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組織型激肽釋放酶對腦缺血大鼠神經生長因子的影響

2012-10-16 01:15:14王金春商艷君
實用藥物與臨床 2012年2期

邊 穎,王金春,商艷君

激肽釋放酶-激肽系統(Kallikrein-kinin system,KKS)在人體內分布較廣,可協調機體內多種功能,如穩定血壓、協調內環境、抑制炎性反應及促進血管再生等[1]。中樞神經系統的功能穩定依賴KKS的調控[2]。本實驗通過觀察大鼠的神經功能恢復情況,用免疫組化染色的方法測定神經生長因子(NGF)的表達,以證明其對中樞神經系統損傷修復的作用可能與NGF等神經營養因子有關,為進一步臨床治療提供實驗依據。

1 實驗方法

1.1 實驗動物及分組 Wistar大鼠36只,由中國醫科大學實驗動物中心提供,體質量270~300 g。將36只動物隨機分為3組。空白對照組:改良的Longa[3]栓線法制作大鼠右側大腦中動脈閉塞(MCAO)模型;鹽水對照組(NS組):大腦中動脈閉塞后8 h,腹腔注射 NS 2 mL/(kg·d);TK治療組(TK組):右側大腦中動脈閉塞后8 h,腹腔注射TK 1 715 ×10-3U/(kg·d)。

1.2 MCAO模型的制作 取成年Wistar大鼠,體質量270~300 g。10%水合氯醛0.35 g/kg,腹腔注射麻醉。小心剝離右側迷走神經與頸總動脈,結扎頸外與頸總動脈,夾閉頸總動脈遠端,用針頭在近結扎線處刺入頸總動脈,將直徑為0.26 mm的魚線插入頸總動脈,前行入頸內動脈,距頸內、頸外動脈分叉處約1.8~2.0 cm感到有阻力時停止,即大腦中動脈區。1 h后去除栓塞線。大鼠蘇醒后,若有追尾現象,原地轉圈,且向左側傾倒,右側Horner征,左前肢屈曲等即表明梗死模型成功。注意魚線不能插入過深,否則易致蛛網膜下腔出血。

2 檢測指標及方法

2.1 神經功能缺失評分 實驗前先對大鼠進行訓練,采用神經損傷評分[4](NSS)。術后第1天,NSS 8~12分的大鼠進入本實驗。術后第1、3、7天,對3組大鼠進行評分及方差分析。

2.2 腦梗死體積測定 將大腦由額極至枕極分為5枚腦片,2 mm/片,立即置于2%TTC(紅四氮唑)溶液中,37℃水浴30 min,4%多聚甲醛固定30 min。顯微圖像分析系統采集每片腦切片上、下面圖像,分析每片腦切片上、下面腦梗死面積。根據梯形法則計算腦梗死體積。

2.3 免疫組化染色 梗死后3d,將大鼠用10%水合氯醛麻醉,4%多聚甲醛心內灌注后取腦,固定24 h,組織脫水包埋。在梗死灶中心部位,相當于以前囟為中心,冠狀面 +1~-1 mm,每隔100 μm,連續7 μm 切片5張,對NGF進行免疫組化染色。一抗為兔抗NGF(1∶200),二抗為生物素化羊抗兔IgG。顯色底物為DAB顯色劑。

2.4 NGF測定 將染色后的腦組織切片取梗死周圍皮質,進行顯微圖像采集、分析(Meta Morph/DP10/BX41),記錄經過處理軟件包量化后的灰度值。2.5 統計學方法 用SPSS11.0統計軟件做方差分析。數據以均數±標準差()表示,P<0.05為差異有統計學意義。

3 結果

3.1 NSS評分 3組神經功能缺損減輕。TK組第3天NSS評分與其他2組的差異有統計學意義(P<0.05)。見表1。

表1 各組NSS評分()

表1 各組NSS評分()

注:*與TK組比較,P<0.05;#與NS組比較,P>0.05

組別 第1天 第3天 第7天空白對照組 9 8.90±1.12*#9 4.30±0.55 6.48±0.79 7.98±1.23 NS組 9 8.50±0.71* 7.56±0.85 TK組

3.2 動物模型經切片、TTC(紅四氮唑)染色 見圖1~圖2。

圖1 大鼠MCAO模型

圖2 大鼠MCAO模型

3.3 腦梗死體積的比較 3組均有梗死灶形成,但TK組梗死灶體積(30.54% ±3.47%)較NS組、空白對照組(38.43% ±5.73%,39.67%±4.98%)明顯減輕(P<0.05)。

3.4 缺血區NGF免疫組化結果 大腦中動脈閉塞后腦缺血區NGF增多,而注射TK后,NGF細胞明顯增多,TK組與其他2組比較,差異有統計學意義(P<0.05)。見表2及圖3~圖4。

表2 各組腦組織切片中NGF灰度值比較()

表2 各組腦組織切片中NGF灰度值比較()

注:*與TK組比較,P<0.05,#與NS組比較,P>0.05

1d 3d 7d空白對照組 172.04±0.13*# 166.95±0.57 170.54±1.03*#組別NS組 173.10±0.24* 166.56±0.63*170.94±0.76*TK組166.32±0.37 154.64±0.51 160.86±0.38

圖3 NS組3d NGF的表達(400×)

圖4 TK組3d NGF的表達(400×)

4 討論

有學者提出,腦組織缺血性損傷早期,如果KKS受到激活而參與一系列的生理生化反應,可以加重腦組織損傷,原因為KKS增加通透性和腦水腫[6]。Zausinger等[7]研究顯示,在局灶性腦缺血前30 min給予激肽B2受體拮抗劑(LF16-0687MS),可加快缺血性腦組織的功能恢復。另外,Xia等[8]提出,在腦組織缺血后 8 h,給予不同的治療,結果不同:注射人TK基因可使大鼠缺血性腦梗死的體積縮小;而LF16-0687MS能加重缺血性腦梗死的再灌注損傷。得出不同的結論與TK治療的時間有關:TK在早期可使腦水腫加重,但后期卻能通過抑制細胞凋亡而起到神經保護作用。倪耀輝等[9]研究顯示,在大鼠腦缺血再灌注后8 h給予TK,對腦缺血有明顯的治療作用,可減輕炎性反應,同時還能降低梗死灶內的細胞凋亡;明顯增加缺血區神經細胞、神經膠質細胞和血管上皮細胞的增生。因此,推斷TK是通過促進血管、神經組織再生以及抑制局灶缺血區的細胞凋亡、炎性反應而發揮治療作用[10-11]。

本研究顯示,在大鼠大腦中動脈閉塞再灌注后8 h注射TK,可改善大鼠的神經功能缺損,并減少大鼠腦梗死體積,使腦缺血區NGF表達增多。結果表明,在腦缺血較晚期,TK有明顯的治療效果。另外,應用TK治療能明顯增加缺血區的NGF表達,表明腦梗死時,TK有促進神經細胞再生的作用。NGF能加速神經元生長、分化及維持其功能,在腦內能保護神經元抵御很多類型的損傷。因此,得出結論,通過保護神經元、促進軸突再生而減輕中樞神經系統損傷。這為臨床應用TK治療缺血性腦梗死提供了重要的理論依據。

[1]Emami N,Diamandis EP.Human tissue kallikreins:A road under constration[J].Clin Chim Acta,2007,381(1):78-84.

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[3]Longa EZ,Weinstein PR,Carlson L,et al.Versible middle cerebral artery occlusion without craniectomy in rats[J].Stroke,1989,20(1):84-91.

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[5]Gerriets T,Li F,Silva MD,et al.The macrosphere model:evaluation of a new stroke model for permanent middle cerebral artery occlusion in rats[J].J Neurosci Methods,2003,122(2):201-211.

[6]Lumenta DB,Plesnila N,Klasner B,et al.Neuroprotective effects of a post ischemic treatment with a bradykinin B2 receptor antagonist in a rat model of temporary focal cerebral ischemia[J].Brain Research,2006,1069(1):227-234.

[7]Zausinger S,Lumenta DB,Pruneaud,et al.Effects of LF 16-0687 Ms,a bradykinin B2 receptor antagonist,on brain edema formation and tissue damage in a rat model of temporary focal cerebral ischemia[J].Brain Res,2002,950(1-2):268-278.

[8]Xia CF,Yin H,Yao YY,et al.Kallikrein protects against ischemia stroke by inhibiting apoptosis and flammation and promoting angiogenesis and neurogenesis[J].Human Gene Therapy,2006,17(2):206-219.

[9]倪耀輝,丁素菊.組織型激肽釋放酶對腦缺血再灌注大鼠的治療作用及其機制的探討[J].臨床神經病學雜志,2009,22(1):44-47.

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