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晚期糖基化終產(chǎn)物改變心肌細胞自發(fā)鈣火花形態(tài)學*

2014-08-13 12:39:58鄧建新劉文娟林澤勛王永輝閻德文
中國病理生理雜志 2014年11期
關鍵詞:糖尿病

鄧建新, 劉文娟, 林澤勛, 王永輝, 閻德文

(深圳大學 1第一附屬醫(yī)院內(nèi)分泌科, 2醫(yī)學院病理生理學教研室,廣東 深圳 518060; 3南方醫(yī)科大學病理生理學教研室,廣東 廣州 510515)

在心肌細胞的興奮收縮過程中,鈣離子起著至關重要的橋梁作用。心肌細胞興奮引起膜上的L-型鈣通道(L-type calcium channel,LCC)開放,鈣離子從胞外進入胞內(nèi)。進入的鈣離子又激活雷諾丁受體(ryanodine receptor,RyR)鈣釋放通道,肌漿網(wǎng)中的鈣庫瞬時打開,使得胞內(nèi)鈣濃度瞬間升高,最終引起細胞的收縮。鈣火花是內(nèi)質(zhì)網(wǎng)/肌漿網(wǎng)(sarcoplasmic reticulum, SR)上單個鈣釋放單元中雷諾丁受體隨機性的開放事件,其發(fā)現(xiàn)使得我們可以借助激光共聚焦顯微鏡實時觀察到鈣釋放單元(Ca2+release unit,CRU)激活和內(nèi)質(zhì)網(wǎng)/肌漿網(wǎng)鈣離子外流的情況,它是反映陣列RyR 的門控及其所形成的微鈣區(qū)域信號。“鈣火花”(Ca2+spark)及其相關鈣信號事件是近百年來生理學研究領域的一個重大的發(fā)現(xiàn),它們揭示了鈣信號局部控制的新機制,以及細胞內(nèi)精細的鈣信號結(jié)構(gòu)體系。

近年來,糖尿病的發(fā)病率在我國急劇上升,目前已有超過9 400萬的糖尿病患者,此外尚有約 1.5億中國人處于糖尿病前期,中國已成糖尿病患者大國[1]。晚期糖基化終產(chǎn)物(advanced glycation end products, AGEs)是機體在長期高糖狀態(tài)時蛋白質(zhì)和還原糖之間經(jīng)過非酶性糖基化反應生成的物質(zhì),它被認為是糖尿病最主要的致病物質(zhì)之一。很多的疾病如糖尿病、炎癥、腎功能衰竭等都可以引起AGEs的聚集。已有的研究表明AGEs 主要通過與其受體RAGE作用從而促發(fā)氧化應激反應,導致 ROS 大量產(chǎn)生, 促進一系列炎癥因子的表達,進而引起細胞的損傷。但是AGEs對心肌細胞鈣信號調(diào)控機制尚不完全清楚。

材 料 和 方 法

1 材料

1~3 d SD乳鼠20只,購于南方醫(yī)科大學實驗動物中心。AGEs由南方醫(yī)科大學黃巧冰教授惠贈;膠原酶II購于Worthington;5-溴脫氧尿嘧啶和胰蛋白酶購于Sigma;DMEM培養(yǎng)基和 新生牛血清為Gibco產(chǎn)品; Fluo-4 AM購于Invitrogen;其余無特別說明為國產(chǎn)分析純。主要的儀器為Zeiss LSM-780倒置共聚焦顯微鏡(Zeiss)。

2 方法

2.1乳鼠心肌細胞的原代培養(yǎng) 用胰蛋白酶消化方法[2]把1~3 d 齡 SD大鼠心室肌消化成單細胞懸液。經(jīng)差速法貼壁心肌細胞:37 ℃、5 % CO2培養(yǎng)箱中培養(yǎng)60~90 min,分離純化心肌細胞。將純化的細胞按1×105細胞數(shù)接種于35 mm培養(yǎng)皿中(培養(yǎng)皿事先加入了共聚焦專用玻片),培養(yǎng)24 h后饑餓2 h,然后加入不同濃度的AGEs進行刺激,8 h后進行鈣火花檢測實驗[3]。

2.2熒光染料的加載 把鈣熒光指示劑Fluo-4 AM(5 μmol/L)與細胞共同孵育10 min(室溫、避光),之后清洗3次,以去除多余的熒光染料。將加載好熒光染料的細胞置于Zeiss LSM-780 倒置共聚焦顯微鏡系統(tǒng)的載物臺上,以臺氏液灌流細胞等待實驗。

2.3鈣火花的采集 由于鈣火花的發(fā)放速度快、時程短,因此采用線掃描的方式進行捕捉。 在400倍鏡下,固定激光強度為2%,隨機選取橫紋清晰、無自主跳動的細胞,采樣速率為每線3.07 ms,采集1 000條線,在采集過程中放大倍數(shù)和采樣速度應盡量保持一致以便于數(shù)據(jù)統(tǒng)計分析。激發(fā)光波長為488 nm,收集波長為505 nm以上的發(fā)射光。鈣火花圖像采用IDL 6.3軟件進行處理。參照以往的方法[4],選取無鈣信號釋放區(qū)域進行靜息鈣水平的分析。

3 統(tǒng)計學處理

用SPSS 13.0軟件分析。統(tǒng)計方法為單因素方差分析,方差齊時采用LSD法,方差不齊時組間比較采用Welch檢驗。數(shù)據(jù)以均數(shù)±標準誤(mean±SEM)表示,以P<0.05為差異有統(tǒng)計學意義。

結(jié) 果

1 AGE增加鈣火花的發(fā)放頻率

結(jié)果表明,AGEs可以顯著增加心肌細胞自發(fā)鈣火花的發(fā)放頻率。對照組的鈣火花發(fā)放頻率為1.56±0.13 (n=274), 10 mg/L AGEs 組為2.31±0.24 (n=258),50 mg/L AGEs 組自發(fā)鈣火花的發(fā)放頻率為4.68±0.30 (n=180),150 mg/L AGEs 組鈣火花的發(fā)放頻率為3.59±0.25 (n=158),見圖1。

Figure 1. AGEs increased spontaneous calcium sparks frequency.Mean±SEM.**P<0.01 vs control.

2 AGEs 改變自發(fā)鈣火花的形態(tài)

在觀察AGEs 調(diào)控鈣火花發(fā)放頻率的同時,發(fā)現(xiàn)AGEs可以影響鈣火花的形態(tài)學特性。選取各組的鈣火花通過三維重組技術后可以看出,AGEs使得鈣火花的大小減小,見圖2。在分析的鈣火花動力學時,我們著重分析鈣火花的4個特征:鈣火花峰值幅度(amplitude, F/F0)、空間半高寬(full width at half maximum, FWHM;空間變化曲線中高于峰值1/2的曲線部分所對應的距離計算)、持續(xù)時程(full du-ration at half maximum, FDHM;時間變化曲線中高于峰值1/2的曲線部分所持續(xù)的時間)和上升時間(rise time,RT;指鈣火花起始處到峰值處所經(jīng)歷的時間)均有不同程度的變化,見表1。

Figure 2. AGEs changed spontaneous calcium sparks morphology. A: typical calcium spark line scan image; B: single three-dimensional diagram of recombinant calcium sparks

3 AGEs增加心肌細胞靜息期肌漿網(wǎng)內(nèi)鈣水平

結(jié)果顯示,AGEs組略微增加靜息期內(nèi)鈣離子水平,鈣離子水平對照組為48.25±1.57,10 mg/L AGEs組(51.04± 2.01)與對照組相比差異不明顯,50 mg/L AGEs組(53.45±2.28)和150 mg/L AGEs 組(60.27±4.28)均較對照組明顯升高(P<0.05或P<0.01),見圖3。

表1 AGEs改變鈣火花形態(tài)學指標

Figure 3. Effects of AGEs on cardiomyocyte resting Ca2+.Mean±SD.*P<0.05,**P<0.01 vs control.

討 論

在本實驗中,我們發(fā)現(xiàn)AGEs可以增強肌漿網(wǎng)中RyR的活性,使得心肌細胞自發(fā)鈣火花發(fā)放頻率增加,并使鈣火花的形態(tài)發(fā)生改變。鈣火花形態(tài)反映了豐富的信息,包括CRU 的門控、釋放的離子流、微觀尺度的鈣擴散及這些過程的生理調(diào)控。鈣火花反映的是單個或少數(shù)幾個RyR的同步開放。鈣火花的發(fā)放頻率及功能特性反映舒張期RyR的功能活動,同時還反映SR鈣庫和胞漿鈣的平衡狀態(tài)[5]。鈣火花的發(fā)現(xiàn),使人們得以在完整細胞更接近生理條件下研究RyR的功能。

正常靜息心肌細胞,RyR通道主要處于關閉狀態(tài),只有零星的鈣火花發(fā)放,有利于維持正常的SR鈣庫容量。但若病理刺激引起舒張期RyR通道開放異常增加,勢必導致SR鈣漏流增強,SR鈣庫容量減少,使心肌收縮力減弱。SR鈣漏流還引起心肌細胞鈣超載,從而造成心肌細胞的損傷。近些年來,一系列研究工作發(fā)現(xiàn)心力衰竭的心肌細胞SR鈣漏流增加,是引起心衰的一個重要機制[4,6-9]。

借助鈣火花成像技術,Yaras等[10]研究發(fā)現(xiàn),鏈脲佐菌素誘導糖尿病大鼠5周時離體心肌細胞鈣火花頻率顯著增加。與此同時,還發(fā)現(xiàn)靜息期胞漿鈣濃度升高(鈣超載),收縮期鈣瞬變幅度降低,心肌收縮力減弱。AGEs對離體心肌細胞的作用與之相似,因此,我們有理由相信,AGEs引起的鈣火花增加介導的鈣漏流的產(chǎn)生,進而引起肌漿網(wǎng)鈣庫的下降,另外AGEs引起的鈣超載也對心肌細胞造成損傷,最終引起收縮期心肌收縮力的下降。這可能是糖尿病性心肌病心功能不全的重要機制。

[參 考 文 獻]

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[2] Liu W, Deng J, Xu J, et al. High-mobility group box 1 (HMGB1) downregulates cardiac transient outward potassium current (Ito) through downregulation of Kv4.2 and Kv4.3 channel transcripts and proteins[J]. J Mol Cell Cardiol, 2010, 49(3):438-448.

[3] Guo X, Wang L, Chen B, et al. ERM protein moesin is phosphorylated by advanced glycation end products and modulates endothelial permeability[J]. Am J Physiol Heart Circ Physiol, 2009, 297(1):H238-H246.

[4] Jiang X, Liu W, Deng J, et al. Polydatin protects cardiac function against burn injury by inhibiting sarcoplasmic reticulum Ca2+leak by reducing oxidative modification of ryanodine receptors[J]. Free Radical Biol Med, 2013, 60(8):292-299.

[5] Cheng H, Lederer WJ. Calcium sparks[J]. Physiol Rev, 2008, 88(4):1491-1545.

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[8] Belevych AE, Terentyev D, Viatchenko-Karpinski S, et al. Redox modification of ryanodine receptors underlies calcium alternans in a canine model of sudden cardiac death[J]. Cardiovasc Res, 2009, 84(3):387-395.

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[10] Yaras N, Ugur M, Ozdemir S, et al. Effects of diabetes on ryanodine receptor Ca release channel (RyR2) and Ca2+homeostasis in rat heart[J]. Diabetes, 2005, 54(11):3082-3088.

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