其曼古麗·吐爾洪,布威海麗且木·阿巴拜科日,祖麗比亞·司馬義,買熱艷木·艾爾肯,阿達萊提·麥麥提,依米提·熱合曼
(新疆大學生命科學與技術學院,烏魯木齊830046)
近年研究發現,蜂膠中含有多種對腫瘤細胞具有抑制作用的活性成分,如黃酮類及黃酮醇類,可阻滯細胞周期和誘導腫瘤細胞凋亡;蜂膠黃酮(PB3A)具有一定的抗氧化活性[1]。磷酸二酯酶 4D(PDE4D)、DNA損傷誘導基因G(Gadd45G)分別是腫瘤生長的下調基因和上調基因,兩者在前期研究基因芯片分析中的差異表達倍數為10倍以上。PDE4D基因是環磷酸腺苷(cAMP)特異性PDE,具有促進腫瘤細胞增殖作用[2~4];Gadd45G 具有抑制腫瘤細胞增殖和促進其凋亡的作用[5],其表達缺失可致細胞的無限增殖,從而引起腫瘤發生[6]。2008年1月以來,我們觀察了PB3A對結腸癌SW480細胞生長的抑制作用及PDE4D、Gadd45G表達的影響,現分析結果,探討其作用機制。
1.1 材料 結腸癌SW480細胞購自上海細胞生物學研究所細胞庫。RIPA-1640培養基購自Hyclone;胎牛血清購自Gibco;Trizol Reagent購自Invitrogen;cDNA反轉錄試劑盒購自 Fermentas;PDE4D、Gadd45G及 β-actin引物、SYBR?Premix Ex TaqTMPerfect Real Time和 DEPC購自 TaKaRa公司(大連);辣根酶標記兔抗山羊IgG、PDE4D、Gadd45G、βactin等抗體購自博奧森生物有限公司;protein ladder、BCA蛋白定量試劑盒購自 thermo;蜂膠黃酮PB3A(質量分數≥99%)由依米提·熱合曼博士提供。
1.2 細胞培養及分組 結腸癌SW480細胞常規培養與含10%胎牛血清的RPMI 1640培養液中(青霉素100 U/mL,鏈霉素100 U/mL),置于37℃、5%CO2培養箱中培養,隔日傳代,取處于對數生長期細胞分為PB3A組和對照組。
1.3 細胞干預及細胞形態學觀察 PB3A組予100 μg/mL PB3A干預24 h,對照組不干預;干預24 h倒置顯微鏡下觀察兩組細胞形態變化。
1.4 細胞干預及 PDE4D、Gadd45G mRNA表達測定 取兩組對數生長期SW480細胞,經2.5 g/L胰蛋白酶消化后,以每孔3×106個細胞接種于6孔培養板培養,20 h后吸除原培養液,PB3A組加入含100 μg/mLPB3A 的RPMI-1640培養液每孔2 mL,對照組加入相同濃度的DMSO。繼續培養24 h后收集兩組細胞,采用Trizol試劑提取總RNA,1%瓊脂糖凝膠電泳檢測完整性,核酸蛋白快速檢測儀上檢測260、280及230 nm處吸光度,經濃度純度測定,RNA 純度 A260/280值均為2.0~1.80,說明純度好;經1.5%瓊脂糖凝膠電泳后,比較28 S和18 S兩條核糖體RNA(rRNA)帶,顯色強度約為2∶1。
1.5 細胞PDE4D及Gadd45GcDNA檢測 采用實時熒光定量PCR法。取兩組細胞總RNA 0.5 μg,按SYBR Green Real-time PCR試劑盒說明,采用實時熒光定量PCR法合成PDE4D及Gadd45G cDNA。引物序列:β-actin:F:5'-CATCCGTAAAGACCTC TATGCCAAC-3';R:5'-ATGGAGCCACCGATCCACA-3';PDE4D:F:5'-TCAGAGTG GTAAATTGTG TGTGAGA-3';R:5'-GGCAGAATCAACCCATGCTT-3';Gadd45G:F:5'-CGAGTCGGCCAA GTTGATGA-3';R:5'-ACCCGCACGATGTTGATGTC-3'。25 μL 反 應 體系中含 cDNA模板1 μL,SYBR?Premix Ex TaqTM12.5 μL,上游引物 0.6 μL,下游引物 0.6 μL,ddH2O 10.3 μL。PCR 擴增程序:95 ℃ 預變性 3 min;95℃變性10 s,65℃退火30 s,40個循環;72℃延伸45 s,共61個循環,末次延伸72℃、5 min。每次擴增均設標準品組和目的基因組以及2管空白對照組(以ddH2O代替模板)。以β-actin 134 bp作為陽性內參對照,對cDNA模板的細胞拷貝數進行校正。擴增效率為90%~115%。△循環閾值(Ct)=樣品 Ct均值 -內參照 Ct均值,ΔΔCT=(CT靶基因-CT內參)PB3A 組 -(CT靶基因-CT內參)對照組;2-ΔΔCT為目的基因的相對總量;2-ΔΔCT>1表示目的基因表達上調,2-ΔΔCT<1 表示基因表達下調。
1.6 細胞干預及PDE4D、Gadd45G蛋白檢測 采用蛋白免疫印跡法。待培養的細胞以80%匯合狀態時,PB3A組用100 μg/mL的 PB3A干預24 h,對照組不干預。將0.25%胰蛋白酶消化的3×106個細胞用冰冷的PBS沖洗2次,加入RIPA細胞裂解液300 μL,孵育 30 min,12 000 r/min 4 ℃ 離心 15 min,取上清,用BCA法定量總蛋白,每孔上樣總蛋白量為50 μg。經12%SDS-PAGE分離Gadd45G蛋白,8%SDS-PAGE分離PDE4D蛋白,4℃時將蛋白質分別于90 V、100 V下轉到PVDF膜60 min,用含5% 牛血清蛋白封閉液封閉處理60 min,分別加入一抗(1∶2 000稀釋的兔抗人Rb單克隆抗體)4℃過夜;用TBST緩沖液充分漂洗后,加入二抗(1∶3 000稀釋)室溫反應2 h,辣根酶標記兔抗山羊IgG顯色,用Image lab(4.0)軟件檢測兩組Gadd45G和PDE4D與內參β-actin蛋白條帶的體積。
1.7 統計學方法 應用SPSS16.0軟件行統計學處理。組間比較采用t檢驗。P<0.01為差異有統計學意義。
2.1 細胞形態變化 PB3A干預后24 h,倒置顯微鏡下見PB3A組細胞培養液混濁,細胞體縮小、變圓、皺縮,并出現折光性減弱的細胞,細胞內出現顆粒狀物質;見圖1。對照組無明顯變化。
2.2 PDE4D及 Gadd45G mRNA表達 PB3A組PDE4D mRNA表達低于對照組(P<0.01),兩者差異倍數為0.071;而Gadd45G mRNA表達高于對照組(P <0.01),兩者差異倍數為8.11,見圖 2。
2.3 PDE4D及 Gadd45G蛋白表達 PB3A組PDE4D蛋白表達低于對照組,Gadd45G蛋白高于對照組(P <0.01),見圖3。

圖1 PB3A干預24 h后SW480細胞形態學變化(200×)

圖2 兩組PDE4D及Gadd45GmRNA表達

圖3 兩組PDE4D及Gadd45G蛋白表達
PB3A類具有抗腫瘤、降血脂和機體免疫調節功能等作用,對人體正常細胞和組織幾乎沒有毒副作用[7],對結腸癌細胞具有抑制增殖及誘導凋亡的作用。PDE4D在人前列腺癌組織和細胞中PDE4D呈過度表達,用短發夾RNA(shRNA)敲除PDE4D后在體外和體內可減少前列腺癌細胞的擴散[3];PDE4D過度表達可促進人肺癌細胞增殖,而PDE4D抑制劑可抑制或沉默PDE4D表達,減少人肺腫瘤細胞的增殖和集落形成[8,9],表明 PDE4D 是一種腫瘤細胞增殖的促進因子。近期研究表明,用shRNA耗盡內源性PDE4D基因可引起乳腺癌、肺癌、卵巢癌、子宮內膜癌、胃癌、黑色素瘤細胞增值抑制和凋亡,但是PDE4D的缺失對相鄰正常組織和良性腫瘤幾乎沒有影響[10];可見PDE4D基因可能是惡性腫瘤的指標基因之一。PB3A可能通過誘導腫瘤細胞增殖的促進因子PDE4D的下調表達而發揮其抗癌活性。
研究發現,Gadd45G基因表達缺失可導致細胞的無限增殖,從而引起腫瘤的形成;相反其過度表達可使減慢體內細胞堿基的攝取速度,抑制細胞形成克隆的能力,從而影響 DNA 的修復[11,12];腦垂體腺瘤[13]、霍奇金淋巴瘤、非霍奇金淋巴瘤、宮頸癌、肺癌和鼻咽癌[14]、胃癌、胰腺癌和結腸癌組織中Gadd45G表達降低,其機制涉及啟動子甲基化或轉錄后修飾的改變[15,16];Gadd45G 可通過激活 c-Jun氮末端激酶途徑而誘導細胞發生凋亡[17]。研究發現,人肝癌細胞株HepG2及結腸癌細胞株SW480中Gadd45G mRNA表達增高。提示PB3A可能通過誘導Gadd45G基因的上調表達而抑制結腸癌細胞增殖并促進凋亡。
本研究發現,PB3A組PDE4D mRNA及蛋白表達水平均低于對照組,Gadd45G mRNA及蛋白表達水平均高于對照組。提示兩條基因差異表達可能在結腸癌的發生和發展中起重要作用;PB3A可通過誘導PDE4D和Gadd45G基因表達而抑制SW480細胞生長,誘導其凋亡;但其確切的作用機制尚待進一步研究。
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