L－電壓門控鈣通道在糖尿病大鼠局灶性腦缺血中的變化及意義*

邢 影， 張文杰， 方 芳， 鄭昭石

(1吉林大學中日聯誼醫院神經內科，吉林長春130033;2吉林大學白求恩醫學部生理教研室，吉林長春130021)

腦缺血損傷機制之一是細胞內鈣超載，研究表明引起細胞內鈣超載的原因除細胞本身的變化外，還有電壓門控性鈣通道和N－甲基－D－天冬氨酸受體(N－methyl－D－aspartate receptor，NMDAR)依賴性鈣通道的參與[1，2]，然而對NMDAR拮抗劑的腦保護作用研究不盡人意[3]，使學者們的視線重新回到電壓門控性鈣通道和尋找其它類型的離子通道上。糖尿病是腦梗死獨立的危險因素之一。糖尿病基礎上的腦梗死癥狀重、多進展，預后差，但其確切機制尚不清楚，目前相關研究較少。本研究從離子通道角度研究糖尿病加重腦梗死的可能機制，對進一步加深糖尿病合并腦梗死的認識及進一步有效地干預具有重要意義。

材料和方法

1 動物、分組及主要試劑

雄性Wistar大鼠50只，體重220－240 g，由吉林大學基礎醫學院動物實驗中心提供。

1.1 分組 糖尿病組25只，正常組25只;根據局灶性腦缺血時間分為正常假手術組和單純缺血1 h、3 h、6 h、24 h組，每組5只;糖尿病假手術組和糖尿病局灶性缺血1 h、3 h、6 h、24 h 組，每組 5 只;共 10組。

1.2 主要試劑 鏈脲佐菌素(streptozotocin，STZ)和鏈霉蛋白酶(pronase)購自Sigma，人工腦脊液及記錄鈣通道電流的細胞內、外液為自配。

2 模型建立

2.1 糖尿病大鼠模型建立 高脂飲食4周后，參考文獻[4]并按照試劑說明，制備pH=4.2的檸檬酸緩沖液。按30 mg/kg稱取STZ，溶于檸檬酸緩沖液中，快速腹腔注射。7 d后尾靜脈取血，測空腹血糖≥16.7 mmol/L為造模成功。血糖高于30 mmol/L剔除實驗，隨機補充。

2.2 局灶腦缺血(middle cerebral artery occlusion，MCAO)模型的建立 MCAO模型以 Zea－Longa等[5]法為標準，選用尼龍線栓塞左側大腦中動脈。10%水合氯醛腹腔注射麻醉，頸部正中切口，找出左頸總動脈(left common carotid artery，LCCA)并游離，沿左側頸總動脈向頭端分離頸內、外動脈。分離翼額動脈并在其根部結扎。在頸總與頸內外動脈分叉處剪一小口，用0.28 mm的尼龍線插至顱內，深約(18.0±0.5)mm，直至左側大腦前動脈，引起局灶性腦缺血。待動物清醒后，觀察神經系統癥狀以判斷手術是否成功。參考文獻[5]的5分制法進行評分。0分:無神經損傷癥狀;1分:不能完全伸展對側前爪;2分:向對側轉圈;3分:向對側傾倒;4分:不能自發行走，意識喪失;5分:死亡。分值越高，說明動物癥狀越嚴重。造模成功的判定標準:以大鼠手術麻醉清醒后出現右側肢體癱瘓，站立不穩，提尾時向右側轉圈為模型成功的判斷標準。1－3分為納入標準，0分、4分或死亡剔除，缺少的隨機補充。實驗中選取腦缺血24 h的大鼠進行神經功能評分。

3 大鼠腦皮層神經元的急性分離

[6]于各時點大鼠斷頭取腦 ，快速移入冰冷(0－4℃)的孵育液中30－60 s，冷卻后在冰盤上取左側大腦半球缺血周圍組織，以振動切片機切成400－600 μm腦薄片，取皮層置于盛有孵育液中。室溫下孵育50 min，孵育過程中通入95%O2+5%CO2的混合氣后，移入濃度為0.4 g/L含有pronase的消化液中，32℃ 水浴消化30 min后用孵育液洗標本3次，移入另一個盛有孵育液的干凈燒杯中，依次用口徑遞減的3個吸管輕輕吹打，制成單細胞懸液 ，豎直靜置約5 min，吸取上部細胞懸液 ，加入培養皿內，約30 min細胞貼壁后用于實驗研究。

4 全細胞膜電流記錄方法

自配全細胞鈣通道電流所使用的浸溶液為(mmol/L):TEA － Cl 135，BaCl210，HEPES 10，葡萄糖10，pH用 TEA－OH 調整為7.4。電極溶液為(mmol/L):CsCl 130，MgCl21，EGTA 8，TEA － Cl 4，HEPES 4，ATP－Mg 4，磷酸肌酸 10，GTP －Li40.1，pH用TEA－OH調整為7.2。用兩次拉制法將毛坯拉成微電極，沖灌電極液后，電阻范圍為5－10 MΩ。將微電極緩緩插入浴液，接觸神經元細胞，當電極尖端與細胞膜表面形成1－5 GΩ封接電阻時，用力吸破電極尖端上的膜片，形成全細胞記錄。用Pclamp 6.03軟件，經數/模 (1200 D/A，AXON)轉換卡，通過膜片鉗放大器(CEZ－2400)鉗制細胞的膜電位，記錄不同電壓條件下的離子通道電流(從－50到+60，每次階躍10 mV)。實驗中電流的記錄在全細胞方式穩定5 min后進行。并應用Pclamp 6.03軟件采樣處理電流信號，采樣頻率為1 KHz，低通濾波器濾波頻率為3 kHz。細胞膜電容記錄方法:鉗制電壓為－80 mV，通過去極化脈沖使膜去極至－90 mV，時程為10 ms，通過積分計算得到單個細胞的膜電容。糖尿病腦缺血和單純腦缺血各鈣電流曲線來自不同細胞的不同時點，從保持點位階躍至－10 mV的最大電流。為便于比較，將不同時點的變化曲線整合于同一平面中。

5 統計學處理

應用SPSS 11.0軟件包，計量資料采用均數±標準差(±s)表示，組間比較用t檢驗;神經功能評分的組間比較用非參數檢驗，所得數據用平均秩表示。

結 果

1 血糖結果

糖尿病大鼠空腹血糖為(19.70±2.38)mmol/L，符合糖尿病診斷標準。

2 神經功能評分

對糖尿病局灶腦缺血24 h及單純缺血24 h大鼠進行神經評價，結果顯示糖尿病組大鼠術后清醒較晚，肢體偏癱程度重于單純缺血組，2組相比差異顯著(P＜0.05)，見表1。

表1 單純缺血與糖尿病局灶腦缺血24 h神經功能評分Table 1.Score of nerve function of rats in DM+MCAO and MCAO groups(n=8)

3 急性分離的大鼠皮層神經元細胞形態學鑒定

將急性分離后的貼壁細胞置于倒置顯微鏡(O-lympus)下，可以看到典型皮層神經元表面光潔，細胞胞體多呈錐形，有2－3個樹突，且有一較長的軸突，見圖1。根據神經元的形態可以斷定分離的細胞為皮層神經元錐體細胞，選取形態飽滿的細胞用于實驗。

4 大腦皮層神經元細胞電壓依賴性L－型鈣通道電流的鑒定

Figure 1.The cortical neurons by acute isolation under inverted microscope(×40).圖1 倒置顯微鏡下觀察急性分離的皮層神經元

使用全細胞膜片鉗技術，將分離的皮層神經元細胞鉗制在－50 mV，階躍命令為+10 mV，持續時間300 ms，鈣通道在去極化至－30 mV時被激活，最大內向峰值鈣電流在－10 mV為(11.02±2.02)pA/pF;向浸溶液灌流10 μmol/L nifedipin后，同樣方法檢測分離的神經元，結果發現在－10 mV為(7.08±2.08)pA/pF，可抑制大部分電流成分;相同的實驗條件向浸溶液灌流Bay K 8466 1 μmol/L，檢測分離完好的其他神經元，發現在－20 mV為(20.42±3.40)pA/pF，明顯激活此電流，最大峰值電流向左偏移－10 mV，表明為L－型鈣通道電流，與文獻報道相符合[7]，見圖2(圖中顯示原始電流曲線為 －50、－30、－10、+10、+30、+50 mV 時對應的電流，其結果來自同一大鼠的不同細胞，電流電壓關系曲線表示除以膜電容后的電流值)。

Figure 2.Primary current curves of calcium channel in cortex neurons of rats.A:control;B:nimodipine;C:Bay K 8644;D:I/V curves.圖2 大鼠大腦皮層鈣通道原始電流曲線

5 MCAO和DM+MCAO對大腦皮層神經元細胞L型電壓依賴鈣通道的影響

應用同樣實驗方法，實驗記錄了單純缺血和糖尿病局灶腦缺血1、3、6和24 h缺血周圍皮層神經元L型電壓依賴鈣通道電流的變化，表2所示，MCAO和DM+MCAO各組隨著缺血時間延長，L－電壓依賴型鈣通道電流明顯增高，與假手術組相比，P＜0.05;其中DM+MCAO各組的L－電壓依賴型鈣通道電流分別高于MCAO各組(P＜0.05)，見圖3、4。

表2 缺血各組大腦皮層神經元細胞電壓依賴型鈣通道電流(pA/pF)Table 2.L－type voltage－gated Ca2+channel current of cortical neurons in ischemia groups(pA/pF.±s.n=8)

表2 缺血各組大腦皮層神經元細胞電壓依賴型鈣通道電流(pA/pF)Table 2.L－type voltage－gated Ca2+channel current of cortical neurons in ischemia groups(pA/pF.±s.n=8)

*P＜0.05 vs MCAO.

Group Sham 1 h 3 h 6 h 24 h MCAO 11.02 ±2.02 12.19±1.2113.00 ±1.52 14.76±1.21 15.30±1.05 DM+MCAO 13.15 ±0.89*13.46±0.97*14.51 ±1.33*15.28±1.47*17.22±1.39*

Figure 3.Influence of different time of MCAO on calcium channel of cerebral cortex in rats.A:Ca2+channel current curves during different time of MCAO;B:I/V curves.圖3 單純缺血不同時間對大鼠大腦皮層鈣通道電流曲線的影響

Figure 4.Influence of different time of MCAO on calcium channel of cerebral cortex in DM rats.A:Ca2+channel current curves during different time of MCAO in DM rats;B:I/V curves.圖4 糖尿病大鼠局灶性腦缺血不同時間對大鼠大腦皮層鈣通道電流曲線的影響

討 論

細胞膜上分布著多種離子通道，感知細胞內外的各種變化，使通道處于開放/失活狀態。L－型電壓門控鈣通道(L －type voltage－gated calcium channels，L－VGCCs)廣泛分布于中樞神經系統，通過細胞膜上動作電位與梯度電位的變化調節鈣通道，使胞外的鈣離子進入細胞內，進行神經元之間信息交流，因此被認為是介導神經元鈣內流的主要途徑[8]。正常情況下內流的鈣參與多種細胞功能調控，而L－VGCCs的過度開放可以引起細胞內的鈣超載，觸發Ca2+依賴的級聯反應[9]，加重細胞損傷。

本研究應用全細胞膜片鉗技術記錄了單純局灶腦缺血不同時間缺血周邊皮層神經元鈣通道電流的變化，結果顯示單純局灶腦缺血各組中隨著缺血時間的延長，L型電壓門控鈣離子通道的Ca2+電流逐漸增大，Ca2+電流I－V曲線明顯下移，各組間比較P＜0.05，Ca2+電流的增大加重了細胞內的鈣內流，引起細胞損傷，這與文獻報道相一致[10]，再次證明了L－VGCCs的過度開放參與了腦缺血損傷。

應用同樣方法，我們記錄了糖尿病大鼠局灶腦缺血不同時間缺血周邊皮層神經元鈣通道電流的變化，結果顯示糖尿病腦缺血各組中隨著缺血時間的延長，L型電壓門控鈣離子通道的Ca2+電流逐漸增大，Ca2+電流I－V曲線明顯下移，各組間比較P＜0.05，與單純局灶腦缺血各組相比，糖尿病腦缺血各組Ca2+電流逐漸增大，相同時點2組間比較P＜0.05，說明糖尿病腦缺血時L－VGCCs通道開放明顯高于單純缺血組，且與缺血時間長短呈正相關。

Wang等[11]的一項關于缺氧條件下肺動脈細胞信號轉導機制的研究中發現ROS增加可以抑制電壓依賴鉀通道、增加鈣通道的活性;Amberg等[12]一項最新研究表明自由基的增加導致了蛋白激酶C活性的增強，使局部的L－VGCCs激活，增加鈣內流，說明氧化應激損傷促進了L－VGCCs的開放。我們前期工作中證實在糖尿病局灶腦缺血時AGEs、RAGE表達增加[13]，而AGEs增加的結果則使自由基生成增多[14]。因此，我們可以得出如下結論:糖尿病腦缺血時L－VGCCs過度開放、Ca2+電流增大引起細胞內鈣超載加重，這可能是糖尿病腦缺血損傷加重的機制之一，原因與氧化應激損傷有關，然而氧化應激如何參與L－VGCCs過度開放則需在以后的研究中進一步明確。

[參 考 文 獻]

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