用薄層掃描法測定油茶粕蛋白水解物的多肽

朱 培 ，鐘海雁 ，2，黃衛文 ，周 波 ，龔吉軍 ，趙清潔

（1.中南林業科技大學 食品科學與工程學院，湖南 長沙 410004；2.糧油深加工與品質控制湖南省重點實驗室，湖南 長沙 410004）

目前，多肽的測定方法包括柱前衍生反相高效液相色譜法、氨基酸自動分析聯用法、差減法、電化學法以及電泳法[1-3]。其中，差減法、電化學法和電泳法測定多肽總量，無法確定多肽的種類；液相色譜質譜聯用儀在測定多肽類化合物方面具有分離度好、靈敏度高、可進行結構鑒定等優點，但是該法對樣品的前處理要求高，時間長[4-5]。

薄層掃描法（TLC）也稱薄層光密度法，是薄層色譜技術與光掃描儀和微型電子計算機結合起來的一種新型儀器分析方法。薄層掃描法對于樣品的前處理要求較低，并可同時對各種復雜的樣品進行分離和測定[6]。薄層掃描法多應用于蛋白質和氨基酸的測量中，對于多肽的測量未見報道[7]。蛋白水解物因水解度的不同，樣品液中多肽的種類和含量也會不相同[8]，因此，測定多肽常用的高效液相色譜法則不能快速測定復雜多肽的含量，在多肽的企業化生產中使用有一定的局限性[9]。薄層掃描法可以對同一類物質進行測定，無需高度分離和純化。所以，用薄層掃描法測定蛋白水解物中的多肽的含量，在企業化生產中具有重要的意義。

1 材料及方法

1.1 材料與儀器

低溫冷榨粕采購于湖北通程；菌種由中南林業科技大學食品科學與工程學院自行篩選。

中草藥粉碎機：FW135型，天津泰斯特儀器有限公司。紫外分光光度計：UV1800，日本島津公司。薄層掃描儀：KH-3100型，上海科哲生化科技有限公司。高效液相色譜儀：Prominence LC-20A，日本島津公司。

還原型谷胱甘肽標準品：購于上海源葉生物科技有限公司。顯色劑：0.5 g茚三酮溶于100 mL丙酮中[10]；其他化學試劑均為分析純。

1.2 試驗方法

1.2.1 樣品液的配制

發酵條件：時間：5.14 d、接種量：10.16‰、溫度：31.71 ℃，進行固態發酵，低溫烘干至恒重，取發酵料10.00 g用蒸餾水在常溫下溶解、離心、定容100 mL；并用未發酵的原料做對照。

1.2.2 谷胱甘肽標準溶液的制備

準確稱取100.00 mg還原型谷胱甘肽標準品，用蒸餾水定容于100 mL容量瓶中，配成質量濃度為1.0 mg/mL的標準液。取10 mL上述標準液于100 mL容量瓶中，用蒸餾水定容，配成0.1 mg/mL的標準液備用。

1.2.3 色譜條件

薄層色譜：薄層板為硅膠G預制板；上行法展開15 cm；揮干溶劑，噴茚三酮顯色劑，在105 ℃加熱10～15 min[11]。

反向高效液相色譜條件：檢測波長230 nm；柱溫30 ℃；流速1.50 mL/min；上樣量25 μL；色譜柱C18柱（5.00 μm×25.00 cm× 4.60 mm）。

流動相A為乙腈；流動相B為水。

洗脫梯度：0～5 min，80%→10% A，維持10 min；15～20 min，10%→80% A。

2 結果與分析

2.1 展開劑的確定

發酵液中，除多肽外還存在一些氨基酸和小分子量蛋白質。為獲得多肽的最佳分離效果，需對層析展開劑進行選擇[12]。不同展開劑對蛋白水解物分離效果見表1，由表1可知，正丁醇＋乙酸＋水（體積比為4∶1∶1）的展開劑對多肽的分離效果較好，不僅層析斑點的比移值（Rf）值較大，斑點之間的Rf值差距也較大，而且斑點清晰。而其他展開劑均不利于多肽的分離，選正丁醇＋乙醇＋水（體積比為4∶1∶1）作為展開劑。

表1 不同展開劑對蛋白水解物的分離效果Table 1 Effect of different developing agents on separation of protolysate

2.2 掃描波長的確定

分別對還原型谷胱甘肽標準溶液、發酵溶液以及原料進行全波段掃描，在波長為231 nm附近，谷胱甘肽標準溶液、發酵溶液以及原料溶液有最大吸光度。因此，可選231 nm為谷胱甘肽和發酵水解液中多肽的測定波長。

2.3 發酵液的薄層層析

分別對未發酵的原料、發酵水解液和不同質量濃度的谷胱甘肽進行層析展開，結果如圖1所示。

由圖1可知，點樣的3種不同的還原型谷胱甘肽標準液，只有1 mg/mL的標準品在圖譜上顯出了斑點，0.1 mg/mL的谷胱甘肽標準品不能在硅膠板上成像。這可能是由于標準品經過展開劑稀釋后，濃度過低未能達到TLC的檢測線。因此，得出的結論是：采用薄層掃描法測定多肽的最低質量濃度為1 mg/mL。

2.4 掃描結果

樣品掃描結果如表2所示。由表2可知：依據面積積分值和1 mg/mL的還原型谷胱甘肽標準品的面積對比，可得原料溶液中多肽含量為0.89mg/mL；發酵液多肽含量為1.82 mg/mL。

圖1 薄層薄板成像Fig.1 Thin layer plate chromatography

表2 樣品掃描結果Table 2 Scanning results of samples

2.5 重復性試驗

對1 mg/mL谷胱甘肽標準品進行5次重復測定，結果見表3。變異系數（RSD）＜5%，說明采用薄層掃描法測定多肽含量，精密度高、重復性好[13]。

表3 重復性試驗結果Table 3 Repetition test result

2.6 回收試驗

為了檢驗該方法的準確性，點樣2 μL油茶粕固態發酵液，同時加入2 μL谷胱甘肽標準液，以測定發酵液中的多肽含量，結果如表4。5次測得的平均回收率為106.94%，標準偏差為0.058%。因此，該法準確性較高。

表4 回收試驗結果Table 4 Recovery result

2.7 與反向高效液相色譜法測定結果比較

本試驗選取發酵液樣品，谷胱甘肽為標準品，分別用上述的方法與反向高效液相色譜法測定其多肽含量[14-15]，并做3次平行試驗。結果見表5。薄層掃描法和反向高效色譜法測定結果由SPASS軟件分析得：薄層掃描法測定多肽含量均值為1.81 mg/mL，相對誤差為1.76%；而高效液相色譜法測定多肽含量均值為2.17 mg/mL，相對誤差為0.82%。獨立樣本T檢驗結果：P＝0.283＞0.05，兩者無顯著性差異。而且薄層掃描法測定油茶粕蛋白水解物多肽所需設備簡單，樣品無需前處理、操作方法簡便，對于標準樣品的要求較低。薄層掃描法相對于反向高效液相色譜在測定油茶粕蛋白水解物多肽方面具有一定的優勢。

表5 薄層掃描法與反向高效液相色譜法測定結果的對比Table 5 Comparison of determined results by TLC and RP-HPLC

3 結論與討論

本研究建立的TLC檢測油茶粕固態發酵蛋白水解物中多肽含量的方法，重復性標準偏差為0.03%；回收試驗的平均回收率為106.94%，且標準偏差為0.058%。并且與高效液相色譜法進行的對比，其結果無顯著性差異。

薄層掃描法測定油茶粕固態發酵蛋白水解物中多肽的含量具有一定的可行性，在確定展開劑及描述波長的基礎上，測定了該方法的重復性、加樣回收率。結果表明：以谷胱甘肽為對照品與油茶粕發酵液多肽進行薄層分離，其TLC的重現性和加樣回收率等均符合含量測定要求；發酵液中多肽為1.82 mg/mL比原料液中的0.89 mg/mL約增加了1倍。

因此，采用薄層掃描法測定油茶粕蛋白水解物多肽具有靈敏、準確、簡便等優點，可以作為企業中快速檢測多肽的方法之一。研究結果為油茶餅粕蛋白及其活性成分的利用[16-19]提供可借鑒的方法。

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