柴明艷
摘要:采用羧甲基纖維素鈉(CMC)-剛果紅平板法,對富含腐爛玉米秸稈的土樣進行纖維素酶產生菌的篩選及目標菌株發酵培養條件的優化試驗。結果表明,篩選分離出10株產纖維素酶菌株,其中有3株菌株產酶效果較好,特別是菌株tg31對玉米秸稈水解率高達37.62%,其最佳發酵工藝的溫度為28 ℃,發酵初始pH 5.0,接種量6%,搖瓶轉速180 r/min,經5 L罐放大試驗,得出在120 h時其濾紙酶活力(FPA)可達到14.21 IU/mL。
關鍵詞:纖維素酶;菌株;發酵;玉米秸稈;水解
中圖分類號:Q939.96 文獻標識碼:A 文章編號:0439-8114(2014)13-3141-04
Optimizing Conditions of Screening and Fermentation for a Strain of High-yield Cellulase
CHAI Ming-yan
(Pharmaceutical and Biological Engineering Department of Zibo Vocational Institute, Zibo 255314, Shandong, China)
Abstract: To obtain the high-yield cellulase strain, the sodium carboxymethyl cellulose (CMC)-congored plate method was used to screen cellulase-producing bacteria in soil samples riched with corn stalk fiber. Fermentation conditions were optimized also determined. The results showed that 10 cellulase-producing bacterial strains were isolated. Among these strains, three bacterial strains had the best effects on producing the celluloses. Especially, the strain tg31 could hydrolyze corn straw at a rate up to 37.62%. The optimal fermentation conditions were temperature of 28 ℃, initial fermentation with pH 5.0, 6% inoculation and shaking speed of 180 r/min. Under the optimal condition, the strain was amplified with 5 L tank and enzyme activity reached 14.21 IU/mL at 120 h. The strain Tg31 obtained the best FPA activity with significant hydrolysis rate of corn stalk, indicating that it had the abroad prospect of application.
Key words: cellulase; strain; fermentation; corn stalk; hydrolysis
中國是農業大國,每年產生的農作物秸稈總量超過7億t,約占世界秸稈總產量的1/3[1,2],其中玉米秸稈產量高達2.2億t[3]。玉米秸稈的主要成分是纖維素、半纖維素和木質素等,難以被人類有效利用。目前,中國玉米秸稈大部分被直接焚燒,不僅對環境造成了極大的污染,同時也浪費了大量的秸稈纖維素資源[4]。為改變現狀,開發纖維素酶降解玉米秸稈,實現廢棄資源的生物利用,已逐漸成為該領域的研究熱點之一。纖維素酶可充分降解秸稈中的纖維素,將其轉化為微生物可利用的糖類,大大提高玉米秸稈的經濟利用價值,該技術在醫藥中間體、精細化工、食品、飼料及生物能源等領域都有廣泛的應用前景[5,6]。因此,展開高產纖維素酶菌株的選育、發酵工藝條件優化等研究工作,對纖維素的商業化開發具有重大意義。
本研究在玉米秸稈地進行針對性的取樣篩選,獲得一株高產、高玉米秸稈水解率的菌株,并對其產酶條件進行了搖瓶優化及5 L罐發酵工藝放大,為玉米秸稈纖維素資源的產業化應用打下基礎。
1 材料與方法
1.1 材料
1.1.1 樣品采集 從遼寧省喀左縣富含腐爛玉米秸稈地區取土樣若干。
1.1.2 培養基 馬鈴薯葡萄糖瓊脂培養基(PDA)的配制參照邱雁臨等[7]的配方。初篩培養基:羧甲基纖維素鈉(CMC-Na)2.0 g,瓊脂2.2 g,土豆汁20 g,蔗糖2.0 g,去離子水 100 mL;復篩培養基:CMC-Na 2.0 g,瓊脂2.2 g,土豆汁20 g,蔗糖2.0 g,剛果紅0.02%,去離子水100 mL;發酵培養基:蛋白胨1.0 g,酵母粉1.0 g,CMC-Na 1.0 g,NaCl 0.5 g,KH2PO4 0.1 g,去離子水100 mL,pH 7.0。
1.2 方法
1.2.1 菌株 初篩:參照肖舸等[8]的方法稍加改動,稱取0.5 g 樣品加入49.5 mL含有玻璃珠的生理鹽水中(稀釋度為10-2),振蕩30 min混勻,并將上清液按10-3、10-4、10-5稀釋,各取1 mL稀釋液接種于分離培養基平板上,每個稀釋度進行兩次重復,28 ℃培養48 h,挑取生長較快的菌株純化兩次,鏡檢后接種到斜面上,4 ℃保存。復篩:使用打孔器將純化后的菌株挑取單菌落放置到CMC-剛果紅平板上,28 ℃培養3 d,測量透明圈的大小,透明圈大說明纖維素酶的分泌能力強[9]。
1.2.2 搖瓶發酵優化 研究搖瓶發酵溫度、pH、接種量及轉速對菌株產酶效果的影響,以期獲得最適的產酶工藝。用250 mL三角瓶將篩選得到的水解圈較大的菌株接種于30 mL液體發酵培養基中發酵培養。其中,溫度設計:24、26、28、30、32 ℃;初始pH設計:3、4、5、6、7、8;接種量設計:2%、4%、6%、8%、10%;搖瓶轉速設計:120、150、180、210、240 r/min。發酵5 d后取樣測酶活性,每個研究條件均設置2個平行樣。
1.2.3 濾紙(FPA)酶活測定 依據劉德海等[10]的研究,將發酵液5 000 r/min離心10 min,收集上清液,將0.5 mL發酵液上清液和1 mL 0.05 mol/L pH 4.8檸檬酸緩沖液加入試管,加熱至50 ℃,加入whatman濾紙[(50±1 mg)],反應60 min,立即加入3,5-二硝基水楊酸(DNS)反應液3 mL,水浴5 min。冷卻至室溫,用去離子水適當稀釋,在540 nm處測定吸光度。濾紙酶活定義為每分鐘轉化生產1 μmol葡萄糖所需的酶量為1 IU。
1.2.4 水解試驗 參照文獻[11],采用酶液進行水解試驗,水解體系為30 mL,反應溫度為50 ℃,底物濃度10%,pH 4.8的檸檬酸緩沖液為緩沖體系,酶的裝載量根據底物量定為10 IU/g。分別對玉米芯、玉米秸稈、木屑、蔗糖渣與棉子殼進行水解試驗。
1.2.5 5 L發酵罐放大 將搖瓶獲得的最佳發酵工藝條件進行5 L發酵罐放大試驗,發酵開始24 h第一次取樣,以后每隔12 h進行一次取樣,共發酵120 h。
2 結果與分析
2.1 產纖維素酶菌株的分離篩選
采用剛果紅染色法從富含腐爛玉米秸稈的土樣中篩選獲得菌圈較大的10株菌株,菌株編號及透明菌圈直徑如表1所示。jx25、lt01及tg31產纖維素酶能力最強,選取此3株菌株進行發酵工藝優化試驗。
2.2 搖瓶發酵結果
2.2.1 最佳溫度 試驗考察不同溫度水平對3株菌株搖瓶發酵產酶效果的影響,經發酵液測得FPA酶活。由圖1可見,jx25與tg31最適發酵溫度均為28 ℃,lt01最適溫度為30 ℃。其中tg31菌株酶活最高為5.89 IU/mL,其次jx 25酶活為4.72 IU/mL,lt 01酶活僅為4.42 IU/mL。
2.2.2 最適初始pH 由圖2可見,隨著初始pH的增加jx25、lt01和tg31產酶能力逐漸提高,在pH 5.0時均達到最高,分別為6.234、6.824與7.350 IU/mL,而后酶活隨pH增加逐漸降低,當pH 為8.0時酶活最低。由此可見,選用初始pH 5.0作為3株菌株搖瓶發酵pH最為適宜。
2.2.3 最適接種量 由圖3可見,接種量為6%時,3株菌株的FPA酶活均達到最高,其中tg31酶活最高,達到9.56 IU/mL,是jx25酶活(7.92 IU/mL)的1.2倍。故菌株最適接種量為6%。
2.2.4 最佳搖瓶轉速 由圖4可見,隨著轉速的提高,初始階段酶活也隨之提高,當轉速為180 r/min時,3株菌株酶活均達到最高,jx25、lt01、tg31分別為9.83、10.49、13.68 IU/mL,而后隨著轉速增加酶活降低。可見,最佳搖瓶轉速為180 r/min。
2.3 纖維素酶對不同底物的水解
3株菌株發酵獲得的發酵液對不同底物的水解效率如圖5所示。由圖5可見,jx25對甘蔗渣和木屑的水解效率最高,分別達到18.23%和27.46%;水解底物為棉子殼、玉米秸稈、玉米芯時,tg31水解效率最好,分別為27.38%、37.62%、27.86%。由此可知tg31是能產生針對玉米類秸稈纖維素高效高產降解酶的菌株,鑒于中國廢棄玉米秸稈量巨大的現狀,tg31具有廣闊的應用前景。
2.4 5 L發酵罐放大
綜合搖瓶發酵結果,tg31菌株FPA酶活最高,水解試驗得知其對玉米秸稈的水解效果最好,是一株能產生針對玉米類秸稈纖維素高效高產降解酶的菌株,故選擇tg 31進行5 L發酵罐放大。5 L發酵罐不同時間酶活曲線如圖6所示。由圖6可見,5 L發酵罐中,接種后酶活迅速提高,發酵前96 h提升速率較快,96~120 h時酶活提升速率減緩,120 h時酶活最高,達到14.2 IU/mL。
3 小結和討論
運用透明圈法和搖瓶液體培養法,對從富含腐爛玉米秸稈的土壤樣品中得到的纖維素酶高產菌進行初篩和復篩,獲得一株高酶活、高產纖維素酶的菌株tg31,將其作為液體發酵條件研究的供試菌種。對該菌的產酶條件(包括最適溫度、最適pH、最適接種量和最佳轉速)進行研究得出搖瓶發酵產酶最優工藝條件為發酵溫度30 ℃,發酵初始pH 5.0,最適接種量6%,最佳轉速180 r/min,此時酶活達到13.68 IU/mL,對玉米秸稈水解率達到37.62%,并可將此工藝成功放大應用于5 L發酵罐中。
纖維素作為世界上最豐富的可再生資源,其生物利用潛力備受人們的關注。據研究得出,酶學降解產生單糖或蛋白質等產品是纖維素生物利用的最佳途徑,其有關研究已成為生物科學的熱點領域。目前,隨著科學研究的不斷深入,纖維素酶的應用技術逐漸成熟。玉米秸稈作為豐富的可再生資源,含有大量纖維素和半纖維素成分,難以被生物有效降解。經過纖維素酶等酶系的有效降解,能夠產生更高的經濟價值。為此,利用纖維素酶降解玉米秸稈的研究具有重要的科學意義。
目前,有關纖維素酶及其產酶菌的研究已有大量報道,并取得了一定的進展,主要集中在以下幾個方面:一是產纖維素酶微生物的篩選。已知自然界中能分解纖維素的微生物主要為真菌及部分細菌,其中以木霉、青霉及曲霉的降解能力最為突出[12,13];二是影響纖維素酶菌株在發酵罐中放大培養的因素,如溶氧[14]、傳質[15]及起泡沫[16]等;三是產纖維素酶菌株的發酵方式,如補料及分批發酵[17]等。
本研究從富含腐爛玉米秸稈的土樣中獲得高產纖維素酶菌株tg31,依據發酵條件優化的初步結果發現,tg31具有良好的產纖維素酶特性,具有廣闊的應用前景。結合國內外研究進展,有關tg31的后續研究,應著重考慮結合流體力學及數學模型進行有效的發酵工藝優化。
參考文獻:
[1] 韓魯佳,閆巧娟,劉向陽,等.中國農作物秸稈資源及其利用現狀[J].農業工程學報,2003,19(3):87-91.
[2] 陳小華,朱洪光.農作物秸稈產沼氣研究進展與展望[J].農業工程學報,2007,23(3):279-283.
[3] 張源泉,孫風英,關鳳梅,等.玉米秸稈稀硫酸預處理條件的初步研究[J].纖維素科學與技術,2002,10(2):32-36.
[4] 王 雙,許 潔,李浠源,等.秸稈纖維素降解細菌的篩選及產酶條件優化[J].湖北農業科學,2013,52(5):1121-1124.
[5] BHAT M K,BHAT S. Cellulase degrading enzymes and their potential industrial applications[J]. Biotechnology Advances,1997, 15(3-4):583-620.
[6] 史 央,蔣 愛,戴傳超,等.秸稈降解的微生物學機理研究及應用進展[J].微生物學雜志,2002,22(1):47-51.
[7] 邱雁臨,孫憲迅,蔡 俊,等.纖維素酶耐高溫高產菌株的選育[J].中國釀造,2004(2):15-19.
[8] 肖 舸,雷 芳,喻 東,等.一株產纖維素酶綠色木霉的篩選及發酵條件優化[J].四川大學學報(自然科學版),2004,41(2):422-425.
[9] 李一婧,馬偉超,王 媛.纖維素酶高產菌的分離純化與產酶工藝優化[J].湖北農業科學,2012,51(8):1660-1662.
[10] 劉德海,楊玉華,安明理,等.纖維素酶酶活的測定方法[J].中國飼料,2002(17):27-28.
[11] 李夢雪,張志軍,孫子文,等.紫蘇秸稈纖維素酶水解工藝優化研究[J].食品工業科技,2013,34(15):193-195.
[12] VALLANDER L,ERIKSSON K E.Enzymic saccharification of pretreated wheat straw[J]. Biotechnology and Bioengineering, 1985,27(5):650-659.
[13] 閻伯旭,高培基.纖維素酶的底物專一性[J].生命科學,2000, 12(2):86-88.
[14] JOAO PAULO A,SOLANGE I,MUSSATTO,et al.Fermentation medium and oxygen transfer conditions that maximize the xylose conversion to ethanol by Pichia stipites[J]. Renewable Energy, 2012(37):259-265.
[15] LIANG Y, CHAO Y P, CHEN S L, et al. Hydroynamic and kinetic study of cellulase production by trichoderma reesei with pellet morphology[J]. Biotechnology and Bioengineering, 2012(109):1755-1768.
[16] QIN Z, CHI M L, LU K J. Factors affecting foaming behavior in cellulase fermentation by Trichoderma reesei Rut C-30[J]. Bioresource Technology, 2007(98):753-760.
[17] VELKOVSKA S, MARTEN R,F OLLOS F. Kinetic model for batch cellulase production by Trichoderma reesei RUT C30[J]. Journal of Biotechnology,1997(54):83-94.
本研究從富含腐爛玉米秸稈的土樣中獲得高產纖維素酶菌株tg31,依據發酵條件優化的初步結果發現,tg31具有良好的產纖維素酶特性,具有廣闊的應用前景。結合國內外研究進展,有關tg31的后續研究,應著重考慮結合流體力學及數學模型進行有效的發酵工藝優化。
參考文獻:
[1] 韓魯佳,閆巧娟,劉向陽,等.中國農作物秸稈資源及其利用現狀[J].農業工程學報,2003,19(3):87-91.
[2] 陳小華,朱洪光.農作物秸稈產沼氣研究進展與展望[J].農業工程學報,2007,23(3):279-283.
[3] 張源泉,孫風英,關鳳梅,等.玉米秸稈稀硫酸預處理條件的初步研究[J].纖維素科學與技術,2002,10(2):32-36.
[4] 王 雙,許 潔,李浠源,等.秸稈纖維素降解細菌的篩選及產酶條件優化[J].湖北農業科學,2013,52(5):1121-1124.
[5] BHAT M K,BHAT S. Cellulase degrading enzymes and their potential industrial applications[J]. Biotechnology Advances,1997, 15(3-4):583-620.
[6] 史 央,蔣 愛,戴傳超,等.秸稈降解的微生物學機理研究及應用進展[J].微生物學雜志,2002,22(1):47-51.
[7] 邱雁臨,孫憲迅,蔡 俊,等.纖維素酶耐高溫高產菌株的選育[J].中國釀造,2004(2):15-19.
[8] 肖 舸,雷 芳,喻 東,等.一株產纖維素酶綠色木霉的篩選及發酵條件優化[J].四川大學學報(自然科學版),2004,41(2):422-425.
[9] 李一婧,馬偉超,王 媛.纖維素酶高產菌的分離純化與產酶工藝優化[J].湖北農業科學,2012,51(8):1660-1662.
[10] 劉德海,楊玉華,安明理,等.纖維素酶酶活的測定方法[J].中國飼料,2002(17):27-28.
[11] 李夢雪,張志軍,孫子文,等.紫蘇秸稈纖維素酶水解工藝優化研究[J].食品工業科技,2013,34(15):193-195.
[12] VALLANDER L,ERIKSSON K E.Enzymic saccharification of pretreated wheat straw[J]. Biotechnology and Bioengineering, 1985,27(5):650-659.
[13] 閻伯旭,高培基.纖維素酶的底物專一性[J].生命科學,2000, 12(2):86-88.
[14] JOAO PAULO A,SOLANGE I,MUSSATTO,et al.Fermentation medium and oxygen transfer conditions that maximize the xylose conversion to ethanol by Pichia stipites[J]. Renewable Energy, 2012(37):259-265.
[15] LIANG Y, CHAO Y P, CHEN S L, et al. Hydroynamic and kinetic study of cellulase production by trichoderma reesei with pellet morphology[J]. Biotechnology and Bioengineering, 2012(109):1755-1768.
[16] QIN Z, CHI M L, LU K J. Factors affecting foaming behavior in cellulase fermentation by Trichoderma reesei Rut C-30[J]. Bioresource Technology, 2007(98):753-760.
[17] VELKOVSKA S, MARTEN R,F OLLOS F. Kinetic model for batch cellulase production by Trichoderma reesei RUT C30[J]. Journal of Biotechnology,1997(54):83-94.
本研究從富含腐爛玉米秸稈的土樣中獲得高產纖維素酶菌株tg31,依據發酵條件優化的初步結果發現,tg31具有良好的產纖維素酶特性,具有廣闊的應用前景。結合國內外研究進展,有關tg31的后續研究,應著重考慮結合流體力學及數學模型進行有效的發酵工藝優化。
參考文獻:
[1] 韓魯佳,閆巧娟,劉向陽,等.中國農作物秸稈資源及其利用現狀[J].農業工程學報,2003,19(3):87-91.
[2] 陳小華,朱洪光.農作物秸稈產沼氣研究進展與展望[J].農業工程學報,2007,23(3):279-283.
[3] 張源泉,孫風英,關鳳梅,等.玉米秸稈稀硫酸預處理條件的初步研究[J].纖維素科學與技術,2002,10(2):32-36.
[4] 王 雙,許 潔,李浠源,等.秸稈纖維素降解細菌的篩選及產酶條件優化[J].湖北農業科學,2013,52(5):1121-1124.
[5] BHAT M K,BHAT S. Cellulase degrading enzymes and their potential industrial applications[J]. Biotechnology Advances,1997, 15(3-4):583-620.
[6] 史 央,蔣 愛,戴傳超,等.秸稈降解的微生物學機理研究及應用進展[J].微生物學雜志,2002,22(1):47-51.
[7] 邱雁臨,孫憲迅,蔡 俊,等.纖維素酶耐高溫高產菌株的選育[J].中國釀造,2004(2):15-19.
[8] 肖 舸,雷 芳,喻 東,等.一株產纖維素酶綠色木霉的篩選及發酵條件優化[J].四川大學學報(自然科學版),2004,41(2):422-425.
[9] 李一婧,馬偉超,王 媛.纖維素酶高產菌的分離純化與產酶工藝優化[J].湖北農業科學,2012,51(8):1660-1662.
[10] 劉德海,楊玉華,安明理,等.纖維素酶酶活的測定方法[J].中國飼料,2002(17):27-28.
[11] 李夢雪,張志軍,孫子文,等.紫蘇秸稈纖維素酶水解工藝優化研究[J].食品工業科技,2013,34(15):193-195.
[12] VALLANDER L,ERIKSSON K E.Enzymic saccharification of pretreated wheat straw[J]. Biotechnology and Bioengineering, 1985,27(5):650-659.
[13] 閻伯旭,高培基.纖維素酶的底物專一性[J].生命科學,2000, 12(2):86-88.
[14] JOAO PAULO A,SOLANGE I,MUSSATTO,et al.Fermentation medium and oxygen transfer conditions that maximize the xylose conversion to ethanol by Pichia stipites[J]. Renewable Energy, 2012(37):259-265.
[15] LIANG Y, CHAO Y P, CHEN S L, et al. Hydroynamic and kinetic study of cellulase production by trichoderma reesei with pellet morphology[J]. Biotechnology and Bioengineering, 2012(109):1755-1768.
[16] QIN Z, CHI M L, LU K J. Factors affecting foaming behavior in cellulase fermentation by Trichoderma reesei Rut C-30[J]. Bioresource Technology, 2007(98):753-760.
[17] VELKOVSKA S, MARTEN R,F OLLOS F. Kinetic model for batch cellulase production by Trichoderma reesei RUT C30[J]. Journal of Biotechnology,1997(54):83-94.