蟬花多糖提取工藝優(yōu)化研究

魯吉珂，古國峰，汪 瑞，胡 甜，郝利民，余堅勇，王英澤

（1.鄭州大學生命科學學院，河南鄭州450001；2.總后軍需裝備研究所，軍用漢麻材料研究中心，北京100027）

蟬花（Cordyceps sobolifera），又名胡蟬、蟬菌、蟬蛹草、金蟬花等，是由蟲草屬真菌感染蟬科昆蟲，于蟲體前段長出花蕾狀子座，故名蟬花[1]。蟬花是一種菌蟲復合體，其中的活性組分與冬蟲夏草相當，屬于優(yōu)質蟲草[2]，具有抗應激、抗疲勞、抗缺氧、調節(jié)免疫功能等多種功效[3-5]。蟬花中除含有豐富的蛋白質、脂肪和微量元素等營養(yǎng)成分外[6]，還含有多糖、蟲草素、蟲草酸、腺苷和多球殼菌素等多種活性成分[7-8]。多糖是由10個以上單糖聚合而成的天然高分子化合物，具有抗氧化、抗腫瘤、抗病毒和免疫調節(jié)等多種生物活性[9]。國外關于蟬花多糖的研究較少，國內研究主要集中在蟬花多糖提取、純化及活性功效方面[10-11]。姚婷等[12]采用微波輔助提取法，對來自湖州吳興的金蟬花中多糖的提取工藝進行優(yōu)化，多糖最高提取率為2.96%。余文娟等[13]對江西廬山地區(qū)蟬花中多糖的超聲輔助提取工藝進行研究，正交實驗結果表明最優(yōu)提取條件為70℃、提取30min、料液比1∶20（g∶mL），蟬花多糖提取率為2.37%。周俐斐等[14]采用水提醇沉法提取水溶性粗多糖，經Sevag法除蛋白、透析、活性炭脫色、過濾、濃縮干燥后蟬花總多糖提取率為0.97%。目前不同研究組測得蟬花多糖含量差異較大，且多糖提取率計算方法尚未統一。本研究以浙江蟬花為原料，對其中蟬花多糖提取工藝進行優(yōu)化，以期為蟬花功效物質的制備應用奠定基礎。

1 材料與方法

1.1 材料與儀器

蟬花 采自浙江臺州，采后洗凈，60℃烘干，粉碎粒度150目；葡萄糖、濃硫酸、苯酚、氯仿、正丁醇 均為分析純。

Beckman高速離心機 美國Beckman公司；UV-1700紫外分光光度儀 日本Shimadzu Corporation；電熱恒溫水浴鍋 北京市永光明醫(yī)療儀器廠；SHZ-D（Ⅲ）循環(huán)水式真空泵 鞏義市予華儀器有限公司；電熱鼓風干燥箱 上海智城分析儀器制造有限公司。

1.2 實驗方法

1.2.1 蟬花多糖的制備 稱取蟬花干粉100g，置于燒杯中，按料液比1∶10（g∶mL）加入超純水1000mL，90℃水浴浸提180min，減壓過濾收集濾液。濾渣再加700mL水，90℃水浴180min，抽濾，合并兩次濾液，65℃減壓蒸餾，濃縮上清液加入4倍體積的95%乙醇，4℃沉淀12h，4000r/min離心15min，傾去上清液，得粗多糖沉淀。

沉淀超純水溶解，活性炭75℃水浴150min，間歇攪拌，4000r/min離心15min，上清液中加入2.4倍體積的Sevag試劑（氯仿∶正丁醇=4∶1），振蕩后靜置30min，4000r/min離心15min，上清液重復以上步驟6～8次，直至不再出現沉淀，清液減壓蒸餾，再醇析一次，得到蟬花多糖沉淀，用無水乙醇反復洗滌2～3次，真空干燥后備用。

1.2.2 苯酚-硫酸法測定多糖提取率

1.2.2.1 標準曲線的制作 將葡萄糖配制成一系列標準溶液，采用苯酚-硫酸法于490nm處測量吸光值[15]，以葡萄糖濃度C（mg/mL）為橫坐標，吸光值A為縱坐標，繪制標準曲線。回歸方程為：A=5.1971C-0.0031（R2=0.9991）。

1.2.2.2 換算因子的測定 稱取干燥恒重的蟬花多糖50.00mg，置于50mL容量瓶中，加超純水定容。再分別吸取此溶液0.0、0.5、1.0、1.5、2.0、3.0mL，置于試管中，補加超純水至10mL，按1.2.2.1步驟測定吸光值，按照式（1）計算換算因子f。

式中：W：蟬花多糖的質量（mg）；C：蟬花多糖溶液中葡萄糖濃度（mg/mL）；D：稀釋因子（mL）。

經3次測量取平均值，f=2.68。

1.2.2.3 苯酚-硫酸法計算多糖提取率 按照1.2.5中步驟，將提取濃縮醇沉的沉淀超純水定容，取待測溶解液1.0mL于試管中，按1.2.2.1步驟測定吸光值，根據標準曲線與換算因子計算蟬花粉中多糖提取率，見式（2）。

式中：C：蟬花多糖溶液中葡萄糖濃度（mg/mL）；D：稀釋因子（mL）；f：換算因子；W：蟬花干粉質量（mg）。

1.2.3 稱量法測蟬花多糖提取率 按照1.2.5中步驟，提取蟬花粗多糖沉淀，真空干燥后精確稱重，多糖提取率計算見式（3）。

式中：W1：蟬花多糖質量（mg）；W：蟬花干粉質量（mg）。

1.2.4 總糖含量的測定 將1.2.5中制備的蟬花提取液用超純水稀釋適當的倍數，按1.2.2.1步驟測定吸光值，再由標準曲線計算提取液中蟬花總糖的提取率，見式（4）。

式中：C：蟬花提取液中葡萄糖濃度（mg/mL）；V：提取液總體積（mL）；W：蟬花干粉質量（mg）。

1.2.5 蟬花多糖提取單因素優(yōu)化 稱取蟬花干粉1.00g，置于錐形瓶中，加入一定體積超純水，水浴加熱浸提一定時間，提取液減壓過濾，殘渣重復浸提步驟若干；合并濾液，減壓蒸餾，濃縮液醇沉，沉淀超純水定容，測定蟬花多糖含量并計算提取率。分別以提取溫度、提取時間、料液比和提取次數4個因素為對象，考察其對蟬花多糖提取率的影響。

1.2.6 蟬花多糖提取的正交實驗 在單因素優(yōu)化結果的基礎上，以提取溫度、提取時間、料液比和提取次數為影響因素，各取4個水平，采用L16（45）正交表進行正交實驗設計，以多糖的提取率為指標，確定蟬花多糖的最適提取工藝。因素水平表見表1。

表1 因素水平表Table 1Factors and levels for L16（45）orthogonal experiment design

2 結果與討論

2.1 單因素優(yōu)化

2.1.1 提取溫度的確定 多糖含量測定主要有苯酚-硫酸法和直接稱量法。為考察提取溫度對蟬花多糖提取率的影響，分別采用這2種方法計算提取率，結果如圖1所示。稱量法提取率測定結果波動較大，主要原因在于抽濾及沉淀轉移步驟存在較大的誤差。苯酚-硫酸法的測定結果相對較為穩(wěn)定。圖1中溫度為60℃和90℃時蟬花多糖提取率較高，分別為4.61%和4.3%，100℃時提取率降低至2.9%。因此蟬花多糖提取溫度應控制在50～90℃之間。

圖1 提取溫度對蟬花多糖提取率的影響Fig.1 Effect of extraction temperature on the polysaccharide yield

2.1.2 提取時間的確定 采用苯酚-硫酸法測天然產物提取液中糖類物質含量時，可以采用2種方法。其一：可直接對提取液于490nm處測吸光值，計算提取液中的總糖含量；其二：可將提取液濃縮醇沉的沉淀用水溶解，再對溶解液于490nm處測吸光值，計算提取液中的多糖含量。分別用上述2種方法計算蟬花中總糖和多糖的提取率，結果如圖2所示。120min時總糖提取率為18.75%，而相同條件下多糖提取率為5.4%。由于蟬花提取液中含有較多的色素等雜質，包括一些小分子糖類物質，都會干擾多糖測定，因此應采用提取液濃縮醇沉再溶解的方法計算多糖提取率。隨著提取時間的增加，多糖提取率逐漸增加，由60min的4.86%增加到240min的6.01%，隨后繼續(xù)增加提取時間至300min，多糖提取率為6.1%（圖2）。考慮到增加提取時間會增加成本及能耗，蟬花多糖的最適提取時間應控制在60～240min之間。

圖2 提取時間對蟬花多糖提取率的影響Fig.2 Effect of extraction time on the polysaccharide yield

2.1.3 料液比的確定 料液比對天然產物活性物質提取率的影響較大，適當增加溶劑用量會提高提取率，但過多的溶劑用量會導致后續(xù)處理步驟繁瑣反而降低提取率。如圖3所示，蟬花多糖提取率隨料液比的增大呈先增加后降低的趨勢。在料液比為1∶30時，多糖提取率最高，為4.11%，繼續(xù)增加溶液量到1∶60，提取率降低為3.62%。蟬花多糖最佳提取料液比應控制在1∶30左右。

圖3 料液比對蟬花多糖提取率的影響Fig.3 Effect of extraction solid-liquid ratio on the polysaccharide yield

2.1.4 提取次數的確定 提取次數對蟬花多糖提取率的影響如圖4所示。隨著提取次數的增加，多糖提取率逐漸增加，但增幅變小。蟬花多糖1次提取率為4.62%，提取4次總提取率為5.83%，繼續(xù)增加提取次數，提取率維持在5.8%左右。考慮到增加提取次數會導致產品后處理的難度，蟬花多糖的最適提取次數應控制在1～4次之間。

2.2 正交實驗結果

根據單因素實驗結果，以提取溫度、提取時間、料液比和提取次數為考察因素，各取4個水平，設計正交實驗表（表1），對蟬花多糖提取工藝進行優(yōu)化，結果見表2。

圖4 提取次數對蟬花多糖提取率的影響Fig.4 Effect of extraction times on the polysaccharide yield

表2 蟬花多糖提取正交實驗結果Table 2 Results of orthogonal experiment for polysaccharide extraction from Cordyceps sobolifera

由表2極差分析結果可知，各因素對蟬花多糖提取率的影響順序依次為：提取溫度（A）＞提取次數（D）＞料液比（B）＞提取時間（C）。最佳提取條件為A4B4C4D4，即溫度90℃，料液比1∶40（g∶mL），提取240min，連續(xù)提取4次。在最佳工藝條件下進行3次平行實驗驗證，蟬花多糖平均提取率為11.82%，均高于表2中其他組合的提取率。姚婷等[12]采用微波輔助提取法，金蟬花原料來自湖州吳興，多糖提取率計算采用苯酚-硫酸法（其計算步驟未體現多糖換算因子），多糖最高提取率為2.96%，低于本實驗優(yōu)化結果。余文娟等[13]以相同的多糖提取率計算方法，采用超聲輔助提取工藝，蟬花原料來自江西廬山地區(qū)，蟬花多糖最優(yōu)提取率為2.37%，也低于本實驗優(yōu)化結果。周俐斐等[14]采用直接稱量法，蟬花總多糖提取率為0.97%。溫魯等[2]對南京瓦屋山地區(qū)的蟬花中活性組分進行分析，其中多糖含量為9.488%，與本研究結果較為相近。

3 結論

通過實驗對蟬花多糖的測定方法進行了確定，采用苯酚-硫酸法對提取液濃縮醇沉再溶后進行分析，計算多糖提取率。正交實驗結果顯示，各因素對蟬花多糖提取率影響順序依次為：提取溫度＞提取次數＞料液比＞提取時間。最佳提取條件為：溫度90℃，料液比1∶40（g∶mL），提取240min，連續(xù)提取4次。在此條件下，蟬花多糖提取率為11.82%。多糖是蟬花的重要生理活性物質之一，對其提取工藝進行研究，可為蟬花的活性物質研究奠定基礎。

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