姜黃素(Curcumin)提純自中藥姜黃(Curcuma longa L.)的根莖,屬于酚性色素,其化學名為阿魏酰甲烷(Difcruloylmethane)。中醫認為姜黃具有祛風活血以及通絡止痛等功效。從20世紀80年代至今,大量研究表明,姜黃素具有較強的抗腫瘤活性,可誘導腫瘤細胞凋亡[1-2]。近年研究表明,內質網應激(Endoplasmic Reticulum Stress,ERS)是有別于線粒體途徑及死亡受體途徑的可誘導細胞凋亡的獨立通路。本研究采用姜黃素對宮頸癌HeLa細胞進行干預,探討姜黃素是否能夠通過ERS途徑誘導HeLa細胞凋亡,為姜黃素的臨床應用提供新的依據。
1 材 料 宮頸癌細胞株HeLa購自中國科學院細胞庫;四甲基偶氮唑藍(MTT)、姜黃素(C21H20O6,純度≥98%)、ERS抑制劑4-苯基丁酸鈉(4-PBA)購自美國Sigma-Aldrich公司;DMEM細胞培養基以及胎牛血清(FBS)購自美國Hyclone公司;Trizol總RNA提取試劑盒購自美國Invitrogen公司;Prime-Script RT Master Mix試劑盒以及SYBR Premix Ex TaqTMII試劑盒購自日本Takara公司;葡萄糖調節蛋白78(GRP78),C/EBP同源蛋白質(CHOP)以及β-Actin引物均由日本Takara公司合成;GRP78及CHOP抗體均購自美國Cell Signaling Technology公司;β-Actin抗體及辣根過氧化物酶標記二抗均購自美國Santa Cruz公司。
2 宮頸癌HeLa細胞培養 向DMEM培養基中加入10%FBS、0.1U/L鏈霉素以及0.1U/L青霉素制成細胞培養液對HeLa細胞進行培養。培養條件為37℃、飽和濕度以及5%CO2環境,隔天更換細胞培養液,細胞密度為80%以上時按照1∶3的比例對細胞進行傳代,取處于對數生長期的HeLa細胞進行進一步試驗。
3 MTT法檢測姜黃素對HeLa細胞增殖的抑制作用 將HeLa細胞制成濃度為1×105/ml的細胞懸液,將該細胞懸液加入96孔板(GREINER,德國),共設6個平行孔,每孔加入100μl細胞懸液。6個平行孔中加入的姜黃素溶液(均由DMEM培養基配制)濃度分 別 為 0μmol/L(陰 性 對 照)、3.125μmol/L、6.25μmol/L、12.5μmol/L、25μmol/L 以及50μmol/L。干預48h后,向每孔中加入濃度為5mg/ml的 MTT溶液20μl繼續培養4h,棄去上清液后加入二甲基亞砜(DMSO)150μl,充分震蕩后,使用酶標儀測定波長為570nm處的吸光度值(A值)。采用以下公式對細胞生長抑制率進行計算:細胞生長抑制率=(1-樣本平均A值/陰性對照平均A值)×100%。
4 試驗分組 本研究中將細胞樣本共分為對照組(Ctrl)、對照+4-PBA組(Ctrl+PBA)、姜黃素組(Cur)以及姜黃素+4-PBA組(Cur+PBA)。姜黃素濃度為下文MTT法中篩選出的姜黃素最適濃度;根據Kubota等 的 研 究[3],選 擇 3mmol/L 作 為 4-PBA 溶 液 (由DMEM細胞培養基溶解)的干預濃度。
5 流式細胞儀測定宮頸癌HeLa細胞凋亡 將各組樣本細胞分別離心,采用含0.2%FBS的磷酸鹽緩沖液(PBS)對細胞進行洗滌后加入70%乙醇溶液中固定,將各組樣本細胞懸液濃度調整為1×106/ml后先后采用Anexin V及PI(BD,美國)進行雙染,流式細胞儀(FACSCalibur,BD,美國)檢測熒光強度后進行分析。
6 Real-time PCR 收集細胞樣本后,采用 Trizol法提取總Mrna,紫外分光光度計檢測純度,瓊脂糖凝膠電泳檢測完整性后,采用PrimeScript RT Master Mix試劑盒進行逆轉錄合成cDNA,并以該cDNA為模板采用SYBR Premix Ex TaqTMII試劑盒進行Real-time PCR。GRP78、CHOP及β-Actin的引物序列[4]詳見表1。擴增條件如下:94℃預變性5min,94℃變性30s,56℃退火30s,再以72℃延伸45s,共進行25個循環,最后再以72℃延伸10min。上述試劑盒使用均嚴格按照廠家說明書進行。以β-Actin mRNA表達水平作為內參,Bio-Rad IQ5(Bio-Rad,美國)軟件對所得數據進行分析。

表1 Real-time PCR引物序列
7 Western Blotting 將樣本細胞離心,PBS洗滌2次,采用加入PMSF(Santa Cruz,美國)RIPA裂解緩沖液(Santa Cruz,美國)對細胞進行處理,采用BCA法對獲得的蛋白濃度進行測定后,加入等量1×SDSPAGE loading buffer,100℃ 變 性 5min 后 進 行 SDSPAGE垂直電泳,電轉至PVDF膜上,10%脫脂牛奶封閉1h,一抗孵育過夜,充分洗滌后加入二抗(1∶5000)孵育2h,充分洗滌后,采用Super Signal West Pico化學熒光發光試劑盒(Thermo,美國)對所檢測蛋白進行顯影,X膠片曝光后,以β-Actin作為內參,采用Image-Pro Plus(Version 5.0.2)軟件對結果進行分析。
8 統計學處理 本研究所得數據均采用(均數±標準差)表示,數據均錄入Excel并采用統計學軟件SPSS 17.0進行分析處理,統計方法為單因素方差分析,均以P<0.05為差異具有統計學意義。
1 MTT法檢測姜黃素對HeLa細胞的生長抑制率與姜黃素干預濃度確定 陰性對照HeLa細胞生長活躍,分 別 采 用 3.125μmol/L、6.25μmol/L、12.5μmol/L、25μmol/L以及50μmol/L濃度的姜黃素溶液對HeLa細胞干預48h后,細胞生長均受到不同程度的抑制,并呈現出濃度依賴性,與陰性對照相比具有統計學意義(P<0.05)。本研究選取25μmol/L作為后續試驗中姜黃素的干預濃度。見表2。
2 姜黃素對各組HeLa細胞凋亡的影響 在流式細胞分析圖上,正常細胞處于Q3區,早期凋亡細胞處于Q4區,晚期凋亡細胞/壞死細胞處于Q2區,細胞碎片則處于Q1區。處于(Q2+Q4)區的細胞占細胞總數的百分比即為細胞凋亡誘導率。本研究發現,Ctrl組、Ctrl+PBA組、Cur組以及Cur+PBA組凋亡誘導率分別為4.15%、5.22%、68.37%以及49.28%。與Ctrl及Ctrl+PBA組相比,Cur組HeLa細胞凋亡誘導率顯著升高(P<0.05);與Cur組相比,Cur+PBA組HeLa細胞凋亡率顯著降低(P<0.05)。見圖1。

圖1 流式細胞術檢測各組HeLa細胞凋亡情況比較
3 姜黃素對各組HeLa細胞GRP78及CHOP mRNA表達的影響 本研究發現,與Ctrl組及Ctrl+PBA組相比,Cur組GRP78及CHOP mRNA表達水平均顯著升高(P<0.05);與Cur組相比,Cur+PBA組GRP78及CHOP mRNA表達水平均顯著降低(P<0.05)。見圖2。
4 姜黃素對各組HeLa細胞GRP78及CHOP蛋白表達水平的影響 本研究發現,與Ctrl組及Ctrl+PBA組相比,Cur組GRP78及CHOP蛋白表達水平均顯著升高(P<0.05);與Cur組相比,Cur+PBA組GRP78及CHOP蛋白表達水平均顯著降低(P<0.05)。見圖3。

表2 不同濃度姜黃素溶液對HeLa細胞生長抑制的情況(48h)

圖2 姜黃素對各組HeLa細胞GRP78及CHOP mRNA水平的影響

圖3 姜黃素對各組HeLa細胞GRP78及CHOP蛋白表達水平的影響
作為發病率僅次于乳腺癌的第二大女性惡性腫瘤,宮頸癌對女性健康危害極大。目前,對于早期宮頸癌,臨床治療以手術切除為主,而對于中晚期患者,化學治療等藥物治療則成為主要治療方式。雖具有較強的抗腫瘤活性,但化學治療藥物具有細胞毒性大、不良反應多等缺點,因此具有高效低毒特點的抗腫瘤藥物具有廣闊的應用前景。姜黃素為中藥姜黃的主要有效成分,研究表明除具有抗炎、抗脂質過氧化、降血壓以及抗纖維化等藥理活性外[5],近年越來越多的研究表明,姜黃素還具有顯著的抗腫瘤活性,對人肝癌細胞SMMC7721、乳腺癌、人類白血病細胞 HL-60以及人舌癌細胞Tca8113等細胞系均具有顯著的抑制作用,能夠誘導腫瘤細胞出現顯著的凋亡[6]。
細胞凋亡又稱為程序性細胞死亡,是有別于細胞壞死的細胞死亡方式。誘導腫瘤細胞凋亡是多種化療藥物的共同作用機制,可以作為藥物抗腫瘤能力的衡量標準之一。已經有研究證實,姜黃素不但能抑制宮頸癌細胞系Siha在體內、外的增殖,而且姜黃素能夠誘導宮頸癌細胞系HeLa、SiHa、CaSki以及C33A發生明顯凋亡[7-8]。本研究通過 MTT法及流式細胞術證實,姜黃素不但對宮頸癌細胞系HeLa增殖具有顯著的抑制作用,而且能夠誘導其發生凋亡,這與既往文獻報道一致。
一般認為,內、外因素能夠通過線粒體途徑、死亡受體途徑以及ERS途徑誘導細胞凋亡。ER是重要的細胞器,是新生蛋白質合成與加工的重要場所,對維持細胞內環境穩定與正常功能具有關鍵作用。在不良信號的刺激下,內質網所發生的鈣離子平衡失調以及未折疊蛋白反應(UPR)等,稱為ERS[9]。嚴重而持續的ERS可直接導致細胞凋亡的發生。作為定位于內質網內的折疊伴侶蛋白,GRP78被認為是ERS發生的主要分子標志之一[10]。ERS發生可最終導致轉錄因子CHOP的活化,作為ERS誘導凋亡信號通路下游的關鍵分子,表達增高的CHOP不僅可抑制抗凋亡蛋白BCL-2的表達,而且能夠促進促凋亡蛋白BAX/BAK的表達,最終誘發Caspase分子級聯反應,DNA內切酶PARP活化,后者使細胞核內的DNA降解,細胞發生凋亡[11]。4-PBA屬于低分子量游離脂肪酸的一種,是一種用于治療鳥氨酸循環障礙疾病的經典藥物。新近研究表明,作為一種化學伴侶,4-PBA對ERS可起到抑制作用[12]。
本研究發現,使用姜黃素處理HeLa細胞后,在發生增殖抑制及細胞凋亡的同時,HeLa細胞內GRP78及CHOP在轉錄水平及翻譯水平表達增高,提示姜黃素可通過內質網應激途徑誘導HeLa細胞凋亡。本研究進一步發現,在使用姜黃素對HeLa細胞進行干預后,使用ERS抑制劑4-PBA能夠顯著降低HeLa細胞的凋亡率,同時HeLa細胞內內質網應激標志物GRP78與凋亡誘導分子CHOP的mRNA及蛋白表達水平均被顯著抑制,該結果進一步說明姜黃素能夠通過激活ERS相關通路誘導宮頸癌HeLa細胞凋亡。
[1] 朱 青,張王剛,劉蘇虎,等.姜黃素誘導腫瘤細胞凋亡的實驗研究[J].陜西醫學雜志,2005,34(10):1185-1186,1192.
[2] Anand P,Sundaram C,Jhurani S,et al.Curcumin and cancer:an“old-age”disease with an“age-old”solution[J].Cancer Lett,2008,267(1):133-164.
[3] Kubota K,Niinuma Y,Kaneko M,et al.Suppressive effects of 4-phenylbutyrate on the aggregation of Pael receptors and endoplasmic reticulum stress[J].J Neurochem,2006,97(5):1259-1268.
[4] Chen J,Wei H,Xie B,et al.Endoplasmic reticulum stress contributes to arsenic trioxide-induced apoptosis in drugsensitive and-resistant leukemia cells[J].Leuk Res,2012,36(12):1526-1535.
[5] Kuo JJ,Chang HH,Tsai TH,et al.Positive effect of cur-cumin on inflammation and mitochondrial dysfunction in obese mice with liver steatosis[J].Int J Mol Med,2012,30(3):673-679.
[6] Masuelli L,Benvenuto M,Fantini M,et al.Curcumin induces apoptosis in breast cancer cell lines and delays the growth of mammary tumors in neu transgenic mice[J].J Biol Regul Homeost Agents,2013,27(1):105-119.
[7] Singh M,Singh N.Curcumin counteracts the proliferative effect of estradiol and induces apoptosis in cervical cancer cells[J].Mol Cell Biochem,2011,347(1-2):1-11.
[8] 鄧懷慈,韓蘇夏,陳 謙.姜黃素對人宮頸癌Hela細胞放射敏感性影響的實驗研究[J].陜西醫學雜志,2004,33(5):393-394.
[9] Cao SS,Kaufman RJ.Targeting endoplasmic reticulum stress in metabolic disease[J].Expert Opin Ther Targets,2013,17(4):437-448.
[10] Xu YY,You YW,Ren XH,et al.Endoplasmic reticulum stress-mediated signaling pathway of gastric cancer apoptosis[J].Hepatogastroenterology,2012,59(120):2377-2384.
[11] Guo FJ,Liu Y,Zhou J.XBP1Sprotects cells from ER stress-induced apoptosis through Erk1/2signaling pathway involving CHOP[J].Histochem Cell Biol,2012,138(3):447-460.
[12] Kim DS,Li B,Rhew KY,et al.The regulatory mechanism of 4-phenylbutyric acid against ER stress-induced autophagy in human gingival fibroblasts[J].Arch Pharm Res,2012,35(7):1269-1278.