鄧守恒,王賢和,袁選舉,李 芳,李林均,陳 萍(湖北醫藥學院附屬人民醫院腫瘤中心,湖北十堰442000)
腫瘤細胞對化療藥物產生多藥耐藥是導致化療失敗的主要原因。近年來,人們圍繞這一難題進行了大量的研究,主要采用的方法有化學藥物干預和基因治療等。維拉帕米和環孢霉素A是被研究最多的化學藥物,但由于其毒副作用大、特異性差,實際應用中效果并不理想。而基因治療也存在著易被DNA酶降解、治療效果不能持久等問題,從而使其臨床應用受限。硒化殼聚糖是將殼聚糖與亞硒酸在酸性條件下,以混合金屬離子為催化劑,通過拼合原理制備成的有機硒,具有高效低毒的特性[1]。硒和砷在化學周期表中屬同族,研究[2-3]證實砷劑能恢復部分耐藥腫瘤細胞對化療藥物的敏感性,推測硒劑也應具有相似的作用,本文對此進行了研究。
BMP型倒置相差顯微鏡(日本Olympus公司);Mod 550型全自動酶標儀(美國Bio-Rad公司)。
硒化殼聚糖(本院化學系合成,批號:100601-201016,硒含量:0.8%);多柔比星(Doxorubicin,DOX)注射用粉末(浙江海正藥業股份有限公司,批號:090606,規格:每支10mg);MTT、甲基纖維素(美國Sigma公司);磷酸化絲氨酸-蘇氨酸蛋白激酶(p-Akt)多克隆抗體及二抗(美國Santa Cruz公司)。
人慢性粒細胞白血病(CML)耐DOX細胞株(K562/DOX)購自中國醫學科學院天津血液病研究所。
K562/DOX細胞培養于含10%胎牛血清、100u/ml青霉素、100u/ml鏈霉素和2u/ml谷氨酰胺的RPMI 1640培養基內,在培養體系中加入終質量濃度為0.6μg/ml的DOX以維持其耐藥性,于37℃、飽和濕度、5%CO2條件下培養,每隔3~4d傳代1次。
收集指數生長期的K562/DOX細胞以全培養液稀釋成5×104ml-1的單細胞懸液,接種于96孔板,于37℃、飽和濕度、5%CO2條件下培養12h,將細胞分為陰性對照組(RPMI 1640培養基)、DOX組(50μg/ml DOX)和25、50、100、200、400μg/ml硒化殼聚糖組(50μg/ml DOX+相應濃度的硒化殼聚糖),每組4個復孔。各組加樣后繼續培養12、24、36h,每孔加入MTT 10μl,繼續培養 4h,棄上清,加入200μl二甲基亞砜(DMSO),酶標儀檢測570nm波長處光密度(OD)值并計算細胞抑制率。試驗重復3次,比較各組細胞抑制率的差異并計算逆轉倍數。細胞抑制率(%)=(1-硒化殼聚糖組OD值/陰性對照組OD值)×100%;逆轉倍數=硒化殼聚糖組半數抑制率/DOX組半數抑制率。
參照文獻[4]配制半固體培養基,收集“2.2”項下各組作用12h的細胞,棄去培養液,磷酸鹽緩沖液(PBS)洗去藥物,1000r/min離心3min,用含20%胎牛血清的培養液稀釋成7.0×103ml-1單細胞懸液,于預先每孔加入1.2%甲基纖維素培養基1.0ml的24孔板中,加入單細胞懸液50μl,每個濃度設4個復孔。混勻后置于37℃、5%CO2培養箱中孵育12~14d,于倒置相差顯微鏡下計數細胞克隆數,計算細胞存活率(DOX組或硒化殼聚糖組平均克隆數/陰性對照組平均克隆數×100%)。試驗重復3次,比較各組細胞存活率的差異。
細胞分組方法同“2.2”項,即分為DOX組(50μg/ml DOX)和100、200μg/ml硒化殼聚糖組(50μg/ml DOX+相應濃度的硒化殼聚糖),作用24h后收集各組細胞,PBS洗2次,裂解,離心,收集上清,即為細胞總蛋白。進行蛋白定量,調節每份樣品蛋白濃度,加等量蛋白于上樣緩沖液中,煮沸,十二烷基硫酸鈉聚丙烯酰胺凝膠(SDS-PAGE)電泳后轉膜。依次加入p-Akt多克隆抗體及二抗,顯色,拍照,Quanti Scan軟件進行密度掃描分析。以β-肌動蛋白(β-actin)為內參,比較各組細胞p-Akt蛋白條帶灰度值與β-actin灰度值比值的差異。
MTT法檢測結果顯示,DOX組對K562/DOX細胞的抑制作用有限,作用12、24、36h的抑制率分別為28.17%、36.72%、40.14%,說明細胞對DOX確實存在耐藥。25~400μg/ml硒化殼聚糖組對K562/DOX細胞的抑制作用明顯高于DOX組,且與濃度、時間呈正相關。25、50、100、200、400μg/ml硒化殼聚糖組作用12h,對K562/DOX細胞的逆轉倍數分別是1.11、1.57、1.68、2.09、2.51,說明硒化殼聚糖能逆轉K562/DOX細胞對DOX的耐藥,對細胞增殖產生了明顯的抑制作用。克隆形成法檢測結果也顯示,DOX與硒化殼聚糖聯用,對細胞克隆形成有明顯的抑制作用,細胞存活率與DOX組比較明顯降低(P<0.05或P<0.01),并呈一定的量效關系。各組作用不同時間后細胞的抑制率見圖1;各組作用12h后細胞的抑制率、逆轉倍數、存活率比較見表1。

圖1 各組作用不同時間后K562/DOX細胞的抑制率與DOX組比較:*P<0.05,**P<0.01Fig 1 Proliferative inhibitory rate of K562/DOX cells effected for different time in each groupvs.DOX group:*P<0.05,**P<0.01
表1 各組作用12h后K562/DOX細胞的抑制率、逆轉倍數、存活率比較(±s,n=4)Tab 1 Proliferative inhibitory rate,reversal multiple,survival rate of K562/DOX cells effected for 12h in each group(±s,n=4)

表1 各組作用12h后K562/DOX細胞的抑制率、逆轉倍數、存活率比較(±s,n=4)Tab 1 Proliferative inhibitory rate,reversal multiple,survival rate of K562/DOX cells effected for 12h in each group(±s,n=4)
與DOX組比較:*P<0.05,**P<0.01vs.DOX group:*P<0.05,**P<0.01
存活率,%73.21±3.1260.16±4.14*49.23±3.37**38.49±4.35**25.62±3.29**12.84±1.83**逆轉倍數組別DOX組25μg/ml硒化殼聚糖組50μg/ml硒化殼聚糖組100μg/ml硒化殼聚糖組200μg/ml硒化殼聚糖組400μg/ml硒化殼聚糖組抑制率,%28.17±3.1431.14±2.8744.25±4.18*47.52±4.69**59.16±5.43**70.97±9.58**1.111.571.682.092.51
結果顯示,DOX組細胞內p-Akt蛋白呈高表達(灰度比值為0.9917±0.29),細胞經100、200μg/ml硒化殼聚糖作用24h后,細胞內p-Akt蛋白表達的灰度比值分別為(0.4982±0.24)、(0.3714±0.33)。與DOX組比較,100、200μg/ml硒化殼聚糖組細胞內p-Akt蛋白表達明顯降低(P<0.01),即下調(42.76±2.21)%、(62.17±3.44)%。3組細胞內p-Akt蛋白表達的電泳圖見圖2。

圖2 3組K562/DOX細胞內p-Akt蛋白表達的電泳圖Fig 2 Electrophoretogram of the protein expression of p-Akt in K562/DOX cells in 3groups
CML是以費城(Ph)染色體為特征的多潛能干細胞異常的血液系統惡性腫瘤。Ph染色體是由位于9號染色體上的c-abl基因與位于22號染色體上的bcr基因相互異位,產生bcr-abl融合基因,該基因編碼的融合蛋白具有很強的酪氨酸激酶活性,可使融合蛋白自身及細胞內多種底物分子磷酸化,從而激活包括Ras/促分裂原活化蛋白激酶(MAPK)在內的多條細胞信號傳導通路,調控細胞的分裂與增殖,與CML的發病及耐藥密切相關[5]。故而降低CML細胞內融合蛋白含量、抑制其酪氨酸激酶活性、阻斷其可能的細胞信號傳導途徑,已成為當前針對分子靶點進行治療的策略之一。
筆者前期研究結果顯示,硒化殼聚糖可通過下調NF-κB通路對體外培養的CML細胞株K562增殖產生抑制[6],且可對細胞特征性的P210融合蛋白產生明顯的下調作用[7],提示硒化殼聚糖可能會對K562耐藥細胞產生逆轉作用。本文中,筆者以DOX誘導建立的K562/DOX為研究對象,采用經典的MTT法和克隆形成法檢測了硒化殼聚糖對K562/DOX細胞體外增殖和存活的影響。結果顯示,單純DOX對細胞的抑制效果有限,而與不同濃度硒化殼聚糖聯用后,DOX對細胞的抑制率明顯高于DOX組,且呈現出一定的量效和時效關系,說明硒化殼聚糖具有逆轉K562/DOX細胞耐DOX的作用。
磷脂酰肌醇-3激酶(PI-3K)是磷脂酰肌醇依賴激酶家族成員,參與細胞增殖、分化和細胞骨架構筑等的調控[8];Akt是PI-3K最主要的靶酶,與多種細胞活動、物質代謝調節有關,尤其與抑制細胞凋亡、促進細胞生存有密切關系[9]。已有研究[10]表明,部分腫瘤細胞可以通過對負責細胞生長和凋亡的細胞信息傳導通路(如Akt和NF-κB通路)進行調控,從而獲得對化療藥物的耐藥性。本文研究結果則進一步證實了在耐藥的K562/DOX細胞內存在著PI-3K/Akt信號通路的異常激活,而硒化殼聚糖則能通過下調p-Akt水平對PI-3K/Akt信號通路產生抑制進而逆轉K562/DOX細胞對DOX的耐藥。
[1] 孫蘭萍,張勝義,許暉.硒化殼聚糖的制備及理化性質的研究[J].食品工業科技,2006,27(2):145.
[2] 楊東光,張日,朱子玲.三氧化二砷逆轉甲磺酸伊馬替尼對K562/MDR1耐藥的實驗研究[J].蘇州大學學報:醫學版,2007,27(2):178.
[3] 吳廣洲,沈振亞,劉國鋒,等.三氧化二砷對人肺腺癌細胞A549/DDP裸鼠體內的多藥耐藥逆轉作用[J].蘇州大學學報:醫學版,2011,31(1):79.
[4] 韓銳.抗癌藥物研究與實驗技術[M].北京:北京醫科大學中國協和醫科大學聯合出版社,1996:284.
[5] Tanaka MF,Kantarjian H,Cortes J,et al.Treatment options for chronic myeloid leukemia[J].Expert Opin Pharmacother,2012,13(6):815.
[6] 鄧守恒,孫各琴,朱名安,等.硒化殼聚糖對K562細胞的作用及其與NF-κB信號分子的關系[J].陜西醫學雜志,2005,34(12):1472.
[7] 鄧守恒,李芳,李林均,等.硒化殼聚糖對慢性粒細胞白血病K562細胞bcr/abl融合基因表達的影響[J].中國實驗方劑學雜志,2011,17(1):106.
[8] Kim D,Cheng GZ,Lindsley CW,et al.Targeting the phosphatidylinositol-3kinase/Akt pathway for the treatment of cancer[J].Curr Opin Investig Drugs,2005,6(12):1250.
[9] Kim D,Dan HC,Park S,et al.AKT/PKB signaling mechanisms in cancer and chemoresistance[J].Froni Biosci,2005(10):975.
[10] Poh TW,Pervaiz S.LY294002and LY303511sensitize tumor cells to drug-induced apoptosis via intracellular hydrogen peroxide production independent of the phoshpoinositide-3kinase-Akt pathway[J].Camcer Res,2005,65(14):6264.