趙意華,陳清漢 ,華海嬰,姜玉軍,秦建英,任明明
1)鄭州大學第二附屬醫院骨科 鄭州450014 2)鄭州大學醫藥科學研究院 鄭州450052
#通訊作者,男,1963年5月生,碩士,教授,研究方向:骨科疾病的基礎與臨床,E-mail:chenqinghan833@medmail.com.cn
骨肉瘤是一種起源于間葉組織的惡性腫瘤,好發于兒童和青少年股骨遠端、脛骨近端,易轉移至肺、腦等組織[1],因而愈后較差。研究[2]表明,其發生機制主要與原癌基因激活和抑癌基因失活有關。目前臨床治療方法以手術結合多種藥物化療[3]為主,但常用化療藥物如順鉑(PDD)、大劑量環磷酰胺(HDMTX)長期應用副作用較大,效果不理想。鋰是一種人體非必需微量元素,具有免疫調節作用,并在體內外具有廣譜抗腫瘤作用; 其化合物氯化鋰(LiCl)在體外可抑制多種腫瘤細胞增殖并誘導凋亡[4]。目前,LiCl 對人骨肉瘤細胞系(U2-OS)作用的研究尚未見文獻報道。作者觀察了LiCl 在體外對U2-OS 細胞增殖、凋亡及Fas、Caspase-3 mRNA 表達的影響,探討其可能的作用機制,為骨肉瘤的藥物治療尋求新的途徑。
1.1 主要材料和儀器 U2-OS、LiCl、細胞凋亡及細胞周期檢測試劑盒(鄭州創生生物公司),DMEM 培養基(Gibco 公司),胎牛血清(杭州四季青公司),胰蛋白酶、MTT(Sigma 公司),酶標儀(Thermo 公司),流式細胞儀(Benekman 公司)。以GAPDH 為內參照。精密稱取1.695 g LiCl 溶于20 mL 三蒸水中,配制成2.0 mol/L 母液,過濾后4℃保存備用,臨用時加入培養基稀釋至終濃度。
1.2 細胞培養 U2-OS 細胞貼壁生長于含體積分數10%胎牛血清的DMEM 培養基中,置于37℃、體積分數5% CO2培養箱中培養,2~3 d 傳代1 次。
1.3 實驗分組 取對數生長期U2-OS 細胞,胰酶消化后調整細胞濃度為1.0×105mL-1,接種于培養板內,置于37℃、體積分數5% CO2培養箱中培養,24 h 后棄去舊液,分組培養,每組設5 個平行孔。正常對照組用等容積培養液培養,陽性對照組加用15 mg/L 5-FU,藥物組分別加入40、80、150 mmol/L LiCl 溶液。
1.4 觀測指標
1.4.1 細胞增殖抑制率 細胞分別培養24、48 和72 h 后,加MTT(5 mg/L)20 μL,培養4 h 后棄去培養液,加200 μL DMSO,待結晶顆粒充分溶解后,在酶標儀490 nm 處測定吸光度(A),根據公式計算細胞增殖抑制率:增殖抑制率=(1 -實驗組A/對照組A)×100%。
1.4.2 凋亡和細胞周期 取各組細胞接種于6 孔板內培養,48 h 后收集細胞于1.5 mL EP 管內,加500 μL Annexin-binding Buffer 重懸細胞并調整濃度為(1.0~5.0)×106mL-1,加Annexin V-FITC 5 μL、PI 10 μL,避光染色5 min 后,上流式細胞儀檢測凋亡;加PI(50 mg/L)1 mL,4℃避光染色30 min,上流式細胞儀進行細胞周期分析。
1.4.3 Fas、Caspase-3 mRNA 檢測 各組細胞培養24 h 后用PBS 清洗,之后冰上操作,Trizol 法提取RNA,按照試劑盒說明進行逆轉錄,取逆轉錄產物行PCR 擴增。PCR 引物由上海生工生物工程公司合成。Fas 后引物序列5’-GCCACCCCAAGTAGATCT GG-3’,前引物序列 5’-ACTGTGACCCTTGCAC CAAAT-3’; Caspase-3 后引物序列5’-GCATACT GTTTCAGCATGGCAC-3 ’,前引物序列 5 ’-CAAACTTTTTCAGAGGGGATCG-3’。PCR 反應條件:預變性94℃(GAPDH)或98℃(Caspase-3 和Fas)5 min; 變性94℃30 s,退火58℃(GAPDH)或54℃(Caspase-3)或59℃(Fas)30 s,延伸72℃45 s,總循環35 次(GAPDH)或34 次(Fas 和Caspase-3)。反應結束后取PCR 產物5 μL,行瓊脂糖凝膠電泳,采用凝膠成像分析系統進行掃描,以目的條帶與GAPDH 條帶灰度值的比值表示目的基因mRNA的相對表達量。
1.5 統計學處理 采用SPSS 17.0 處理數據,應用單因素方差分析比較各組細胞增殖抑制率、細胞周期、凋亡率及Fas、Caspase-3 mRNA 相對表達量,檢驗水準α=0.05。
2.1 LiCl 對U2-OS 細胞增殖的影響 增殖抑制率測定結果見表1。

表1 5組增殖抑制率測定結果(n=5)%
2.2 LiCl 對U2-OS 細胞周期和凋亡的影響 結果見表2。
2.3 LiCL 對U2-OS 細胞中Fas、Caspase-3 mRNA 表達的影響 結果見表3。

表2 4組U2-OS 細胞的細胞周期和凋亡率(n=5)

表3 4組Fas 和Caspase-3 mRNA 的相對表達量(n=3)
研究[5-6]發現,骨肉瘤的發生發展涉及細胞內許多基因的改變,而某些基因的表達在促進腫瘤細胞凋亡、抑制腫瘤生長方面具有重要意義[7-8],其中Fas/FasL 和Caspase 系統在細胞凋亡過程中起重要作用。Fas 基因作為重要的凋亡調控基因,位于人類染色體10q,其編碼產物相對分子質量約為45 000,是一種Ⅰ型跨膜受體蛋白,屬于腫瘤壞死因子/神經生長因子(TNF/NGF)受體超家族,該蛋白是誘導細胞程序性死亡的信號分子[9],在正常細胞內可通過信號傳導途徑逐級放大死亡信號,通過相應受體傳導至細胞核內部,引起核內轉錄基因的改變,從而啟動凋亡程序。FasL 基因位于染色體1q23[10],主要分布于活化的T 細胞和NK 細胞,其編碼產物相對分子質量為31 000,為Ⅱ型跨膜蛋白,屬于TNF 家族,可與其配體Fas 蛋白特異性結合,形成配體受體復合體,將細胞外的凋亡信號轉導至細胞內部。Caspase 是天冬氨酸特異性半胱氨酸蛋白酶[11],是由Caspase 基因家族轉錄表達的一類具有酶切作用的蛋白質,目前已發現14 種[12],其中Caspase-3 是主要的凋亡執行蛋白,在被上游分子激活后能分解細胞骨架蛋白、細胞器等結構,參與細胞凋亡的具體執行過程[13]。Fas、FasL 和Caspase 家族在細胞凋亡過程中分別起著發出凋亡死亡信號、感知并轉導信號且逐級放大至細胞內部、接受信號激活級聯反應并產生效應等一系列作用。此系統是細胞凋亡的最主要途徑之一,其中Caspase 蛋白的表達是各種細胞凋亡機制的最后共同通路,在細胞的信號傳遞過程中處于重要地位[14]。
該研究結果顯示,LiCl 對體外培養的U2-OS 細胞具有顯著的增殖抑制作用和凋亡誘導作用,且上述作用表現出劑量依賴性;細胞周期測定結果顯示,LiCl 可使U2-OS 細胞G1期細胞百分比下降,S 期細胞百分比則增高,且二倍體峰值隨藥物劑量增大呈下降趨勢,表明細胞被阻滯于S 期。以上結果初步證實LiCl 有抑制骨肉瘤細胞生長,促進凋亡的作用。進一步的檢測結果顯示,LiCl 作用后,U2-OS 細胞中Fas 和caspase-3 mRNA 的表達水平異常增高。因此,作者認為,LiCl 可促進U2-OS 細胞的凋亡,抑制其生長,上調促凋亡基因Fas 的表達,而Fas/FasL和Caspase 介導的死亡信號轉導系統則可能是其作用機制之一。
[1]米川,馬忠泰.骨肉瘤的肺外轉移[J].中華骨科雜志,2003,23(1):39
[2]呂剛,韓壯,王敏,等.P27KIPI 和CylinE 在骨肉瘤中表達的意義[J].中國腫瘤臨床,2002,29(3):204
[3]陳飚,趙春和,王全.新輔助化療結合保肢手術治療肢體骨肉瘤[J].中國腫瘤臨床,2005,32(20):1162
[4]Sokoloski JA,Li J,Nigam A,et al.Induction of the differentiation of HL-60 and WEHI-3BD+leukemia cell by lithium chloride[J].Leuk Res,1993,17(5):403
[5]余文熙.骨肉瘤分子發病學的研究進展[J].癌癥進展,2008,6(6):586
[6]章權.骨肉瘤發病機制的分子生物學研究現狀[J].中國醫學創新,2009,6(29):179
[7]聶濤,戴閩.凋亡相關因子與骨肉瘤研究進展[J].中國矯形外科雜志,2005,13(9):694
[8]沈榮凱,林建華.骨肉瘤基因治療研究進展[J].中國骨腫瘤骨病,2008,7(3):176
[9]郭淑貞,夏寧邵.Fas/FasL 凋亡作用機制[J].細胞生物學雜志,2000,22(3):114
[10]袁紅.Fas/FasL 與凋亡研究進展[J].國外醫學:生理、病理科學與臨床分冊,2000,20(1):26
[11]王敏,呂智.凋亡調控基因Bcl-2、Bax、Caspase-3 與骨肉瘤[J].實用骨科雜志,2005,11(3):233
[12]Humke EW,Ni J,Dixt VM.ERICE,a novel FLICE-activatable caspase[J].Biol Chem,1998,273:15702
[13]朱森,王學江.凋亡相關因子在腫瘤細胞凋亡中的表達[J].腫瘤,2002,22(6):522
[14]Nicholson DW,Thornberry NA.Caspase:killer proteases[J].Thends Biochem Sci,1997,22(8):299