蔣 威,徐 旭,景艷艷,楊 贊,方尚玲*
(湖北工業(yè)大學(xué) 生物工程學(xué)院 工業(yè)發(fā)酵湖北省協(xié)同創(chuàng)新中心 發(fā)酵工程教育部重點實驗室,湖北 武漢 430068)
梔子是茜草科(Rubiaceae)梔子屬(Gardenia)植物,具有瀉火除煩、清熱利尿、涼血解毒的作用,外治扭挫傷[1-2]。近年來對梔子苷的研究表明,其在消化系統(tǒng)、心血管系統(tǒng)、中樞神經(jīng)系統(tǒng)及抗炎、抗腫瘤、降血糖方面具有廣泛的藥理作用[3-6]。
大孔吸附樹脂是一類不帶離子交換基團的多孔性交聯(lián)聚合物吸附劑,具有良好的大孔網(wǎng)狀結(jié)構(gòu)和較大的比面積,對化學(xué)物質(zhì)的分離作用主要由其吸附選擇性產(chǎn)生,對單味中藥提取物中苷類成分、黃酮、生物堿的分離效果良好,有的已經(jīng)實現(xiàn)工業(yè)化生產(chǎn)[7-9]。
目前,梔子中梔子苷的提取和純化方法多為水提醇沉法。本實驗以提取梔子黃之后的廢液為原料,利用大孔吸附樹脂富集,以較簡便的方法得到較高純度的梔子苷產(chǎn)品,有利于工業(yè)化大規(guī)模生產(chǎn)。
梔子:市售;梔子苷廢液:利用梔子果提取梔子黃時產(chǎn)生的廢液;梔子苷對照品:中國生物制品檢定所,批號20 140122;大孔樹脂X-5、AB-8、HPD-400、D3520、D1300、NKA:鄭州勤實科技有限公司;其余試劑均為國產(chǎn)分析純。
UV-2201PC型紫外-可見分光掃描儀:日本島津公司;EV-201旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)儀:上海亞榮生化儀器廠。
1.3.1 樹脂靜態(tài)吸附實驗
(1)樹脂的預(yù)處理
樹脂預(yù)處理方法見參考文獻[10]。
(2)靜態(tài)吸附實驗
靜態(tài)吸附實驗見參考文獻[11]。
靜態(tài)吸附實驗吸附率及解吸率的計算公式為:


式中:A1為吸附前梔子苷粗提液在238 nm處的吸光度值,A2為吸附平衡后梔子苷粗提液在238 nm處的吸光度值,A3為解吸后體積分數(shù)30%乙醇中梔子苷粗提液在238 nm處的吸光度值。
1.3.2 樹脂動態(tài)吸附實驗
(1)樹脂的預(yù)處理
樹脂預(yù)處理方法同上。
(2)動態(tài)吸附流速確定研究
分別以1.0 mL/min、1.5 mL/min、2.0mL/min、2.5mL/min、3.0 mL/min的流速進行動態(tài)吸附。當達到吸附平衡時,流出液的吸光度值不再變化,記錄上樣液和流出液體積,測定總流出液和樣液的吸光度值,吸附量計算公式如下:

式中:V樣為上樣液體積,mL;V流流出液體積為,mL;A流為總流出液的吸光度值;A樣為樣液的吸光度值;V柱為樹脂床體積,mL。
(3)不同濃度梔子廢液對樹脂吸附率的研究
各取120 mL(3BV)不同濃度梔子苷廢液(稀釋5、10、15、20、25倍)上柱,確定流速動態(tài)吸附,分別收集流出液,在238 nm波長處測定吸光度值A(chǔ)238nm,確定最佳梔子苷廢液濃度,吸附率計算公式如下:

式中:A0為梔子苷上樣液238 nm處吸光度值,V0為上樣體積,mL;A1為流出液在238 nm處吸光度值,V1為流出液體積;mL。
(4)泄漏曲線的繪制
上述條件下將梔子廢液上柱吸附,每20 mL流出液收集一份,以每份流出液在238 nm波長處的吸光度值為縱坐標,以流出液編號為橫坐標,繪制泄漏曲線。
1.3.3 動態(tài)洗脫實驗
(1)不同體積分數(shù)乙醇對樹脂的影響
分別用不同體積分數(shù)的乙醇對吸附飽和的樹脂進行洗脫,每20 mL流出液收集一份,分別測定其在238 nm波長處的吸光度值A(chǔ)238nm,以流出液的編號為橫坐標,以每份流出液在238 nm波長處的吸光度值為縱坐標,繪制不同體積分數(shù)乙醇洗脫曲線。
(2)不同流速對樹脂洗脫的影響
以確定乙醇體積分數(shù)作為洗脫劑,分別采用不同的流速對梔子苷洗脫,實驗步驟同上,繪制不同流速洗脫曲線。
(3)動態(tài)洗脫曲線的繪制
以確定上樣液濃度,流速,吸附量條件下得到已經(jīng)飽和樹脂,再以上述確定洗脫流速,用2BV去離子水除去水溶性雜質(zhì),用確定乙醇體積分數(shù)進行洗脫,實驗步驟同上,繪制動態(tài)洗脫曲線。收集同一吸收峰吸光度值高的各管洗脫液,分別合并,減壓濃縮、真空干燥,測定梔子苷的含量。
1.3.4 梔子苷的濃縮與干燥
文言文教學(xué)固然存在或多或少的問題。如何認清問題的存在,很好地解決問題是當下急需重視的內(nèi)容。只有解決好這些問題,才能更好地指導(dǎo)文言文教學(xué)實踐。
(1)真空蒸發(fā)濃縮
使用旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)儀將精制后的梔子苷減壓濃縮除去大量乙醇和部分水分。
(2)低溫干燥
將濃縮后的梔子苷置于50 ℃干燥箱內(nèi)24 h,得淡黃色粉末梔子苷。
1.3.5 梔子苷含量的測定
(1)標準曲線的制作
采用紫外分光光度法,精密稱取梔子苷對照品5.1 mg,溶解于體積分數(shù)為95%乙醇中,定容于25 mL容量瓶中,精密移取0、0.5 mL、1.0 mL、1.5 mL、2.0 mL、2.5 mL于10 mL容量瓶中,分別加體積分數(shù)為95%乙醇稀釋定容至刻度,以體積分數(shù)為95%乙醇為空白,于238 nm波長處測定吸光度值A(chǔ)238nm,繪制標準曲線,得線性回歸方程[12]。
(2)樣品測定
以不同樹脂對梔子苷不同的吸附率和解吸率為標準,篩選對其吸附能力及解吸能力強的樹脂,選擇6種樹脂進行實驗,結(jié)果如表1所示。

表1 不同型號大孔吸附樹脂對梔子苷的吸附解吸性能比較Table 1 Absorption and desorption performance of different types of macroporous resin for gardenoside
由表1可知,D1300樹脂吸附率和解吸率均大于其他樹脂,因此,在后續(xù)研究中確定D1300型大孔吸附樹脂對梔子苷進行精制純化。
2.2.1 不同流速對樹脂吸附量的影響
分別以1.0 mL/min、1.5 mL/min、2.0 mL/min、2.5 mL/min、3.0 mL/min的流速進行動態(tài)吸附,流速對樹脂吸附量的影響結(jié)果見圖1。

圖1 流速對樹脂吸附量的影響Fig.1 Effects of sample velocity on adsorption capacity
由圖1可知,隨著流速的增加,樹脂吸附量逐漸降低,不利于樹脂的吸附。雖然流速為1.0 mL/min時,樹脂的吸附量最大,但是低流速會延長吸附時間,同時滯留在樹脂中的雜質(zhì)也會增多;而高流速下樹脂吸附量下降太快,綜合考慮,確定1.5 mL/min為最佳吸附流速。
2.2.2 上樣液濃度對樹脂吸附率的影響
以1.5mL/min為吸附流速,各取120 mL(3BV)不同濃度梔子苷廢液(在238 nm處吸光度值分別為1.372 9、1.683 0、2.293 0、3.150 3上柱,上樣液濃度對樹脂吸附量的影響結(jié)果見圖2。

圖2 上樣液濃度對樹脂吸附率的影響Fig.2 Effects of sample concentration on adsorption rate
由圖2可知,梔子苷濃度越低越利于吸附,但是濃度過低,樹脂吸附雜質(zhì)越多,增加了分離難度。當梔子苷廢液吸光度值A(chǔ)238nm=1.683時,樹脂吸附率降低幅度不大,故選擇梔子苷廢液吸光度值A(chǔ)238nm=1.683作為最佳上樣液濃度。
2.2.3 吸附泄漏曲線的制作
以1.5 mL/min為吸附流速,以梔子苷廢液吸光度值A(chǔ)238nm=1.683為樣液濃度上柱吸附,每20 mL流出液收集一份,以每份流出液在238 nm波長處的吸光度值為縱坐標,以流出液編號為橫坐標,吸附泄漏曲線見圖3。

圖3 梔子苷的吸附泄露曲線Fig.3 Leakage adsorption curve of geniposide
由圖3可知,當收集到第12份時,梔子苷開始泄露,所以梔子苷廢液(A238nm=1.683)的飽和吸附容量為12×20 mL,即12 BV(樹脂柱體積為20 mL)。
2.3.1 不同體積分數(shù)乙醇對樹脂洗脫的影響
不同體積分數(shù)乙醇對樹脂洗脫的影響結(jié)果見圖4。

圖4 洗脫劑乙醇體積分數(shù)對洗脫率的影響Fig.4 Effect of ethanol concentration on elution rate
由圖4可知,體積分數(shù)為40%、50%乙醇洗脫效果最好,體積分數(shù)為30%乙醇其次,體積分數(shù)為10%、20%乙醇洗脫效果最差。但是乙醇體積分數(shù)過高,會將梔子廢液中的梔子色素洗脫下來[13-15],且體積分數(shù)為40%,50%乙醇洗脫時存在拖尾現(xiàn)象,而體積分數(shù)為30%乙醇洗脫曲線窄,不存在拖尾現(xiàn)象,故選擇體積分數(shù)為30%乙醇作為洗脫劑。
2.3.2 不同流速對樹脂洗脫的影響
以體積分數(shù)30%的乙醇作洗脫劑,分別以1.0 mL/min、1.5 mL/min、2.0 mL/min、2.5 mL/min、3.0 mL/min的流速進行動態(tài)洗脫實驗。流速對樹脂洗脫的影響結(jié)果見圖5。
由圖5可知,低流速有利于梔子苷的洗脫,但低流速洗脫時所花時間也越長,同時增加了洗脫液中的雜質(zhì);流速過高,洗脫劑與樹脂接觸不完全,洗脫效果差,綜合考慮,選擇2 mL/min為最適洗脫速率。

圖5 洗脫流速對洗脫率的影響Fig.5 Effect of elution rate on elution rate
2.3.3 動態(tài)洗脫曲線的繪制
以1.5 mL/min為吸附流速,以梔子苷廢液吸光度值A(chǔ)238nm=1.683為樣液濃度上柱吸附,得到飽和樹脂;再以2 mL/min洗脫流速,用2BV去離子水除去水溶性雜質(zhì),用體積分數(shù)30%乙醇進行洗脫,動態(tài)洗脫曲線見圖6。

圖6 動態(tài)洗脫曲線Fig.6 Dynamic elution curve
由圖6可知,梔子苷洗脫高峰相對集中,體積分數(shù)為30%乙醇2.5~6.5 BV時,梔子苷含量最高,當洗脫液>7.0 BV時,梔子苷含量明顯減少。收集體積分數(shù)為30%乙醇2.5~6.5 BV洗脫液,減壓濃縮,真空干燥,得到精制梔子苷。
2.4.1 標準曲線的制作
采用紫外分光光度法,于238 nm 波長處測定吸光度值繪制標準曲線,得線性回歸方程y=9.670 4x+0.038 9,相關(guān)系數(shù)R2=0.990 6,表明線性關(guān)系良好。
2.4.2 樣品測定
精密稱取5.1 mg干燥的樣品(經(jīng)大孔樹脂吸附、洗脫、濃縮、干燥后的梔子苷粉末),置于25 mL量瓶中,用體積分數(shù)為95%乙醇溶解,并定容到25 mL容量瓶中,精確吸取1 mL于10 mL容量瓶中,加體積分數(shù)為95%乙醇定容至刻度,以體積分數(shù)為95%乙醇作為空白,于238 nm波長處測吸光度值為0.436 5,計算得到梔子苷粉末中梔子苷含量為82.23%。
根據(jù)以上研究和分析,確定梔子苷精制樹脂的最佳條件:大孔吸附樹脂選擇D1300,上樣液梔子苷廢液的吸光度值A(chǔ)238nm為1.683 0,吸附流速為1.5 mL/min,吸附飽和量為12BV,洗脫流速為2 mL/min,梯度洗脫,2BV水洗,4BV體積分數(shù)為30%乙醇洗脫。收集體積分數(shù)為30%乙醇洗脫液,濃縮干燥后得到純度為82.23%的固態(tài)梔子苷產(chǎn)品。該實驗方法簡單,材料便宜,產(chǎn)品純度比較高,適合工業(yè)化生產(chǎn)。大孔樹脂吸附純化的工藝參數(shù)較多,如樣液上柱前的凈化方法、樹脂徑高比等有待進一步研究。
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