澄黃濱珊瑚、大管孔珊瑚和叢生盔形珊瑚排卵前后小穗生長特征

申玉春,楊小東,劉 麗,金 磊

廣東海洋大學水產學院，南海水產經濟動物增養殖廣東普通高校重點實驗室，湛江 524025

澄黃濱珊瑚、大管孔珊瑚和叢生盔形珊瑚排卵前后小穗生長特征

申玉春*,楊小東,劉 麗,金 磊

廣東海洋大學水產學院，南海水產經濟動物增養殖廣東普通高校重點實驗室，湛江 524025

澄黃濱珊瑚、大管孔珊瑚和叢生盔形珊瑚排卵前后分別采集珊瑚小穗，在實驗室條件下進行為期60 d的養殖，觀察其生長特性，結果表明：3種珊瑚排卵前后骨骼密度變化在1.541—2.137 g/cm3之間，差異不顯著。3種珊瑚小穗的生長率表現出相對一致的變化趨勢，同一規格珊瑚小穗排卵前期生長率明顯高于排卵后期；同一時期大規格珊瑚小穗生長率明顯高于小規格珊瑚小穗，而且養殖中后期生長較快，養殖前期生長較慢，差異顯著(P<0.05)。澄黃濱珊瑚小穗邊緣組織延伸度排卵后期大于排卵前期，大管孔珊瑚小穗邊緣組織延伸度排卵前期大于排卵后期，以上兩種珊瑚的小規格珊瑚小穗與大規格珊瑚小穗組織延伸度相當。隨著養殖時間的持續，叢生盔形珊瑚小穗螅體增殖速率加快，各養殖階段螅體數差異顯著(P<0.05)，珊瑚小穗規格和養殖季節對其小穗螅體增殖數量沒有顯著影響。3種珊瑚小穗生長指標間多呈顯著正相關，僅大管孔珊瑚小穗初始直徑、初始重量與組織延伸度間，以及叢生盔形珊瑚小穗初始重量與初始螅體數量、生長率間相關性不明顯。

生長率；組織延伸度；排卵期；珊瑚小穗

珊瑚礁是海洋生態系統的重要組成部分，在海洋生物資源增殖、海洋環境保護、海洋減災和降低大氣溫室效應等方面，均發揮著重要的作用。然而，長期以來由于人們對珊瑚的生物特性和生態價值認識不足，公眾的保護意識淡薄，珊瑚礁面臨著嚴重的生態危機。因此，研究珊瑚的生物學特性、闡明其在海洋生態系統中的作用，對海洋生態系統的保護，以及退化珊瑚礁的修復和重建有重要的指導意義。珊瑚小穗(nubbins)是來源于單個珊瑚螅體且遺傳結構上相同的同株系珊瑚片段。珊瑚小穗可以從珊瑚礁上鑿取分離，作為珊瑚生物學研究和珊瑚移植的材料。早期研究者鑿取的珊瑚小穗直徑較大，超過10 cm[1- 2]，對供體珊瑚礁造成較大的生態壓力[3- 4]。關于珊瑚生物學的研究，主要集中在珊瑚礁生態毒理學分析[5]，溫度與珊瑚光合作用和呼吸作用的關系[6]，飼料和光照對造礁石珊瑚氨吸收的影響[2]，珊瑚鈣化對海水酸化的響應生理機制[7]，甾體類雌激素對珊瑚生長和繁殖的影響[8]等方面。本文以廣東徐聞海域濱珊瑚科(Poritidae)的澄黃濱珊瑚(Poriteslutea)、大管孔珊瑚(Gonioporadjiboutiensis)和枇杷珊瑚科(Oculinidae)的叢生盔形珊瑚(Galaxeafascicularis)為研究對象，研究其繁殖期前后的生長特性，為確定珊瑚小穗材料的合理采樣規格和移植培育期提供理論依據。

1 材料與方法

1.1 材料

2012年3月份和7月份分別在徐聞珊瑚礁國家級自然保護區采集澄黃濱珊瑚、大管孔珊瑚和叢生盔形珊瑚活體樣本，運回實驗室，暫養在規格為(180 cm×45 cm×60 cm)的玻璃水簇箱中，暫養水溫27.5 ℃，鹽度32，水族用300 W熒光燈提供光源，每天6:00—18:00給予12 h光照，循環水流速度2000 L/h，每2 d換水1次，換水量50%，投喂豐年蝦幼體1次/d，每周添加濃度為200 mg/L氯化鈣4 mL。根據對徐聞珊瑚礁保護區海域珊瑚性腺發育與繁殖周期的觀察，3月份珊瑚生殖腺發育至中后期，排卵期集中在5—6月份，7月份已經排卵完畢[9]。因此3月份樣品為排卵前期，7月份樣品為排卵后期。

1.2 方法

1.2.1 珊瑚小穗的分解與養殖

珊瑚暫養1周后，用鐵鉗子將珊瑚分解為厚度0.8—1.2 cm的珊瑚小穗，確保每個小穗形狀規則，底部平整，含有一定數量的完整螅體。珊瑚小穗按直徑大小或螅體數量不同劃分為兩種規格，澄黃濱珊瑚小穗直徑為A小于2 cm和B大于等于2 cm;大管孔珊瑚小穗直徑為C小于3 cm和D大于等于3 cm;叢生盔形珊瑚小穗螅體數為E小于等于4個和F：大于4個。分解獲得每種規格珊瑚小穗各24塊。用新鮮海水輕微淋洗珊瑚小穗邊緣分散的組織，用防水膠帶紙將其附著于白瓷板上，置于規格為50cm×40cm×50cm的玻璃水簇缸馴養。整個操作過程保持珊瑚浸沒于海水中或短時間暴露于空氣中，盡可能減少操作對珊瑚的傷害。

馴養1周后開始正式養殖實驗，馴養、養殖實驗條件與暫養一致，養殖時間為60 d。養殖實驗第12天隨機抽取每種規格珊瑚小穗8個，用洗牙器沖洗去除軟體組織，測定珊瑚小穗骨骼密度。同時測定剩余16個珊瑚小穗浮重和邊緣組織延伸度，以后分別在實驗第24、36、48和60天測定珊瑚小穗浮重和邊緣組織延伸度。用520M-01A-便攜式多參數水質分析儀監測水體溫度、溶氧、pH、鹽度變化。

1.2.2 珊瑚小穗生長指標測定

(1) 骨骼密度

根據公式[10]計算珊瑚骨骼密度：

Dcoral=Dwater/〔1-(Wtin water/Wtin air)〕

式中，Dcoral為珊瑚骨骼密度(g/cm3)；Dwater為養殖海水密度(g/cm3)；Wtin water為珊瑚骨骼在海水中重量(g)；Wtin air為珊瑚骨骼在空氣中重量(g)。

(2) 組織延伸度

澄黃濱珊瑚和大管孔珊瑚因珊瑚杯相對較小、螅體密度較大，組織延伸度以邊緣組織延伸的長度衡量(分解后的珊瑚小穗骨骼壁上沒有組織覆蓋，組織延伸度的衡量以小穗組織未覆蓋的骨骼邊緣作為起點進行測量)。叢生盔形珊瑚珊瑚杯相對較大、螅體密度較小，組織延伸度以螅體增殖數衡量。

(3) 珊瑚生長率

用經改造AL204型半微量電子天平[11]測定珊瑚小塊浮重，根據公式[10]換算成空氣中的實際重量：

Wtin air=Wtin water/〔1-(Dwater/Dcoral)〕

式中，Wtin air為珊瑚小穗在空氣中重量(mg)；Wtin water為珊瑚小穗在海水中重量(mg)；Dwater為養殖海水密度(g/cm3)；Dcoral為珊瑚骨骼密度(g/cm3)(珊瑚組織生長對骨骼密度的影響忽略不計[6])。

用公式[7]計算珊瑚生長率：

V=(W2-W1)/T

式中，V為珊瑚生長率(mg /d)；W2和W1為分別為珊瑚小穗培養給定時間段前后的重量(mg)；T為珊瑚小穗的培養時間段為12 d。

1.2.3 數據分析

采用SPSS 13.0 for Windows統計軟件進行單因素方差分析、相關性分析和Duncan多重比較，以α=0.05和α=0.01作為差異顯著水平，描述性統計值采用平均值±標準誤(Mean±S.D)表示。

2 結果與分析

2.1 珊瑚骨骼密度

澄黃濱珊瑚、大管孔珊瑚和叢生盔形珊瑚排卵前后骨骼密度變化在1.541—2.137 g/cm3之間(表1)，統計分析同種珊瑚排卵前后骨骼密度差異不顯著。澄黃濱珊瑚排卵前后骨骼密度分別為1.541 g/cm3和1.563 g/cm3；大管孔珊瑚分別為2.105g/cm3和2.088 g/cm3，叢生盔形珊瑚分別為2.117g/cm3和2.137 g/cm3。

表1 3種珊瑚排卵前后骨骼密度的變化(g/cm3)Table 1 The skeleton density of three pre-spawn and post-spawn coral species nubbins

同一列數值標有不同字母表示達到顯著差異(P< 0.05)

2.2 珊瑚小穗生長率

澄黃濱珊瑚、大管孔珊瑚和叢生盔形珊瑚小穗的生長率表現出相對一致的變化趨勢(表2)，同一規格珊瑚小穗排卵前期生長率明顯高于排卵后期，同一時期大規格珊瑚小穗生長率明顯高于小規格珊瑚小穗，而且養殖中期后期生長較快，養殖前期生長較慢，統計分析差異顯著(P<0.05)。

澄黃濱珊瑚直徑小于2 cm和大于等于2 cm兩種規格珊瑚小穗生長率，排卵前生長率最大值出現在37—48 d，分別達到(7.85±1.95)和(15.18±2.07) mg/d，排卵后最大值出現在25—36 d，分別為(6.76±1.03)和(9.45±4.46) mg/d。

大管孔珊瑚直徑小于3 cm和大于等于3 cm兩種規格珊瑚小穗生長率，排卵前生長率最大值出現在25—36 d和13—24 d，分別為(6.87±0.33)和(7.16±2.90) mg/d，排卵后最大值出現在49—60 d和37—48 d，分別為(1.887±0.65)和(2.639±0.36) mg/d。

叢生盔形珊瑚螅體數為小于等于4個和大于4個兩種規格珊瑚小穗生長率，排卵前生長率最大值出現在49—60 d和13—24 d，分別為(0.92±0.48)和(1.32±1.04) mg/d，排卵后最大值出現在49—60 d和37—48 d，分別為(0.73±0.33)和(1.94±1.07) mg/d。

2.3 珊瑚小穗組織延伸度

澄黃濱珊瑚和大管孔珊瑚小穗邊緣組織延伸度，隨著養殖時間的延長而加大，各養殖階段組織延伸度相差顯著(P<0.05)(表3)。澄黃濱珊瑚小穗邊緣組織延伸度排卵后期大于排卵前期，小規格珊瑚小穗與大規格珊瑚小穗組織延伸度相當。大管孔珊瑚小穗邊緣組織延伸度排卵前期大于排卵后期，小規格珊瑚小穗與大規格珊瑚小穗組織延伸度相當。

叢生盔形珊瑚小穗螅體隨著養殖時間的延長而不斷增殖，各養殖階段小穗螅體數量相差顯著(P<0.05)(表4)。排卵期和珊瑚小穗規格對叢生盔形珊瑚小穗螅體增殖數量沒有顯著影響。

表4 叢生盔形珊瑚排卵前后不同規格小穗螅體增殖數量的變化Table 4 Polyp proliferation number of Galaxea fascicularis nubbins of pre- and post-spawn

2.4 珊瑚小穗生長指標間的相關性

2.4.1 珊瑚小穗初始直徑與初始重量、生長率、組織延伸度間的相關性

澄黃濱珊瑚小穗初始直徑與初始重量、生長率之間呈極顯著正相關，相關系數分別為0.755和0.711，與組織延伸度間呈顯著正相關(0.845)；大管孔珊瑚小穗初始直徑與初始重量、生長率之間呈極顯著正相關，相關系數分別為0.885和0.944，與組織延伸度間相關性不顯著(0.354)(表5)；叢生盔形珊瑚小穗初始螅體數量與生長率、最后螅體數之間有顯著正相關，相關系數分別為0.786和0.747，與初始重量間相關性不明顯(0.138)(表6)。

表5 珊瑚小穗初始直徑、初始重量、生長率、組織延伸度間的相關系數(n=8)Table 5 Correlation coefficient of initial diameter, initial weight, growth rates and tissue extension of coral nubbins

*表示差異顯著(P<0.05)，**表示差異極顯著(P<0.01)

表6 叢生盔形珊瑚小穗初始螅體數、初始重量、生長率、最終螅體數間的相關系數(n=8)

Table 6 Correlation coefficient of initial number of polyp, initial weight, growth rates and final number of polyp ofGalaxeafascicularisnubbins

生長指標Growthindex初始重量Initialweight生長率Growthrates最終螅體數Finalnumberofpolyp初始螅體數Initialnumberofpolyp0.1380.786*0.747*初始重量Initialweight-0.1010.948**

2.4.2 珊瑚小穗初始重量與生長率、組織延伸度間的相關性

澄黃濱珊瑚小穗初始重量與生長率之間具有極顯著正相關(0.778)，與組織延伸度間呈顯著正相關(0.947)；大管孔珊瑚小穗初始重量與生長率之間具有極顯著正相關(0.885)，與組織延伸度間相關性不顯著(0.253)(表5)；叢生盔形珊瑚小穗初始重量與最終螅體數之間有極顯著正相關(0.948)，與生長率間相關性不明顯(0.101)(表6)。

3 討論

3.1 珊瑚性腺發育對生長的影響

澄黃濱珊瑚、大管孔珊瑚和叢生盔形珊瑚小穗的生長率隨養殖時間延長而加快，多在養殖中后期37—48d和49—60d時間段獲得最大的生長率，這與Tarrant 等[8]在實驗室條件下研究的Montiporacapitata珊瑚生長率從40 d開始明顯加快，第60天達到最大值研究結果相似。而且Shafir等[12]在紅海海域懸浮式撫育床養殖珊瑚小穗144—200 d，體積相比于原來增加了13—46倍，高度增加了3.5倍，306 d后，體積增加了147—163倍，高度為原來的6倍，開始養殖的5—10個月，1.67%的日生長率，也表現出這種生長規律。這主要是因為珊瑚小穗養殖初期組織、骨骼損傷嚴重，光合作用得到的能量主要用于修復自身，生長率較低。當這一修復過程完成，珊瑚小穗狀態恢復到正常狀態，光合作用得到的能量主要用于組織生長和骨骼鈣化，從而生長率加快。

生態系統中生物可獲得的物質和能量是有限的，生物必須在用于生長和繁殖間進行分配[13]。Tradeoffs等[14]提出用于當前繁殖活動能量分配高，伴隨未來生存能力和繁殖力的下降。Crisp and Patel等[15]抑制藤壺繁殖發現其比未抑制繁殖的個體生長更快，個體更大。珊瑚能量輸入主要通過蟲黃藻進行光合作用和自身觸手過濾、捕捉海水中的食物，而能量分配主要用于自身生長與繁殖[16- 17]。本研究中3種珊瑚在排卵季節前的平均生長率明顯高于排卵季節后，組織延伸度則相反，這可能是珊瑚將有限資源用于新陳代謝、配子的發育等繁殖過程是以消耗用于維持自身活動過程和自身結構的能量為代價。珊瑚體內的脂質含量占自身組織的30%—40%[18]，由蟲黃藻合成并轉移到珊瑚蟲體內[19]。這些脂質分布在珊瑚組織結構間，小部分存在于珊瑚粘液中[20]，大部分存在于繁殖細胞和卵子中，作為珊瑚體的能量儲備，有利于提高排卵后受精成功率、其后胚胎的發育及排卵后珊瑚體自身恢復正常生長狀態[21]，而珊瑚排卵過程中排出大量卵子的同時伴隨粘液的釋放。Ward等[22]指出珊瑚繁殖是一個耗能過程，珊瑚繁殖輸出量越大，珊瑚組織內儲存的脂質含量越少，生長越慢，并且發現孵卵珊瑚P.damicornis排出幼蟲前生長較排出幼蟲后快。

3.2 珊瑚小穗生長指標間的相關性分析

澄黃濱珊瑚和大管孔珊瑚小穗初始直徑大小與初始重量極顯著相關，叢生盔形珊瑚小穗初始螅體數量與初始重量不相關。這可能是澄黃濱珊瑚和大管孔珊瑚各自螅體大小差異較小，表面相對平坦，骨骼密度較為均勻，而叢生盔形珊瑚杯狀突起，螅體間大小差異較大，骨骼密度不均勻造成的。澄黃濱珊瑚重量變化與組織延伸度顯著相關，大管孔珊瑚重量變化與組織延伸度不相關，叢生盔形珊瑚重量變化與螅體增加數顯著相關。說明澄黃濱珊瑚和叢生盔形珊瑚在生長前期能量主要分配用于組織延伸或螅體增殖，生長后期能量主要分配用于骨骼鈣化，大管孔珊瑚則相反。

澄黃濱珊瑚和大管孔珊瑚小穗初始直徑、初始重量與生長率顯著或極顯著相關，叢生盔形珊瑚小穗初始螅體數量與螅體增加數量顯著相關，澄黃濱珊瑚和叢生盔形珊瑚小穗初始直徑、初始重量與組織延伸度顯著或極顯著相關。而Shafir等[23]在非原位養殖條件下，也研究發現珊瑚Stylophorapistillata片段存活率和邊緣生長率較高，3個月內螅體數增加了5—6倍，組織表面積和螅體數呈正相關關系。說明珊瑚小穗初始直徑、初始重量等對珊瑚的生長有影響。同種珊瑚小穗初始直徑、重量越大螅體數越多，這就意味著更多地螅體通過群生系統可共享能量，更有利于快速適應變化著的環境，促進珊瑚的生長。

排卵季節前后澄黃濱珊瑚、大管孔珊瑚、叢生盔形珊瑚最大生長率依次減小，表現出明顯的差異，養殖結束時澄黃濱珊瑚小穗組織延伸度相比于大管孔珊瑚較大。而3種珊瑚骨骼密度、組織厚度、螅體大小恰恰相反，依次增加，這可能是骨骼密度越小，鈣化速率越快，同時組織延伸速率越快的原因。Scoffin等[24]在普吉島11個裙礁研究也發現珊瑚平均密度和延伸率成反比，但其原因仍需進一步研究。

[1] Fox H E, Pet J S, Dahuri R, Caldwell R L. Recovery in rubble fields: long-term impacts of blast fishing. Marine Pollution Bulletin, 2003, 46(8): 1024- 1031.

[2] Grover R, Maguer J F, Reynaud-Vaganay S, Ferrier-Pages C. Uptake of ammonium by the scleractinian coralStylophorapistillata: effect of feeding, light, and ammonium concentrations. Limnology and Oceanography, 2002, 47(3): 782- 790.

[3] Rinkevich B. Conservation of coral reefs through active restoration measures: recent approaches and last decade progress. Environmental Science and Technology, 2005, 39(12): 4333- 4342.

[4] Mbijea N E J, Spanier E, Rinkevich B. Testing the first phase of the ‘gardening concept’ as an applicable tool in restoring denuded reefs in Tanzania. Ecological Engineering, 2010, 36(5): 713- 721.

[5] Shafir S, Van Rijin J, Rinkevich B. The use of coral nubbins in coral reef ecotoxicology testing. Biomolecular Engineering, 2003, 20(4/6): 401- 406.

[6] Coles S L, Jokiel P L. Effects of temperature on photosynthesis and respiration in hermatypic corals. Marine Biology, 1977, 43(3):209- 216.

[7] Marubini F, Ferrier-Pagès C, Furla P, Allemand D. Coral calcification responds to seawater acidification: a working hypothesis towards a physiological mechanism. Coral Reefs, 2008, 27(3):491- 499.

[8] Tarrant A M, Atkinson M J, Atkinson S. Effects of steroidal estrogens on coral growth and reproduction. Marine Ecology Progress Series, 2004, 269: 121- 129.

[9] Shen Y C, Yang X D, Liu L, Li Z P. Study of gonadal development and fecundity ofPoriteslutea,GonioporadjiboutiensisandGalaxeafascicularis. Oceanologia et Limnologia Sinica, 2014, 45(2): 314- 321.

[10] Jokiel R L, Maragos J E, Franzisket L. Coral growth: buoyant weight technique // Stoddart D R, Johannes R E, eds. Coral Reefs: Research Methods. Monographs on Oceanographic Methodology, 1978, 5: 529- 542.

[11] Davies P S. Short-term growth measurements of corals using an accurate buoyant weighing technique. Marine Biology, 1989, 101(3): 389- 395.

[12] Shafir S, Van Rijin J, Rinkevich B. Steps in the construction of underwater coral nursery, an essential component in reef restoration acts. Marine Biology, 2006, 149(3): 679- 687.

[13] Antonovics J. Concepts of resource allocation and partitioning in plants // Staddon J E R, ed. Limits to Action: The Allocation of Individual Behaviour. New York: Academic Press, 1980: 1- 35.

[14] Calow P. Adaptive aspects of energy allocation // Tytler P, Calow P, eds. Fish Energetics. Netherlands: Springer Netherlands, 1985: 13- 31.

[15] Crisp D J, Patel B. The interaction between breeding and growth rate in the barnacle Elminius modestus Darwin. Limnology and Oceanography, 1961, 6(2): 105- 115.

[16] Stoddart J A. Asexual production of planulae in the coralPocilloporadamicornis. Marine Biology, 1983, 76(3): 279- 284.

[17] Stoddart J A. Genetical structure within populations of the coralPocilloporadamicornis. Marine Biology, 1984, 81(1): 19- 30.

[18] Stimson J S. Location, quantity and rate of change in quantity of lipids in tissue of Hawaiian hermatypic corals. Bulletin of Marine Science, 1987, 41(3): 889- 904.

[19] Harland A D, Navarro J C, Davies P S, Fixter L M. Lipids of some Caribbean and Red Sea corals: total lipid, wax esters, triglycerides and fatty acids. Marine Biology, 1993, 117(1): 113- 117.

[20] Meikle P, Richards G N, Yellowlees D. Structural investigations on the mucus from six species of coral. Marine Biology, 1988, 99(2): 187- 193.

[21] Stimson J S. Mode and timing of reproduction in some common hermatypic corals of Hawaii and Enewetak. Marine Biology, 1978, 48(2): 173- 184.

[22] Ward S. Two patterns of energy allocation for growth, reproduction and lipid storage in the scleractinian coralPocilloporadamicornis. Coral Reefs, 1995, 14(2): 87- 90.

[23] Shafir S, Jaap V R, Rinkevich B. Nubbing of coral colonies: a novel approach for the development of inland broodstocks. Aquarium Sciences and Conservation, 2001, 3(3): 183- 190.

[24] Scoffin T P, Tudhope A W, Brown B E, Chansang H, Cheeney R F. Patterns and possible environmental controls of skeletogenesis ofPoriteslutea, South Thailand. Coral Reefs, 1992, 11(1): 1- 11.

Study of nubbins growth onPoriteslutea,GonioporadjiboutiensisandGalaxeafascicularisduring pre-spawn and post-spawn

SHEN Yuchun*, YANG Xiaodong, LIU Li, JIN Lei

KeyLaboratoryofAquacultureinSouthChinaSeaforAquaticEconomicAnimalofGuangdongHigherEducationInstitutes，GuangdongOceanUniversity,Zhanjiang524025，China

In the present study,Poriteslutea,GonioporadjiboutiensisandGalaxeafasciculariswere collected to evaulate the nubbins growth performance before and after ovulation under laboratory condition for period of 60 d. The results of present study indicated that there were no significant differences were observed among all treatments, and the skeleton density of coral nubbins ranged from 1.541 to 2.137 g/cm3during pre-spawn and post-spawn. Three kinds of coral growth rate exhibited relatively consistent trend, and the growth rate had significantly higher in corals of pre-spawn than those of post-spawn. The growth rate of large-sized coral spikelets was significantly higher than the small size of coral spikelets during the same period, especially, there were significant difference that the growth rate of the late breeding had more significantly rapid than those in the early breeding. ForPoriteslutea, the marginal tissue elongation of pre-spawn phase had greater than those of post-spawn phase, moreover, forGonioporadjiboutiensis, spikelets marginal tissue elongation greater than preovulatory late ovulation. Tissue extension of pre-spawnGonioporadjiboutiensisnubbins was higher than that of the post-spawn nubbins and that of the small nubbins was slightly higher than that of the big nubbins, but there were no significant differences. With the culture time increasing, polyp proliferation rates ofGalaxeafascicularisnubbins became faster and there were significant differences in polyp proliferation numbers of different stages (P<0.05). However, there were no significant differences between polyp size of proliferation numbe and culture season. Significant positive correlations of all growth index of nubbins among three coral species were obtained, however, there were no correlations between initial diameter and / or weight and tissue extension ofGonioporadjiboutiensisnubbins, and there were no correlation between initial weight/polyp number and growth rates ofGalaxeafascicularis.

growth rate; tissue extension; spawn period; coral nubbins

國家海洋公益性行業科研專項(201105012); 廣東省自然科學基金項目(10152408801000005,S2011010000269); 廣東省科技計劃項目(2011B031100012,2012A020602050)

2013- 04- 07;

日期:2014- 03- 25

10.5846/stxb201304070617

*通訊作者Corresponding author.E-mail: shenyuchun@163.com

申玉春,楊小東,劉麗,金磊.澄黃濱珊瑚、大管孔珊瑚和叢生盔形珊瑚排卵前后小穗生長特征.生態學報,2015,35(2):306- 312.

Shen Y C, Yang X D, Liu L, Jin L.Study of nubbins growth onPoriteslutea,GonioporadjiboutiensisandGalaxeafascicularisduring pre-spawn and post-spawn .Acta Ecologica Sinica,2015,35(2):306- 312.