL,繼續放入CO2培養箱中染色4 h,吸去上清,加入200 μL DMSO溶解細胞內形成的結晶,用酶標儀測定490 nm處吸光度(OD)值,計算GBEP對Siha細胞生長的抑制率。抑制率(%)=(空白孔OD值-實驗孔OD值)/空白孔OD值×100%,同時計算IC50值,并確定合適的3個實驗計量和實驗時間,用于后續實驗。
2.3 檢測GBEP對Siha細胞的侵襲抑制作用應用鋪有Matrigel的Transwell小室法測定GBEP對Siha細胞遷移情況的影響,將鋪膠后的Transwell小室放入24孔板中,下室加入含10%FBS的 RPMI-1640培養液 500 μL;在上室加入含GBEP 終濃度為 0、10、20、40、80、160、320 μg/mL的100 μL細胞懸液,細胞數為1×105個/孔。常規培養24、48、72 h,取出 Transwell小室,PBS 輕輕沖洗,擦去微孔膜上層的細胞,甲醛室溫下固定15 min,蘇木素染液染色,倒置顯微鏡下(×400)對遷移至微孔膜下層的細胞計數。每個樣本選取5個視野計數細胞,取其均數。遷移率(%)=實驗孔細胞數/空白孔細胞數×100%。
2.4 Siha細胞中人基質金屬蛋白酶2(MMP-2)基因Real Time PCR檢測 經MTT實驗確定的實驗條件,取不同濃度(0~320 μg/mL)GBEP處理下對數生長期的Siha細胞,加入裂解液收集,提取RNA,并測得濃度,逆轉錄后,進行Real Time PCR檢測,以GAPDH作為內參,進行相對表達量分析。MMP2基因引物為:Forward primer:TGGTTTTCCTCCATCCAGTGG,Reverseprimer:CAGGTTGTCTGAAGTCACTGC。
2.5 GBFP對Siha細胞MMP-2蛋白分泌表達的影響 經MTT實驗確定的實驗條件,收集不同濃度GBEP處理下的 Siha細胞培養液上清,4 000 rpm離心10 min,取上清,用MMP-2 ELISA測定試劑盒檢測腫瘤細胞上清中MMP-2含量。
2.6 統計方法 實驗數據應用SPSS 13.0統計軟件包進行統計分析,各指標用均數±標準差表示,P<0.05為差異有統計學意義。
3.1 MTT法檢測GBEP對Siha細胞增殖的影響
MTT檢測正常Siha細胞與GBEP處理后的Siha細胞在處理后24、48、72 h后的增殖情況,并繪制生長曲線,見表1、圖1。結果顯示,GBEP處理后的細胞較正常培養的Siha細胞增殖速度明顯減緩,經計算,得到 24 h、48 h、72 h的 IC50值分別為78.09、58.25 和48.63 μg/mL,48 h 為適合實驗。

表1 不同濃度及時間GBEP對Siha細胞增殖的抑制情況

圖1 GBEP對Siha細胞的增殖抑制曲線
3.2 GBEP對Siha細胞侵襲的影響 利用Transwell細胞培養小室測定GBEP處理后細胞遷移能力的變化,見圖2。結果顯示,GBEP處理后,Siha細胞遷移細胞數明顯低于正常培養細胞(P<0.05);隨著GBEP濃度的增加,細胞遷移率逐漸降低,隨著藥物處理時間的增加,細胞遷移率降低。

圖2 GBEP對Siha細胞遷移的影響
3.3 Real Time PCR檢測Siha細胞中MMP-2基因表達情況 應用Real Time PCR方法檢測未經處理Siha細胞和GBFP處理后的細胞中MMP-2基因的表達情況,結果如圖3所示,隨著GBFP濃度的增加,Siha細胞中MMP-2基因的表達量降低,濃度為40 μg/mL時,差異有統計學意義(P<0.05),80 μg/mL以上時,差異有顯著統計學意義(P<0.01)。

圖3 不同濃度GBEP對siha細胞中MMP-2基因表達的影響
3.4 GBEP對Siha細胞上清中MMP-2分泌表達的影響 見圖4。結果顯示,GBFP可明顯降低Siha細胞上清中MMP-2的分泌表達,80 μg/mL以上GBFP處理組與對照組相比,差異有顯著統計學意義(P<0.01)。

圖4 不同濃度GBEP對siha細胞MMP-2分泌表達的影響
多糖作為一種重要的生物活性成分,不是一種單一的化學物質,而是聚合程度不同的多種糖物質的混合物[4]。多糖具有提高免疫、抑制腫瘤等多方面功能,在植物、動物、微生物中廣泛存在,近年來多糖成為天然藥物的一個研究熱點。銀杏外種皮多糖(Ginkgo biloba exocarp polysaccharides,GBEP)是從銀杏的外種皮中提得的活性多糖物質[5]。由于銀杏外種皮是銀杏加工過程產生的廢棄物,不僅污染環境,也造成資源浪費,而從其中提取多糖,原料成本低,變廢為寶,具有廣闊的應用前景。
在惡性腫瘤的發生發展過程中,增殖和遷移是其主要特性,是惡性腫瘤預后不良及導致死亡的主要原因之一,因此,通過藥物抑制腫瘤細胞的遷移和增殖,是癌癥治療的手段之一[6-7]。
宮頸癌在女性惡性腫瘤中位居首位,本文用MTT法觀察GBEP對宮頸癌細胞株Siha增殖的抑制作用。結果表明,GBEP對Siha細胞的增殖具有抑制作用,在10~320 μg/mL劑量下,體外作用24~72 h,GBEP對 Siha細胞體外增殖的抑制率隨劑量增加和時間延長而增加,具有劑量依賴性和時間依賴性,這與GBEP對其他癌細胞的研究結果相符,在GBEP對胃癌細胞及肝癌細胞的研究中有相似性。
在對細胞遷移作用的研究中,銀杏外種皮多糖對宮頸癌細胞的遷移,同樣起到了抑制作用,當GBEP劑量為40 μg/mL,與對照細胞相比,差異有統計學意義(P <0.05),80 μg/mL以上時,差異有顯著統計學意義(P<0.01),表明GBFP對Siha細胞的遷移具有抑制作用。同時,應用Real Time PCR方法檢測了與細胞遷移相關的MMP-2基因,基質金屬蛋白酶(Matrix Metallo proteinases,MMPs)是鋅肽酶,是一種能降解細胞外基質的蛋白水解酶,MMPs的表達和活化與腫瘤的生長、侵襲和轉移密切相關,在惡性腫瘤中MMPs經常過度表達[8],其對腫瘤的侵蝕、轉移有非常重要的作用。因此,MMPs被認為是癌癥患者的預后因子和治療靶點。Real Time PCR檢測結果表明,隨著GBEP濃度的增加,Siha細胞MMP-2表達量降低,這個結果也與 ELISA檢測結果相同,共同證明GBEP對宮頸癌細胞Siha細胞遷移的抑制作用。
綜上所述,銀杏外種皮多糖對宮頸癌細胞Siha細胞的生長增殖和遷移侵襲具有抑制作用,在分子水平初步證明其具有抑制Siha細胞遷移相關基因的表達,為GBEP應用于宮頸癌治療的可能性提供依據。
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