劉 坤,姚 陽,商麗宏,徐 暢,薛一雪
缺血性腦血管病以其高發病率和高死亡率嚴重危害著人們的健康。迅速溶栓進行再灌注是治療的關鍵。但快速溶栓會引起腦組織繼發性損害,主要原因是血腦屏障(blood brain barrier,BBB)通透性遭到破壞[1]。利用缺血再灌注動物模型研究發現,促紅細胞生成素(erythropoietin,EPO)具有神經保護作用,可以減小腦梗死體積、降低BBB 通透性、減輕腦水腫程度[2]。目前,關于EPO 對缺血再灌注后BBB的作用機制還不清楚。緊密連接(tight junction,TJ)是維持BBB 完整性的重要結構和功能基礎[3]。claudin-5 是構成腦微血管內皮細胞TJ 的主要黏附分子,是TJ 形成的充要條件[4]。腫瘤壞死因子-α(tumor necrosis factor alpha,TNF-α)是腦缺血再灌注損傷產生過程中的主要炎性因子,對TJ 蛋白claudin-5 的表達具有調節作用。
本研究利用腦缺血再灌注大鼠模型,腹腔注射EPO 進行預處理,觀察缺血側腦組織BBB 通透性的變化,腦微血管內皮細胞TJ 狀態及TJ 蛋白claudin-5 表達和TNF-α 含量的變化等,進一步探討EPO 對腦缺血再灌注后BBB 通透性的影響和機制。
1.1 材 料
1.1.1 實驗動物與分組 健康成年SD 大鼠125 只,雌雄不限,體重250~300 g,沈陽醫學院實驗動物中心提供。根據Jiao H 等[5]研究結果,BBB通透性在腦缺血再灌注后3 h 和72 h 最高,呈雙峰變化特點,動物隨機分為假手術組、生理鹽水再灌注3 h 組、生理鹽水再灌注72 h 組、EPO 再灌注3 h組、EPO 再灌注72 h 組,每組大鼠20 只。生理鹽水再灌注組于缺血同時腹腔注射生理鹽水2 ml,EPO再灌注組于缺血同時腹腔注射重組人 EPO 5000 U/kg溶于2 ml 生理鹽水中。
1.1.2 藥品與試劑 重組人EPO(Sigma 公司),伊文思蘭(Evans blue,EB)(美國Fluka 公司),claudin-5 抗體(Sigma 公司),PV 超敏試劑盒(邁新生物技術有限公司),濃縮型二氨基聯苯胺(DAB)顯色試劑盒(邁新生物技術有限公司),TNF-α ELISA 試劑盒(Imgenex 公司)。
1.2 方 法
1.2.1 大鼠大腦中動脈閉塞(MCAO)模型制備 大鼠腹腔注射10%水合氯醛(0.3 ml/kg),麻醉后,常規消毒,取頸正中切口,暴露右側頸總動脈(CCA)、頸外動脈(ECA)、頸內動脈(ICA)。于ECA和CCA 分叉處結扎ECA,用直徑為0.26 mm 尼龍線經CCA 進入ICA 約18~20 mm,遇輕微阻力時則為阻斷MCA 入口,造成局灶性腦缺血,2 h 后拔出尼龍線進行再灌注。假手術組所用栓線插入ICA深度<10 mm。
1.2.2 激光多普勒血流儀檢測腦血流 將麻醉大鼠俯臥位固定于腦立體定位儀,正中矢狀切開頭頂皮膚,于冠狀縫后1 mm 和矢狀縫右5 mm 交點處鉆一小孔至硬腦膜,直徑約2 mm,此區域為缺血核心區域。將激光多普勒血流儀探頭置于孔內,測量大鼠大腦中動脈血流變化。記錄正常狀態下腦血流基礎值和缺血2 h 內血流變化。要求MCAO 后腦流量迅速下降到基礎值30%以下,不符合此標準動物去除,并隨機補充。
1.2.3 BBB 通透性的測定 大鼠經股靜脈2 ml/kg體重注入2%EB,2 h 后經左心室灌注生理鹽水至流出清亮液體,取腦,1 ml/100 mg 腦組織中加人甲酰胺溶液,60 ℃水浴中(避光)抽提24 h,酶標儀于620 nm 波長測光密度值,作出標準曲線,從標準曲線上算出腦組織中EB 含量(μg/g 腦重量)。
1.2.4 透射電鏡觀察TJ 麻醉大鼠4%多聚甲醛灌流固定,取缺血區腦組織額頂葉皮質1 mm3用2.5%戊二醛浸泡固定,2%四氧化鋨后固定,梯度酒精脫水,環氧樹脂618 包埋,超薄切片經醋酸鈾、枸椽酸鉛雙重染色后,在80 KV 條件下用JEM-1200EX 型透射電鏡觀察。
1.2.5 免疫組織化學法檢測TJ 蛋白claudin-5分布和表達水平變化 麻醉大鼠4%多聚甲醛灌流固定,斷頭,取額頂葉腦組織,30%蔗糖脫水,OTC包埋,冰凍切片機冠狀切片(厚10 μm)。一抗為山羊抗大鼠多克隆抗體,1∶200 稀釋,采用免疫組織化學SP 法,按試劑盒說明操作,DAB 顯色。結果用MoticImages Advanced 3.2 圖像分析系統采集照片,進行定量分析。
1.2.6 ELISA 法檢測TNF-α 含量 取0.05 g缺血腦組織、用磷酸鹽緩沖液(pH 7.4)在4 ℃條件下勻漿,再離心20 min,轉速1200 rpm,取上清液,根據試劑盒提供的步驟操作,測TNF-α 蛋白濃度。
2.1 BBB 通透性的變化 EB 滲透性實驗評估BBB 通透性改變。假手術組大鼠腦組織未見藍染,再灌注各組大鼠大腦缺血區均可見不同程度藍染。結果顯示,再灌注3 h 和72 h 時,缺血側腦組織EB 含量與假手術組相比均顯著升高(P<0.01);與再灌注同時間點生理鹽水組相比,EPO 預處理組大鼠缺血側腦組織EB 含量顯著降低(P<0.01)(見表1)。
2.2 腦微血管內皮細胞間TJ 的變化 通過透射電鏡觀察到,假手術組大鼠腦組織微血管內皮細胞間TJ 結構完整,呈現出一系列電子的致密帶,而缺血再灌注后生理鹽水組大鼠腦組織TJ 呈現出清晰的可以識別的細胞間裂隙,EPO 預處理后基本恢復了TJ結構的完整性,再次呈現TJ 致密帶,提示EPO 預處理能夠改變BBB 的TJ 開放狀態(見圖1)。
2.3 免疫組織化學法檢測claudin-5 表達的變化 claudin-5 主要表達在微血管內皮細胞。在假手術組腦組織中,claudin-5 沿腦微血管持續表達,呈連續分布狀態。與假手術組相比,再灌注3 h 和72 h各組的缺血區腦組織中claudin-5 表達顯著降低(P<0.01);EPO 預處理組大鼠缺血區腦組織中claudin-5 表達與再灌注同時間點生理鹽水組相比顯著增加(P<0.01)(見表2、圖2)。
2.4 ELISA 法檢測TNF-α 含量變化 與假手術組相比,缺血再灌注3 h、72 h,缺血區腦組織TNF-α 蛋白濃度顯著升高(P<0.01);EPO 預處理組與再灌注同時間點生理鹽水組相比,TNF-α 蛋白表達水平顯著降低(P<0.01)(見表3)。
表1 實驗各組腦組織EB 含量的比較(±s)

表1 實驗各組腦組織EB 含量的比較(±s)
與假手術組比較* P<0.01;與同時間點生理鹽水組比較#P<0.01
表2 實驗各組腦組織claudin-5 表達平均光密度比較(±s)

表2 實驗各組腦組織claudin-5 表達平均光密度比較(±s)
與假手術組比較* P<0.01;與同時間點生理鹽水組比較#P<0.01
表3 實驗各組腦組織TNF-α 濃度的比較(±s)

表3 實驗各組腦組織TNF-α 濃度的比較(±s)
與假手術組比較* P<0.01;與同時間點生理鹽水組比較#P<0.01
EPO 是一種造血細胞因子,主要用于治療多種原因所致的貧血,如腎衰、腫瘤化療等[6]。近年來研究發現,EPO 具有神經保護作用。EPO 預處理能夠減小缺血再灌注后腦梗死體積,降低BBB 通透性[2],這與我們的研究結果一致。BBB 主要由腦微血管內皮細胞以及周圍的星形膠質細胞、周細胞、基底膜等成分組成,其中相鄰內皮細胞間的TJ 是保持BBB 完整性的重要功能單位,是決定BBB 通透性的主要因素[7]。腦缺血再灌注時,TJ 完整性破壞,經細胞旁途徑轉運入腦的物質增加,造成腦損傷[8]。本研究通過透射電鏡觀察發現,腦缺血再灌注3 h和72 h 時,腦微血管內皮細胞間TJ 明顯開放,EPO預處理能誘導TJ 關閉。TJ 由一組分子蛋白元件所構成,如:claudins、occludin 等,其中claudin-5 是腦微血管內皮細胞TJ 的特異性蛋白。通過體外培養大鼠腦毛細血管內皮細胞發現,claudin-5 的外源性表達可誘導BBB 的形成[9]。claudin-5 是TJ 形成的充要條件。
本研究結果顯示,腦缺血再灌注3 h 和72 h 時,缺血腦組織中claudin-5 mRNA 和蛋白表達均顯著減少,EPO 預處理能夠顯著上調claudin-5 mRNA 和蛋白表達水平。TNF-α 是重要的炎性介質,在中樞神經系統中,主要由小膠質細胞和星形膠質細胞等分泌。腦缺血再灌注會誘導TNF-α 大量產生。研究表明,TNF-α 對TJ 蛋白claudin-5 的表達具有調節作用。Aveleira 等[10]研究發現,TNF-α 能夠降低claudin-5 的mRNA 表達水平,使視網膜內皮細胞的通透性增加。TNF-α 還能上調基質金屬蛋白酶-2和-9(matrix metalloproteinases,MMP)的表達,MMP-2 和MMP-9 具有降解claudin-5 的作用,并誘導claudin-5 從血管內皮細胞轉移到周圍的膠質細胞。因此,TNF-α 可以通過調節claudin-5 表達、降解水平及分布狀態,改變TJ 的完整性,影響BBB 的通透性。本研究結果顯示,腦缺血再灌注3 h和72 h 時,缺血腦組織中TNF-α 含量顯著增加,EPO 預處理能夠顯著降低TNF-α 含量。
綜上所述,EPO 預處理可能通過降低缺血再灌注后腦組織中TNF-α 含量,使claudin-5 的表達增加,從而恢復TJ 完整性,降低BBB 通透性。

圖1 EPO 預處理對腦微血管內皮細胞TJ 的影響

圖2 EPO 對腦缺血再灌注后claudin-5 分布和表達的影響(×400)
[1]del Zoppo GJ.Microvascular changes during cerebral ischemia and reperfusion[J].Cerebrovasc Brain Metab Rev,1994,6(1):47-96.
[2]Marti HH.Erythropoietin and the hypoxic brain[J].Exp Biol,2004,207(18):3233-3242.
[3]Liu WY,Wang ZB,Zhang LC,et al.Tight junction in blood-brain barrier:an overview of structure,regulation,and regulator substances[J].CNS Neurosci Ther,2012,18(8):609-615.
[4]Jia W,Lu R,Martin TA,et al.The role of claudin-5 in blood-brain barrier(BBB)and brain metastases(review)[J].Mol Med Rep,2014,9(3):779-785.
[5]Jiao H,Wang Z,Liu Y,et al.Specific role of tight junction proteins claudin-5,occludin,and of the blood-brain barrier in a focal cerebral ischemic insult[J].J Mol Neurosci,2011,44(2):130-139.
[6]Maqwood JS,Lebby A,Chen B,et al.Emerging drugs for treatment of anemia of chronic kidney disease[J].Expert Opin Emerq Drugs,2013,18(4):421-429.
[7]Liebner S,Czupalla CJ,Wolburg H.Current concepts of blood-brain barrier development[J].Int J Dev Biol,2011,55(4~5):467-476.
[8]Sandoval KE,Witt KA.Blood-brain barrier tight junction permeability and ischemic stroke[J].Neurobiol Dis,2008,32(2):200-219.
[9]Sumio O,Saori S,Hirofumi Y,et al.Exogenous expression of Claudin-5 induces barrier properties in cultured rat brain capillary endothelial cells[J].J Cellular Physiology,2007,210(1):81-86.
[10]Aveleira CA,Lin CM,Abcouwer SE,et al.TNF-α signals through PKCξ/NF-кB to alter the tight junction complex and increase retinal endothelial cell permeability[J].Diabetes,2010,59(11):2872-2882.