賈曉鵬 王偉 李文平 黃官禮 李斌
【摘要】目的:探討MDSCs定向分化的調控及其在壓力性尿失禁中的應用。方法:選取120只健康純系雌性大鼠,分為2組,每組60只。A組建立尿失禁大鼠模型,不進行細胞注射;B組建立尿失禁模型,然后注射MDSCs。結果:C組大鼠相對于B組大鼠來說,大鼠的最大膀胱容量與漏尿點壓都有明顯增加,P<0.05,具有統計學意義。結論:肌源性干細胞注射對于治療壓力性尿失禁有一定應用價值,但是其具體應用效果與方法還需要進一步進行分析研究。
【關鍵詞】MDSCs定向分化;壓力性尿失禁
【中圖分類號】R4【文獻標識碼】B【文章編號】1671-8801(2014)08-0098-01
為探討MDSCs定向分化的調控及其在壓力性尿失禁中的應用,本文選取120只健康純系雌性大鼠進行了相關分析研究,具體結果報告如下。
1資料與方法
1.1 一般資料選取120只健康純系雌性大鼠,大鼠體重在250g±50g,均在同一條件下飼養。將所有大鼠分為2組,每組60只。A組建立尿失禁大鼠模型,不進行細胞注射;B組建立尿失禁模型,然后注射MDSCs。兩組大鼠在性別、體重等一般資料方面均不存在明顯差異,P>0.05,可以進行統計學對比分析。
1.2試驗方法
1.2.1坐骨神經橫斷術先對兩組大鼠注射濃度為2%的戊巴比妥進行麻醉,然后將大鼠進行俯臥固定,剔除骶骨體毛,然后在骶骨正中且1cm切口分離脊柱與坐骨肌肉,找到坐骨神經,然后在坐骨神經脊柱起源的遠端、陰部神經分支的近端用剪刀剪斷坐骨神經2mm。兩組大鼠在行坐骨神經橫斷術后常規飼養2周。
1.2.2肌源性干細胞注射將培養好的肌源性干細胞加入濃度為0.1%的胰蛋白酶液,在常溫下進行培養3~5min,使消化液覆蓋所有細胞表面,在細胞變形時,加入10%濃度胎牛血清+10%濃度馬血清+含有1%青霉素的Ham-F10培養液終止消化,然后將培養液制成單細胞懸液。先對大鼠注射濃度為2%的戊巴比妥進行麻醉,然后將大鼠進行俯臥固定,然后利用碘伏對大鼠下腹進行消毒,沿下腹切開,暴露尿道。進行尿道消毒后,將硬膜外導管插入大鼠尿道,然后對B組大鼠注射肌源性干細胞懸液10μl。
1.3觀察指標觀察注射2周后,3組大鼠尿動力學變化。
1.4統計學方法采用SPSS18.0軟件進行統計學分析,計量資料采用t檢驗,用X±S表示,P<0.05說明具有統計學意義。
2結果
B組大鼠相對于A組大鼠來說,大鼠的最大膀胱容量與漏尿點壓都有明顯增加,P<0.05,具有統計學意義。具體結果見表1。
3討論
壓力性尿失禁(SUI)是女性常見疾病,其是指由于各種原因引起盆底肌肉筋膜組織松弛,膀胱及尿道位置發生改變,尿道阻力降低,導致排尿自禁功能出現障礙[1]。而導致壓力性尿失禁的主要原因有兩個:尿道固有括約肌缺陷及膀胱頸支持功能障礙[2],其中括約肌缺陷是主要因素,特別是對于老年患者來說,幾乎都存在括約肌缺陷。由于括約肌受到損害,受創機體局部肌肉組織就會發生肌肉再生,用以修補受損肌肉組織,形成新的完整的肌肉組織,然而當尿道固有括約肌存在缺陷時,其成肌功能就會出現障礙。因此,專家認為,要想真正的糾正壓力性尿失禁,就要首先糾正尿道固有括約肌缺陷,以改善患者成肌功能,從根本上解決壓力性尿失禁問題。
表1注射前后大鼠尿動力學變化(X±S)
組別 注射前 注射1周 注射2周
最大膀胱容量(ml) 漏尿點壓力(cmH2O) 最大膀胱容量(ml) 漏尿點壓力(cmH2O) 最大膀胱容量(ml) 漏尿點壓力(cmH2O)
A組(n=41) 1.87±0.10 14.32±0.58 1.85±0.12 14.78±0.61 1.91±0.15 14.12±1.33
B組(n=41) 1.86±0.18 16.58±1.25 2.52±0.18 22.27±1.21 2.96±0.14 25.61±0.45
隨著基因技術和組織工程的發展和深入,干細胞移植成為機體肌肉組織修復損傷的重要手段,目前,通過干細胞移植來治療肌肉組織損傷的研究已經取得了重大進展。MDSCs即Muscle derived stem cells,中文譯為肌源性干細胞,肌源性干細胞可以有效分化為骨骼肌成肌細胞、造血細胞、成骨細胞以及成軟骨樣細胞[3],其可以有效參與成肌纖維的修復過程,改善肌肉組織功能結構。本研究,將肌源性干細胞注射進尿失禁大鼠模型中,大鼠的膀胱容量和最大漏尿點壓力都有明顯增加,這就提示我們在進行肌源性干細胞移植后,其可能轉化為纖維細胞參與尿道修復過程,從而改變尿道固有括約肌存在缺陷,也就可能在根本上治療壓力性尿失禁。然而,目前其具體作用機制并不完全明確,還需要進一步進行分析探討。
參考文獻:
[1]Yokoyama T, Pruchnic R, Lee JY, et al. Autologous primary muscle-derived cells transfer into the lower urinary tract. Tissue Eng,2011,18(7):395-404.
[2]Cannon TW, Lee JY, Somogyi G, et al. Improved sphincter contractility after allogenic muscle-derived progenitor cell injection into the enervated rat urethra. Urology, 2013,7(62):958-963.
[3]涂由兵,李愛斌.肌源干細胞注射治療壓力性尿失禁的研究進展[J].中國組織工程研究與臨床康復,2010,7(32):6036-6039.
【此論文是河北省衛生廳課題(課題批準編號20110095)的研究成果?!?/p>