劉榮福 占鵬程 李博安
(廈門大學附屬第一醫院泌尿外科,福建 廈門 361003)
缺氧誘導因子-1(HIF-1)是在缺氧狀態下調節機體或細胞對缺氧反應中的一種核轉位因子〔1〕,廣泛表達于哺乳動物的各種組織細胞。HIF-1由α和β兩種亞基組成的異二聚體蛋白,其中α亞基受缺氧或低糖調節,在缺氧時較穩定,活性大大增強〔2〕,通過與其下游的靶基因特定序列DNA結合而調控他們的轉錄和翻譯,如血管內皮生長因子(VEGF)、促紅細胞生長素(EPO)、葡萄糖轉運和糖酵解酶、誘導型 NO 合酶(iNOS)〔3〕,血管形成及糖酵解酶活性增加,使腫瘤細胞適應缺血缺氧環境,維持生存與發展的需要,這在腫瘤的發生發展中具有重要作用。本課題成功構建了HIF-1α過表達重組質粒(pcDNA3.1-HIF-1 α)并轉染到前列腺癌細胞株(PC-3),建立了pcDNA3.1-HIF-1α-PC-3細胞株,為研究前列腺癌與HIF-1α提供了一個可靠工具。
1.1 材料 人PC-3、pcDNA3.1質粒、大腸桿菌DH5α由廈門大學生命科學院提供。HIF-1α鼠抗人抗體購自Santa Cruz公司,羊抗鼠IgG二抗購自武漢博士德公司,Fugene轉染試劑購自羅氏公司,膠回收試劑盒、質粒抽取試劑盒均購自OMEGA公司,細胞總RNA提取試劑盒購自Invitrogen公司,RT-PCR試劑盒購自TaKaRa公司,ECL試劑盒購自Pierce公司,胎牛血清、1640培養基系Gibco公司產品。實驗所用試劑均為進口或國產分析純試劑。
1.2 方法
1.2.1 引物合成 從Genbank檢索出HIF-1αcDNA序列,根據Primer設計軟件,HIF-1α基因上游引物:5'-CGGGATCCTCTCTAGTCTCACGAGGGGTTTCC-3';下游引物:5'-GCTCTAGAGATGCTACTGCAATGCAATGGTT-3',兩 端 引 入BamHⅠ和XbarⅠ酶切位點,擴增片段2.89 kb,由廣州英駿生物公司合成。
1.2.2 HIF-1α片段擴增 采用TRIZOL試劑,裂解PC-3提取總RNA,經RT-PCR方法(具體操作參考RT-PCR試劑盒)擴增HIF-1α基因片段,94℃變性30 s,58℃退火30 s,72℃延伸4 min。循環35次。末次循環后72℃再延長10 min,依照膠回收試劑盒說明書回收擴增片段。
1.2.3 pcDNA3.1-HIF-1α重組質粒的構建及鑒定 將RTPCR擴增產物與pcDNA3.1質粒用BamHⅠ和XbarⅠ37℃雙酶切過夜,膠回收酶切產物。在15μl的連接反應體系中,加入1.5μl 10×緩沖液,1μl T4DNA連接酶,9.5μl的PCR擴增產物,3μl的pcDNA3.1載體,4℃連接過夜,將連接產物轉化至大腸桿菌DH5μα,搖勻,小量抽取質粒(具體步驟參照質粒抽取試劑盒),酶切,菌落PCR、瓊脂糖凝膠電泳鑒定陽性重組子。
1.2.4 序列測定 由上海英駿生物公司完成。采用雙脫氧鏈末端中止法,以DNA全自動測序儀測定核苷酸序列,同一片段經正反兩個方向重復測定。
1.2.5 pcDNA3.1-HIF-1α重組質粒的轉染 中量抽提鑒定正確的pcDNA3.1-HIF-1α真核表達質粒,純化,取培養于6 cm培養板中處于對數生長期的PC-3細胞經Fugene轉染(具體操作參考Fugene轉染說明書)。轉染后培養48 h,于倒置熒光顯微鏡下觀察、計數發綠色熒光細胞數,每孔取5個視野,取其平均值計算轉染效率,計算公式為:細胞轉染率=(同一高倍鏡下綠色熒光細胞總數/同一高倍鏡下細胞總數)×100%。
1.2.6 重組質粒pcDNA3.1-HIF-1α的表達鑒定 Western印跡檢測HIF-1α蛋白表達情況。取轉染48 h處于對數生長期的pcDNA3.1-HIF-1α-PC-3和pcDNA3.1-PC-3細胞,快速裂解法裂解細胞,13 000 r/min,30 min,4℃,用 Bradford法取上清液測蛋白濃度,按上樣量一致加樣,均為80μg,于8%的SDSPAGE 電泳,120 V,90 min,電泳完后轉膜,300 mA,90 min,將膜置于5%的牛奶中室溫封閉60 min,4℃兔抗人HIF-1α多克隆抗體(稀釋度為1∶1 500)雜一抗過夜,TBST洗膜10 min×3次,再加入辣根過氧化物酶標記的羊抗兔 IgG(稀釋度為1∶5 000)雜二抗60 min,Tris緩沖鹽水(TBST)洗膜10 min×3次,ECL顯影,曝光。
2.1 HIF-1α擴增片段 PC-3細胞內抽提的RNA逆轉錄為cDNA,經PCR合成儀擴增HIF-1α片段,瓊脂糖凝膠電泳分析,可見一條大小約2900bp的條帶,見圖1。
2.2 菌落PCR鑒定陽性克隆 4℃連接后轉化大腸桿菌,鋪板,挑取連接后的菌落采用PCR方法擴增HIF-1α片段,結果能擴增2.89kbp大小的片段的菌落為陽性克隆,即為連接有HIF-1α片段的重組質粒,見圖2。

圖1 PCR擴增產物

圖2 菌落PCR

圖3 重組質粒pcDNA3.1-HIF-1α酶切鑒定
2.3 HIF-1α重組質粒的酶切鑒定 取pcDNA3.1-HIF-1α陽性克隆小量制備質粒,經BamHⅠ和XbarⅠ酶切后,瓊脂糖凝膠電泳,所得結果與pcDNA3.1載體和HIF-1α片段大小一致,約5.3kbp和2.89kbp,經DNA測序證實HIF-1α擴增片段與Genebank公布一致。見圖3。
2.4 轉染效率的檢測 質粒轉染前列腺癌效率為(43.24±2.56)%,綠色熒光蛋白表達情況,見圖4。
2.5 重組質粒pcDNA3.1-HIF-1α的表達鑒定 在pcDNA3.1-HIF-1α-PC-3細胞內高表達,而在pcDNA3.1-PC-3細胞內條帶較pcDNA3.1-HIF-1α-PC-3弱,表明重組質粒 pcDNA3.1-HIF-1α在前列腺癌細胞內能夠表達。見圖5。

圖4 質粒轉染PC-3細胞48h綠色熒光蛋白表達情況

圖5 PC-3細胞內HIF-1α蛋白表達情況
腫瘤細胞具有很強的增殖能力,在其發展過程中局部腫瘤組織生長超過周圍血管生長速度,必然導致局部組織缺血缺氧,在該種缺氧情況下會誘導HIF-1α的表達,進而進入細胞核與HIF-1β結合,然后與其下游的靶基因的缺氧反應元件(HRE)的HIF-1α結合位點結合,促使VEGF表達及葡萄糖轉運和糖酵解酶活性增加,血管形成及能量代謝增強,維持腫瘤細胞的生存和發展。此外,近幾年研究還發現,HIF-1α過表達能抑制細胞凋亡〔4〕、調節細胞周期蛋白(Cyclin)〔5〕,影響腫瘤分裂以及干擾生長因子〔6〕合成與分泌,促進細胞生長等多種途徑增強腫瘤生存能力。Zhong〔7〕研究發現在前列腺癌組織和癌前病變及癌遠處轉移的病灶中HIF-1α均有不同程度的高表達,而在正常的前列腺組織和良性病變中卻未發現HIF-1α蛋白過表達,表明其與前列腺癌的發病之間有著密切的關系。
為了探討HIF-1α與前列腺癌發病機制之間的關系,本實驗構建重組質粒pcDNA3.1-HIF-1α,酶切,電泳,目的片段位于2.89kb左右,載體片段位于5.3kb,和預期結果一致,序列測定所擴增的HIF-1α片段與Genbank報道一致,然后經轉化至大腸桿菌進行擴增,中量抽提,轉染至PC-3細胞,48h后轉染效率約為45%左右,重組質粒能夠在細胞內表達,且其表達量要高于PC-3細胞。
隨著人口老齡化、生活水平的提高,我國前列腺癌的發病率正逐漸上升,病死率較高〔8〕,而目前尚缺乏有效地治療方法。HIF-1α在腫瘤細胞內高表達,可作為腫瘤生物研究的重要參照物〔9〕。成功構建HIF-1α穩定表達的重組質粒pcDNA3.1-HIF-1 α,將為研究HIF-1α與前列腺癌發病機制之間的關系提供了一個有力工具,并有望作為臨床上前列腺癌的早期診斷指標和腫瘤標記物,間接為前列腺癌的早期診斷及治療提供較大的幫助。
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