花生紅衣粗多酚體外抗氧化活性研究

劉 曼，韓升廷，張海悅，魏 瀅

（長春工業大學化學與生命科學學院，吉林長春130012）

我國是產花生大國，年產量超過五百萬噸，且種類繁多?！八牧＜t”花生是吉林省特有的農產品之一，品質很高，并且四粒紅花生中的多酚類物質含量十分豐富，是花生中的精品。國內花生制品廠對花生紅衣并沒有進行開發利用，每年能產生約600t花生紅衣廢料，除少量用于制藥外，其余都用作飼料造成極大浪費。多酚類化合物具有多種生物活性，對于人類的健康具有積極作用，其中最重要的是它的抗氧化和清除自由基的活性[1-4]。本實驗研究了花生紅衣的體外抗氧化活性，為其應用到功能食品中奠定了理論基礎。

1 材料與方法

1.1 材料與設備

四粒紅花生紅衣 四平宏寶萊股份有限公司，為生產花生露的廢棄料，粉碎20目烘干備用；無水乙醇、丙酮、七水硫酸亞鐵、酒石酸鉀鈉、磷酸氫二鈉、磷酸二氫鉀、過氧化氫（30%）、抗壞血酸、三羥甲基氨基甲烷（Tris）、鄰苯三酚、水楊酸、鹽酸等 均為國產分析純；沒食子酸丙酯標準品純度≥99% 北京北研馨綠生物技術有限公司；總抗氧化能力（T-AOC）測定試劑盒 南京建成生物工程研究所；實驗用水二次蒸餾水。

RE52-98旋轉蒸發器 上海亞榮生化儀器廠；FWl00高速萬能粉碎機 天津市泰斯特儀器有限公司；JY3002電子天平 北京賽多利斯儀器有限公司；PC-1000數顯式電熱恒溫水浴鍋 上海躍進醫療機械廠；DHG-9070A鼓風干燥箱 上海精宏實驗設備有限公司；GL-21LM高速冷凍離心機 湖南星科科學儀器有限公司；Lambda 25紫外-可見分光光度計日本島津。

1.2 實驗方法

1.2.1 粗多酚提取液的制備 準確稱取花生紅衣粉末3份各20g放入3個錐形瓶中，分別用體積分數60%乙醇、60%丙酮、蒸餾水為溶劑提取花生紅衣粗多酚。提取條件為：60℃恒溫水浴，提取時間2h，料液比1∶15g/mL，提取結束后抽濾，置旋轉蒸發器中減壓濃縮至100mL，得到花生紅衣的乙醇、丙酮、蒸餾水粗多酚供試液，放入冰箱中備用。

參照多酚類物質定性鑒定方法[5]：用體積分數2%的三氯化鐵-乙醇溶液對提取液進行顯色反應，溶液呈現墨綠色，同時提取液與溴水反應，出現白色沉淀；以上現象說明提取液有中多酚類物質存在。

1.2.2 最大吸收波長的確定 準確稱取5mg沒食子酸丙酯標品，用無水乙醇定容至50mL。以無水乙醇做空白，進行200～800nm的全波長掃描。

1.2.3 總多酚含量測定 配制酒石酸鐵溶液和pH為7.5的緩沖液[6-8]。

分別吸取0、1、2、3、4、5mL沒食子酸丙酯標準品溶液于50mL容量瓶中，加8mL蒸餾水，再加10mL酒石酸鐵溶液，用緩沖液定容。用紫外-可見分光光度計在最大吸收波長處測吸光度值。以蒸餾水代替沒食子酸標準品溶液配制空白，繪制總酚標準曲線。

精密吸取各多酚提液1mL于棕色容量瓶中，按上述標準溶液制作方法測定最大吸收波長處的吸光度值，求得試樣中總多酚的含量，平行測5次取平均值，計算公式如下：

其中，y為提取液吸光度；m為花生紅衣質量；a為標準曲線斜率；b為標準曲線截距。

1.2.4 多酚粗提液總抗氧化能力（T-AOC）的測定采用T-AOC測定試劑盒對花生紅衣中提取出來的總酚進行抗氧化能力測試。

測定原理：機體中有許多抗氧化物質，能使Fe3+還原成Fe2+，后者可與菲啉類物質形成穩固的絡合物，通過比色可測出其抗氧化能力的高低。

測定方法：精密吸取各多酚提取液0.1mL，分別按照表1和表2配制測定管和對照管。并用體積分數為0.02%的VC做陽性對照。

表2 抗氧化實驗操作步驟表Table 2 The antioxidant experiment operation step table

配制結束后混勻試劑，放置10min，以蒸餾水為空白，在520nm測定吸光度值。總抗氧化能力計算公式：

式中，ODU為測定管吸光度值；ODC為對照管吸光度值；N為反應體系稀釋倍數（反應液總體積/取樣量）；n為樣品測試前稀釋倍數。

在37℃時，每分鐘每毫升提取液使反應體系的吸光度值每增加0.01時，為一個總抗氧化能力單位。1.2.5 多酚粗提液對超氧陰離子自由基（O2-·）清除能力的測定 采用鄰苯三酚自氧化法。

鄰苯三酚自氧化速率的測定[9-11]：取4.5mL 50mmol/L的Tris-鹽酸緩沖溶液（pH8.2）與4.2mL蒸餾水混勻后在25℃水浴中保溫20min，取出后立即加入在25℃預熱過的3mmol/L鄰苯三酚溶液0.3mL，迅速搖勻后倒入比色皿中，在320nm下每隔30s測定吸光度，計算線性范圍內每分鐘吸光度的增加，以10mmol/L鹽酸溶液配制空白樣作為對照。

加入多酚提取液后鄰苯三酚自氧化速率的測定：按照上述步驟在加入鄰苯三酚前先加入0.1mL多酚提取液，同樣以10mmol/L鹽酸溶液配制空白樣作為對照，測定吸光度。并用體積分數0.02%的VC做陽性對照。抑制率按下公式計算。

抑制率（%）＝（ΔA1/Δt- ΔA2/Δt）/ΔA1/Δt×100

式中：ΔA1/Δt-鄰苯三酚自氧化時反應速率；ΔA2/Δt-加入樣品液后鄰苯三酚自氧化時反應速率。1.2.6 多酚粗提液對羥基自由基（·OH）清除作用的測定 利用過氧化氫和鐵離子混合產生羥自由基，在體系內加入水楊酸產生有色物質，該物質在510nm波長處有最大吸收波長。反應體系中含8.8mmol/L H2O21mL、9mmol/L FeSO41mL、9mmol/L水楊酸-乙醇溶液1mL、花生紅衣粗多酚提取液0.3mL。在37℃反應0.5h，以蒸餾水為空白，在510nm處測量花生紅衣粗多酚提取液的吸光度?？紤]到花生紅衣粗多酚提取液的吸光度，以9mmol/L FeSO41mL、9mmol/L水楊酸-乙醇溶液1mL、花生紅衣粗多酚提取液0.3mL和1mL蒸餾水在510nm波長處的吸光度作為花生紅衣粗多酚的本底吸光度[12-15]。并用體積分數為0.02%的VC做陽性對照。清除率計算公式如下：

式中，A0為空白對照液的吸光度；A1為加入花生紅衣粗多酚提取液的吸光度；A1x為不加顯色劑H2O2花生紅衣粗多酚提取液本底的吸光度。

2 結果與討論

2.1 最大吸收波長的確定

由圖1看出，沒食子酸丙酯在540nm附近有最大吸收峰，因此最大吸收波長為540nm。

2.2 花生紅衣提取液粗多酚含量測定

按照1.2.3的方法制作總酚標準曲線，得到回歸方程和相關系數分別為：y=49.586x+0.0039，R2=0.9996。對花生紅衣多酚提取液樣品中總多酚的含量進行測定，結果見表3。

圖1 沒食子酸丙酯標準對照品紫外光譜Fig.1 Gallic acid propyl standard reference substance ultraviolet spectrum

表3 提取液中總多酚含量測定結果Table 3 Extract of total polyphenol content determination results

由表3可看出，提取劑對提取物中總多酚的含量高低有一定的影響，3種花生紅衣粗多酚提取液中，60%乙醇酚提液總酚含量最高，60%丙酮酚提液次之，蒸餾水酚提液含量較低。因此在今后的研究中選擇60%乙醇為最佳提取溶劑。

2.3 多酚粗提液T-AOC

按照1.2.4的方法對三種提取液抗氧化能力進行測試，結果如表4所示。

表4 不同提取液的T-AOC結果Table 4 Effect of different extracts of T-AOC results

由表4可以看出，三種花生紅衣粗多酚提取液均有總抗氧化能力，其中60%乙醇提取液總抗氧化能力最高，60%丙酮提取液次之，蒸餾水提取液總坑氧化能力最弱。與0.02%的VC對比，60%乙醇提取液總抗氧化能力高于0.02%的VC，60%丙酮提取液的總抗氧化能力與VC相當，蒸餾水提取液總抗氧化能力低于0.02%的VC。

2.4 多酚粗提液對O2-·的清除能力

按照1.2.5的方法對三種提取液對O2-·的清除能力進行測定，結果如表5所示。

表5 不同提取液對O2-·抑制率Table 5 Effect of different extracts on O2-·inhibition rate determination results

由表5可以看出三種花生紅衣粗多酚提取液中，60%乙醇提取液對O2-·抑制率最高，60%丙酮提取液與蒸餾水提取液對O2-·抑制率相當。與0.02%VC相比，60%乙醇提取液對O2-·抑制率高于0.02%VC，60%丙酮提取液和蒸餾水提取液對O2-·抑制率均低于0.02%的VC。

2.5 多酚粗提液對·OH清除作用的測定

按照1.2.6的方法對三種提取液的·OH的清除作用進行測定，結果如表6所示。

表6 不同提取液對羥自由基（·OH）清除率結果Table 6 Effect of different extraction on hydroxyl free radical（·OH）clearance rate results

由表6可以看出，三種花生紅衣多酚粗提液中，60%乙醇提取液對·OH清除率最高，60%丙酮提取液次之，蒸餾水提取液對·OH清除率最弱。與0.02%VC對比，60%乙醇提取液對·OH清除率與0.02%的VC相當，60%丙酮提取液略低于0.02%的VC，蒸餾水提取液對·OH清除率低于0.02%的VC。

3 結論

體外抗氧化活性實驗證明，3種花生紅衣粗多酚提取液均具有一定的抗氧化活性，并且60%乙醇提取液抗氧化能力高于0.02%VC。在3個不同的抗氧化體系中，60%乙醇提取液的抗氧化活性始終最強，60%丙酮提取液的抗氧化活性次之，而蒸餾水提取液的抗氧化活性相對稍差；這與3種酚提液中總多酚含量的高低排序相一致，表明多酚類物質在花生紅衣提取液的抗氧化活性中有重要作用，使用乙醇作為溶劑可以得到較多的多酚類活性物質。

[1]陳海光，劉朝霞，于立梅.山竹果皮中多酚類物質的抗氧化性研究[J].食品工業科技，2011，32（9）：107.

[2]涂宗財，張露，王輝，等.超聲波輔助提取藜蒿多酚工藝優化及抗氧化活性研究[J].食品工業科技，2012，33（5）：239.

[3]陳陽，張浩，王文軍，等.梔子黃多酚含量與抗氧化活性的相關性研究[J].食品工業科技，2011，32（10）：125.

[4]Malencic D，Maksimovic Z，Popovic M，et al.Polyphonel contents and antioxidant activity of soybean seed Extracts[J].Bioresore Technol，2008，99（14）：6688-6691.

[5]李國秀.石榴多酚類物質的分離鑒定和抗氧化活性研究[D].西安：陜西師范大學，2008.

[6]劉曉艷，白衛東，葉綠婷.響應面法優化超聲輔助花生紅衣多酚的提取工藝研究[J].農產品加工·學刊，2011（2）：16.

[7]姚永志，左錦靜，王子涵.乙醇提取花生紅衣多酚物質的研究[J].中國油脂，2007，32（3）：51-52.

[8]姚永志，王子涵，左錦靜.水作溶劑提取花生紅衣多酚物質的研究[J].現代食品科技，2006，22（4）：110-111.

[9]Roberta S，Paola C，Mirco L，et al.Biochemical characterization and antioxidant activity of mycelium of Ganoderma lucidum from central Italy[J].Food Chemistry，2009，116（1）：143-151.

[10]韓少華，朱靖博，王妍妍.鄰苯三酚自氧化法測定抗氧化活性的方法研究[J].中國釀造，2009（6）：155-157.

[11]陳玫，張海德，陳敏.幾種中藥不同溶劑組分的抗氧化活性研究[J].中山大學學報，2006，45（6）：131-133.

[12]Akowuah G A， Ismail Z， Norhayati I， et al.The effects of different extraction solvents of varying polarities on polyphenols of Orthosiphon stamineus and evaluation of the free radicalscavenging activity[J].Food Chemistry，2005，93：31l-317.

[13]徐勝龍，楊建雄.柿子醇提物的體內抗氧化研究[J].食品科學，2008，29（4）：131-134.

[14]回瑞華，候冬巖，李鐵純，等.洋蔥中黃酮化合物及抗氧化性的分析[J].鞍山師范學院學報，2010，12（2）：13-16.

[15]楊潤亞，明永飛，王慧.無花果葉中總黃酮的提取及其抗氧化活性測定[J].食品科學，2010，31（16）：78-82.