P53結合位點對人NOD8基因的調控*

曾 琪， 張 蕓， 田 莉， 唐清亮， 胡巢鳳△， 柏志全

(暨南大學醫學院 1病理生理學系,國家中醫藥管理局重點實驗室,2生理學系，廣東 廣州 510632)

P53結合位點對人NOD8基因的調控*

曾 琪1▲， 張 蕓1▲， 田 莉1， 唐清亮1， 胡巢鳳1△， 柏志全2

(暨南大學醫學院1病理生理學系,國家中醫藥管理局重點實驗室,2生理學系，廣東 廣州 510632)

目的： 探討P53結合位點在NOD8基因調控中的作用。方法利用生物信息學方法，我們發現人與黑猩猩的NOD8基因核心啟動子區域相似位置含有P53結合位點；以人基因組DNA為模板, PCR擴增含有人NOD8基因序列，構建含有/缺失人P53結合位點的NOD8基因啟動子驅動的、表達綠色熒光蛋白-NOD8融合蛋白的質粒pNOD8(760 bp)-EGFP-NOD8和mpNOD8(750 bp)-EGFP-NOD8；將構建的重組質粒經陽離子聚合物JetPeiTM介導瞬時轉染HEK293細胞中，并加入不同濃度的P53抑制劑pifithrin alpha(PFT-α)處理HEK293細胞，用RT-PCR和Westren blotting 方法檢測NOD8 mRNA和蛋白的表達；此外，用pNOD8(760 bp)-EGFP質粒轉染HEK293細胞，利用染色質免疫共沉淀法(ChIP)觀察P53是否與NOD8啟動子結合。結果經酶切鑒定和序列測定證實重組質粒構建成功。ChIP實驗證實P53能與NOD8啟動子結合。 pNOD8 (760 bp)-EGFP-NOD8 轉染組中NOD8 mRNA的表達顯著高于pEGFP-C2轉染組(Plt;0.05)，并且NOD8 mRNA 在缺失人P53結合位點的mpNOD8 (750 bp)-EGFP-NOD8轉染組中的表達明顯降低(Plt;0.01)；同時發現加入 PFT-α的pNOD8(760 bp)-EGFP-NOD8 轉染組NOD8 mRNA的表達顯著下降，并呈劑量依賴關系，其中90 μmol/L PFT-α 對NOD8 mRNA表達的抑制作用最為顯著(Plt;0.01)。與mRNA檢測結果一致的是pNOD8(760 bp)-EGFP-NOD8 轉染組NOD8蛋白的表達量顯著高于對照組pEGFP-C2； 而mpNOD8(750 bp)-EGFP-NOD8轉染組NOD8蛋白的表達量明顯低于pNOD8(760 bp)-EGFP-NOD8轉染組和加入 PFT-α的pNOD8(760 bp)-EGFP-NOD8 轉染組(Plt;0.01)。結論P53結合位點在NOD8基因調控中起著重要的作用，并且P53結合位點與NOD8基因之間可能存在正反饋調節。

啟動子; 基因,NOD8; P53 結合位點; 核苷酸結合寡聚結構域樣受體

在長期進化過程中，機體的免疫系統逐步形成一套復雜的防御系統，包括天然免疫和獲得性免疫。天然免疫系統通過模式識別受體(pattern recognition receptors, PRRs)對病原體進行識別,從而發揮固有免疫作用[1]。目前研究發現的核苷酸結合寡聚結構域(nucleotide-binding and oligomerization domain, NOD)樣受體(NOD-like receptors, NLRs)是胞內受體，NLRs家族由20多個成員組成，它們的主要特征是具有N末端的CARD(caspase-recruitment domain)結構域或pyrin結構域(pyrin domain， PYD)，位于中央的NOD以及C-末端富含亮氨酸的重復序列(leucine-rich repeat, LRR)。LRRs識別細菌肽聚糖的部分結構，為病原細胞之間蛋白-蛋白的相互作用提供支架并調節蛋白的激活[2]。N-末端CARD結構域或PYD與接頭蛋白RICK或ASC(apoptosis-associated speck-like protein containing a CARD)相互作用，激活NF-κB，引起炎癥反應[3-5]。

近年來研究發現一種在體外具有抗炎活性的新型NLRs,它由N末端的PYD和中間的NOD組成，與該家族的其它蛋白不同之處是C-末端缺乏作為配體識別區域的富含亮氨酸的重復序列LRRs，故被命名為NOD8(也稱PYNOD、NLRP10、NALP10、CLR11.1或PAN5)[6-7]。研究發現NOD8可抑制由caspase-1介導的IL-1β的分泌以及抑制ASC介導的NF-κB的活化和細胞凋亡。這是NLR家族中首個被發現的對炎癥起負調節作用的成員。

我們應用生物信息學方法對不同種屬的NOD8啟動子內保守序列進行分析，發現在人與黑猩猩的NOD8基因核心啟動子區域相似位置含有P53結合位點，P53作為生理和病理過程中的轉錄因子，調控著許多免疫反應的調節子。本研究將構建含有/缺失P53結合位點的人NOD8基因啟動子驅動的、表達綠色熒光蛋白-NOD8融合蛋白表達載體，探討P53結合位點是否在NOD8基因調控中發揮作用。

材 料 和 方 法

1材料

質粒pEGFP- C2和大腸桿菌E.coliDH5α為本室保存； DNA多聚酶Pyrobest、dNTP、Trizol裂解液及相關的buffer購自大連TaKaRa；限制性內切酶XhoI和KpnI為MBI產品；T4 DNA 連接酶購自Promega；DNA marker 等為北京普博公司產品。質粒小量抽提試劑盒，PCR 產物純化及膠回收試劑盒購自Omega；pifithrin alpha(PFT-α)為 Calbiochem產品；二甲基亞砜(dimethyl sulfoxide,DMSO)為Sigma產品；細胞轉染所用的陽離子聚合物JetPeiTM為Polyplus產品；HEK293購自中科院上海細胞所。細胞培養基DMEM為HyClone產品, 胎牛血清為杭州四季青公司產品;所用抗體均購自Santa Cruz。常用試劑中電泳及分離試劑均為分析純試劑配制。

2方法

2.1pNOD8(760)-EGFP和mpNOD8(750)-EGFP質粒的構建 這2個質粒為本實驗前期構建。根據GenBank提供的NOD8基因組序列(序列號NM_176821)和所選用的質粒pEGFP-C2設計合成引物，所擴增啟動子區域的片段大小為760 bp，其中包括了P53結合位點(GGCAAATGGG)；構建了NOD8基因啟動子pNOD8(760)-EGFP質粒；并在此質粒上將P53結合位點缺失突變，構建了突變質粒mpNOD8(750)-EGFP[8]。

2.2染色質免疫共沉淀(chromatin immunoprecipitation,ChIP)驗證P53與NOD8啟動子的結合 將HEK293 細胞以3×106cells/well加入6孔板，轉染pNOD8(760)-EGFP質粒48 h后，1% 甲醛處理細胞10 min ，用Millipore ChIP Kit 分析P53與NOD8啟動子間的相互作用(按說明書操作)。P53抗體為山羊抗性(Santa Cruz Biotechnology) ；從蛋白-DNA復合物中分離得到的DNA片段被純化并進行PCR分析，同時以基因組基因為模板擴增GAPDH作為陽性對照，并以在相同條件處理，用小鼠IgG抗體進行ChIP實驗所得的基因片段作為陰性對照模板。NOD8上游引物5’-CCATC CGTCTAAGGAGGCATACAG-3’，下游引物5’-GCAAAGCTCCAAGAAAG ACAAG-3’， 擴增片段長度250 bp；GAPDH 上游引物5’-AGCACCCCTGGCCAAGGTCA -3’，下游引物5’-CAATGCCAGCCCCAGCGTCA-3’， 擴增片段長度454 bp。PCR 反應條件為：95 ℃預變性3 min，95 ℃ 30 s，58 ℃ 30 s，72 ℃ 40 s ，40個循環；72 ℃ 10 min。擴增產物在含0.5 mg/L溴化乙啶(EB)的10 g/L瓊脂糖凝膠中電泳分析，用紫外觀測儀觀察結果。

2.3PCR擴增NOD8基因及回收 根據GenBank提供的NOD8基因組序列(序列號NM_176821)和所選用的質粒pEGFP-C2設計合成1對引物。所擴增的片段大小為1 968 bp；引物由上海生工合成。上游引物為5’ - CCGCTCGAGCCTTCCCCCAGATCACCAT - 3’，下游引物為5’- CGGGGTACCATATGTAAGTATTTTTTGGTGTTT - 3’。在上游引物和下游引物的5′端分別引入XhoI和KpnI 的酶切位點(下劃線序列) 。以人基因組DNA為模板, PCR擴增出相應片段，反應體系如下：模版1 μL、10 ×PCR緩沖液2 μL、引物(10 mol/L ) 各 1 μL、TaqDNA聚合酶0.5 μL及10 mmol/L dNTP 2 μL, 加H2O至50 μL混勻。PCR 反應條件為：95 ℃預變性5 min，94 ℃ 30 s，55 ℃ 30 s ，72 ℃ 2 min ，35 個循環，72 ℃ 10 min。擴增產物在含0.5mg/L溴化乙啶的10 g/L瓊脂糖凝膠中電泳分析，用紫外觀測儀觀察結果后，用Omega Agarose Gel DNA Purification Kit膠回收試劑盒切膠回收目的DNA片段(按說明書操作)。

2.4重組質粒構建與鑒定 限制性內切酶XhoI 和KpnI 雙酶切帶有酶切位點的目的NOD8基因片段及pNOD8(760 bp)-EGFP、mpNOD8(750 bp)-EGFP質粒，用10g/L瓊脂糖凝膠電泳分離目的片段，切膠回收NOD8片段和線性化的pNOD8- EGFP、mpNOD8(750 bp)-EGFP, 在T4 DNA連接酶作用下16 ℃連接過夜。以Mandel等[9]提出的氯化鈣法制備感受態細菌，連接產物轉化大腸桿菌DH5α，將轉化的菌液涂布于含卡那霉素的LB平板上,37 ℃培養16 h ,挑取陽性克隆，擴大培養后小量提取質粒, 進行XhoI和KpnI雙酶切鑒定和PCR鑒定。經上述方法鑒定后的pNOD8(760 bp)- EGFP-NOD8和mpNOD8 (750 bp)-EGFP-NOD8重組質粒進行DNA序列分析，由大連TaKaRa公司測序,序列確證無誤后，再大量擴增。

2.5細胞培養及細胞基因轉染 采用DMEM培養液，按總溶液體積的10%添加胎牛血清及青霉素和鏈霉素各100 mg/L，在37 ℃、5%CO2條件下進行細胞培養。轉染前1 d 將HEK293細胞按5×108/L的密度分別接種于6孔板內,所有實驗組待細胞生長至70%融合時進行轉染。將2 μg質粒DNA稀釋于150 mmol/L NaCl至終體積150 μL, 取4 μL JetPeiTM，用150 μL 150 mmol/L NaCl稀釋并混勻。隨后，制備JetPeiTM/DNA復合物，將150 μL JetPeiTM溶液加入150 μL DNA溶液中。室溫下孵育20 min；將JetPeiTM/DNA復合物加入12孔板，輕輕混勻，置于CO2培養箱(37 ℃、5%CO2)中孵育。48 h后用含800 mg/L G418 (Sigma)DMEM培養基對轉染細胞進行篩選，10 d 后改用400 mg/L G418 DMEM培養基進行培養3～4 d，直至細胞融合。

2.6四甲基偶氮唑鹽法(MTT)檢測 將HEK293細胞以1×104cells/well 鋪于96孔板，每組設4個復孔，并設與實驗平行的本底對照孔。細胞長滿78%～80%后加入不同濃度的PFT-α，孵育48 h后，每孔加入20 μL質量濃度為5 g/L的MTT溶液，37 ℃、5%CO2培養箱內孵育4 h，棄孔內液體，加入150 μL DMSO振蕩10 min，在酶標儀上檢測595 nm的吸光度值。細胞存活率=(加藥組A值-不加細胞組A值)/(對照組A值-不加細胞組A值)×100%。

2.7檢測PFT-α 對NOD8 mRNA表達的影響 實驗分組：在質粒轉染HEK293細胞48 h后，分為(1)pEGFP- C2轉染組(對照組)；(2)pNOD8(760 bp)-EGFP-NOD8轉染組；(3)mpNOD8(750 bp)-EGFP-NOD8轉染組；(4)加入不同濃度的PFT-α (P53 抑制劑)的pNOD8(760 bp)-EGFP-NOD8轉染組，PFT-α 在轉染前5 h以 20、 60、 90 μmol/ L 加入培養板中,然后處理同其它組轉染HEK293細胞,轉染后3 h, 將細胞用PBS洗2次，用含有PFT-α的DMEM培養細胞。收集上述處理組中的HEK293細胞以PBS洗滌后，加入500 μL/well Trizol裂解液，按說明書提取總RNA。逆轉錄：取0.5 μg細胞總RNA，加入0.5 μL逆轉錄酶, 按說明書合成cDNA。上游引物5’-CCATCCGTCTAAGGAGGC -3’ ，下游引物5’- GCAAAGCTCCAAGAAAG-3’，擴增產物長度為229 bp ;并設計GAPDH引物為內參對照，上游引物5’-AGCACCCCTGGCCAAGGTCA -3’，下游引物5’- CAATGCCAGCCCCAGCGTCA-3’。PCR反應體系20 μL，反應條件： 95 ℃ 5 min，94 ℃ 30 s，58 ℃ 30 s, 72 ℃ 30 s ， 30個循環；72 ℃ 10 min。 擴增出的NOD8片段，用1.5%瓊脂糖凝膠電泳進行觀察其與預期DNA片段大小是否一致，并進行半定量灰度值分析：

NOD8 mRNA相對量=(NOD8灰度值/GAPDH灰度值)/(control組NOD8灰度值/control組GAPDH灰度值)×100%。

2.8Western blotting分析NOD8蛋白表達 實驗分組：(1)pEGFP-C2轉染組；(2)pNOD8(760 bp)-EGFP-NOD8轉染組；(3)mpNOD8(750 bp)-EGFP-NOD8轉染組；(4)加入90 μmol/L PFT-α的pNOD8(760 bp)-EGFP-NOD8轉染組。收集各轉染組細胞經PBS洗滌3次后, 加入細胞裂解液50 μL, 冰浴30 min, 12 000 r /min離心 15 min, 取上清加入等體積的 5×SDS上樣緩沖液煮沸5 min。以 15 μL /well加樣經50 g/L積層膠后進行120 g/L分離膠 SDS-PAGE電泳, 常規方法在Bio-Rad系統轉移至硝酸纖維素膜上, 50 g/L脫脂奶粉封閉過夜; 第2 d TBST洗膜后,加入抗NOD8單克隆抗體 (mAb) (1 g/L) (1∶500)置搖床室溫溫育 2 h, 洗滌30 min后加入辣根過氧化物酶標記的兔抗山羊IgG(1∶2 000)為Ⅱ抗, 同上反應; 再次洗滌3次,每次10 min,然后用 ECL化學發光顯影, GAPDH作為內參照。NOD8 蛋白相對量=(NOD8灰度值/GAPDH灰度值)/(control組NOD8灰度值/control組GAPDH灰度值)×100%。

3統計學處理

結 果

1ChIP實驗結果

HEK293細胞轉染pNOD8(760 bp)-EGFP質粒48 h后，經ChIP實驗證實P53能夠結合到NOD8基因啟動子上。與P53抗體結合的DNA片段經PCR反應可見大量NOD8啟動子擴增片段，片段長度為250 bp；小鼠IgG陰性對照組經PCR反應后未見特異性擴增片段，而在以全基因組片段為模板的GAPDH組中，可見大小約為454 bp大小的片段，但在與P53抗體結合的基因片段為模板的PCR反應中未擴增出特異性條帶，證實免疫共沉淀成功，見圖1。

Figure 1. Binding of P53 to the NOD8 promoter was validated by ChIP. Before immunoprecipitation, an aliquot of each sample was served as an ‘input’ fraction (PCR control).

2NOD8基因DNA片段的PCR擴增

瓊脂糖凝膠電泳顯示, 擴增基因片段的大小分別為1 968 bp，結果與預期設計一致，見圖2A。

3重組表達載體鑒定

將構建的2個重組質粒pNOD8(760 bp)-EGFP-NOD8和mpNOD8(750 bp)- EGFP-NOD8用XhoI 和KpnI雙酶切,分別獲得大小為1 968 bp的基因片段，見圖2B，表明人NOD8基因序列已被插入到pEGFP-C2中，并且P53結合位點缺失突變成功。重組質粒由TaKaRa公司進行序列檢測,測定結果聯網到NCBI進行同源性分析, 同源性為100%。測序結果與GenBank 數據庫相應的NOD8基因DNA 序列完全一致，表明含有/缺失人P53結合位點的NOD8基因啟動子驅動的、表達綠色熒光蛋白-NOD8融合蛋白的質粒構建成功。

Figure 2. Identification of NOD8 gene recombinant plasmids. A: the NOD8 gene fragments obtained from PCR were separated by 1% agarose electrophoresis. Lane1: marker; Lane 2: the NOD8 gene fragment. B: identification of recombinant plasmids digested with Xho I and Kpn I restriction enzymes. Lane1: pNOD8(760 bp)-EGFP-NOD8; Lane2 :mpNOD8(750 bp)- EGFP-NOD8; Lane 3: marker.

4PFT-α對HEK293細胞活性的影響

不同濃度的PFT-α處理HEK293細胞48 h后，細胞活性不受影響，見圖3，與空白對照組相比，差異無統計學意義(Pgt;0.05)。因此本實驗選取20、60、90 μmol/L 3個劑量作為后續研究中的給藥濃度。

Figure 3. Effect of PFT-α on HEK293 viability.

5轉染不同質粒的HEK293細胞NOD8mRNA的表達

RT-PCR 結果顯示，所有待分析樣本的 cDNA均擴增出強度基本一致的GAPDH,表明 cDNA質量穩定,可用于靶基因的表達分析。采用上述特異性引物可擴增出大約229 bp的目的基因片段和454 bp的內參基因片段，見圖4A。pNOD8(760 bp)-EGFP-NOD8轉染組NOD8 mRNA的表達顯著高于對照pEGFP-C2轉染組，是其(138.4±6.4)%；而NOD8 mRNA在mpNOD8(750 bp)-EGFP-NOD8組中的表達最低為對照組的(49.2±3.5)%，并且顯著低于b組(Plt;0.01)，見圖4B。

Figure 4. Relative NOD8 mRNA level after transfection and treatment with PFT-α . A: expression of NOD8 mRNA by 1%agarose gel electrophoresis;B: quantitation of NOD8 mRNA expression in HEK293 cells. a: pEGFP-C2; b: pNOD8(760 bp)- EGFP-NOD8; c: mpNOD8(750 bp)- EGFP-NOD8; d～f: pNOD8(760 bp)- EGFP-NOD8 and treated with PFT-α (20, 60, 90 μmol/L),respectively±s.n=3.*Plt;0.05,**Plt;0.01 vs b group.

6PFT-α對NOD8mRNA表達的影響

加入P53抑制劑PFT-α的pNOD8(760 bp)-EGFP-NOD8 轉染組中NOD8 mRNA表達顯著下降，且與PFT-α 呈劑量依賴關系，其中以90 μmol/L PFT-α 對NOD8 mRNA表達的抑制作用最為顯著，見圖4B，為a組的(72.5±2.6)%。這些結果表明NOD8啟動子中P53結合位點具有上調NOD8基因的作用。

7NOD8蛋白在HEK293細胞中的表達

為進一步研究P53 結合位點對NOD8的調控作用，我們用Western bloting 檢測各轉染組[pEGFP-C2、pNOD8(760 bp)-EGFP-NOD8、mpNOD8(750 bp)- EGFP-NOD8和PFT-α處理的pNOD8(760 bp)-EGFP-NOD8]中NOD8蛋白的表達，見圖5A。NOD8蛋白在 pNOD8(760 bp)-EGFP-NOD8 轉染組中的表達量顯著高于對照組pEGFP-C2；與mRNA檢測結果一致的是，突變質粒mpNOD8(750 bp)-EGFP-NOD8和PFT-α處理的pNOD8(760 bp)-EGFP-NOD8)轉染組NOD8蛋白的表達明顯低于pNOD8(760 bp)-EGFP-NOD8轉染組，分別為其(31.2±4.9)%和(50.5±3.4)%,Plt;0.01,見圖5。基于以上結果推測，P53可與NOD8基因啟動子上的P53結合位點相互作用，并上調NOD8蛋白的表達。

Figure 5. NOD8 protein expression detected by Western blotting analysis. a:pEGFP-C2; b: pNOD8(760 bp)-EGFP-NOD8; c: mpNOD8(750 bp)-EGFP-NOD8; d: pNOD8(760 bp)-EGFP- NOD8 treatment with 90 μmol/L PFT-α.±s.n=4.*Plt;0.05 vs a group;##Plt;0.01 vs b group.

討 論

NLRs 廣泛存在于植物、線蟲、脊椎動物和人類的胞漿內,在遺傳上高度保守，參與對細菌的識別及誘導炎癥反應。NOD8基因位于16q12，編碼NOD8蛋白，它的mRNA可表達于各種組織中。近年來發現，NOD8可與ASC相互作用并抑制ASC的多種功能，包括對NF-κB和caspase-1的激活,以及誘導凋亡。NOD8還可以與 caspase-1和 IL-1β 相互作用并能抑制caspase-1介導IL-1β的成熟。因此，NOD8可能是一個炎癥與凋亡的多功能負調節因子[7]。NOD8在腦、心臟和肌肉高表達，而ASC在這些組織中的表達恰好相對較低，因此NOD8可能在ASC介導的炎癥或凋亡中起著保護作用[10]。

轉錄因子在調節級聯反應中起著重要作用，它可以與啟動子中特殊的DNA序列直接結合從而發揮促進或抑制基因轉錄的作用。在本研究中，我們運用生物信息學方法發現在人與黑猩猩的NOD8基因核心啟動子區域相似位置含有P53結合位點；另一方面，在小鼠與大鼠的啟動子區域沒有P53結合位點。因此我們認為在人與黑猩猩的NOD8基因調控中有著高度相似的機制。這種假設被研究人與黑猩猩之間全基因組調控進化論所支持[11]。我們認為該結合位點在NOD8基因的調控中扮演了重要的作用 。

我們前期的實驗發現，在靜息細胞中，含有P53結合位點的NOD8啟動子重組質粒能驅動的綠色熒光蛋白表達，但熒光強度較陽性對照pEGFP-C2組低，說明NOD8基因啟動子在轉錄起始位點上游-710 bp ～ -50 bp處已包含了需要起始轉錄的基本轉錄元件；而缺失P53結合位點的突變質粒mpNOD8-EGFP和加入PFT-α后的重組質粒pNOD8-EGFP綠色熒光蛋白表達顯著減弱。說明P53結合位點在NOD8基因調控中發揮了正調節作用[8]。

為進一步研究 P53 結合位點對NOD8基因的調控作用，我們在前期實驗基礎上，通過ChIP方法證實了P53可以與NOD8啟動子結合；同時構建了pNOD8(760 bp)-EGFP-NOD8和mpNOD8(750bp)-EGFP-NOD8重組質粒。將重組質粒轉染進入HEK293細胞后發現，mpNOD8(750 bp)-EGFP-NOD8轉染組(NOD8啟動子中的P53結合位點被缺失突變) NOD8 mRNA的表達顯著低于pNOD8(760 bp)-EGFP-NOD8轉染組(NOD8啟動子中包含P53結合位點)；并且加入P53抑制劑PFT-α的pNOD8(760 bp)-EGFP-NOD8轉染組NOD8 mRNA的表達也明顯降低。此外，在mpNOD8(750 bp)-EGFP-NOD8轉染組或轉染pNOD8(760 bp)- EGFP-NOD8質粒并加入P53抑制劑的細胞中NOD8蛋白表達也顯著低于pNOD8(760 bp)-EGFP-NOD8轉染組。這些結果說明，P53可以與NOD8基因啟動子上的P53結合位點結合，并且上調NOD8的表達，P53結合位點在NOD8基因調控中發揮了正調節作用。這種正性反饋調節可能在病原體入侵機體時發揮有效的抗炎作用，防止過度炎癥造成的自我損傷，這對進一步了解天然免疫反應具有重要意義。

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EffectofP53bindingsiteonregulationofhumanNOD8gene

ZENG Qi1, ZHANG Yun1, TIAN Li1, TANG Qing-liang1, HU Chao-feng1, BAI Zhi-quan2

(1DepartmentofPathophysiology,KeyLaboratoryofStateAdministrationofTraditionalChineseMedicineofthePeople’sRepublicofChina,2DepartmentofPhysiology,SchoolofMedicine,JinanUniversity,Guangzhou510632,China.E-mail:thcf@jnu.edu.cn)

AIM: To investigated the characterization and biological function of P53 binding element in the regulation ofNOD8 gene.METHODSUsing the method of bioinformatics, we found a completely preserved P53 binding site inNOD8 core promoter both in humans and chimpanzees.NOD8 gene was amplified by PCR from human cDNA and correctly connected into the vector pNOD8(760 bp)-EGFP-C2/ mpNOD8(750 bp)-EGFP-C2. The constructed plasmids pNOD8(760 bp)-EGFP-NOD8 and mpNOD8(750 bp)-EGFP-NOD8 were transiently transfected into the cell line HEK293 by JetPeiTMand treated with pifithrin alpha (PFT-α，an inhibitor of P53) at different concentrations for 24 h. The mRNA and protein expression levels of NOD8 were detected by RT-PCR and Western blotting. In addition, chromatin immunoprecipitation (ChIP) assay was performed to determine the binding of P53 to theNOD8 promoter after recombinant plasmid pNOD8(760 bp)-EGFP was transfected into HEK293 cells.RESULTSThe plasmids pNOD8(760 bp) -EGFP-NOD8 and mpNOD8(750 bp)-EGFP-NOD8 were successfully constructed and conformed by restriction digestion and sequence analysis. The results of ChIP confirmed that P53 bound to the promoter ofNOD8. The mRNA expression of NOD8 in the cells transfected with pNOD8(760 bp)-EGFP-NOD8 was stronger than that in the cells transfected with control vector pEGFP-C2 (Plt;0.05). Furthermore, the mRNA expression of NOD8 was reduced in HEK293 cells transfectnt with the mutant plasmid mp NOD8 (750 bp)-EGFP-NOD8 compared with the cells transfected with pNOD8(760 bp)-EGFP-NOD8. Meanwhile, PFT-α inhibited the mRNA expression of NOD8 in the cells transfected with pNOD8(760 bp)-EGFP-NOD8 in a concentration-dependent manner, and PFT-α at concentration of 90 μmol/L was the most effective in inhibiting NOD8 mRNA expression (Plt;0.01). As expected, the protein expression of NOD8 inpNOD8 (760 bp)-EGFP-NOD8 group significantly increased compared with that inpNOD8-C2 group, the protein expression of NOD8 in mpNOD8 (750 bp)-EGFP-NOD8 group orpNOD8 (760 bp)-EGFP-NOD8 + PFT-α group was dramatically decreased compared with that in pNOD8(760 bp) -EGFP-NOD8 group.CONCLUSIONThe results suggest that the P53 binding site is critical for the regulation ofNOD8 gene and there is positive feedback regulation between P53 binding site andNOD8, which may maintain efficient balance between defense and self-inflicted injury in response to the invasion of pathogen.

Promoter; Genes,NOD8; P53 binding site; Nucleotide-binding and oligomerization domain-like receptors

1000-4718(2011)12-2362-06

R363

A

10.3969/j.issn.1000-4718.2011.12.023

2011-11-09

2011-11-21

廣東省自然科學基金資助項目 (No. 06025159);廣東省教育廳自然科學基金資助項目[No. 126 (2005)];暨南大學“211工程”三期預研項目;暨南大學重點實驗室基金資助項目

△ 通訊作者 Tel: 020-85228079; E-mail: thcf@jnu.edu.cn

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