俞萬鈞,汪一萍,李紀鵬,王華英△(寧波市鄞州人民醫院呼吸與重癥醫學科,檢驗科,浙江寧波35040)
miR-134調控人肺腺癌細胞順鉑耐藥*
俞萬鈞1,汪一萍2,李紀鵬2,王華英1△
(寧波市鄞州人民醫院1呼吸與重癥醫學科,2檢驗科,浙江寧波315040)
[摘要]目的:探討微小RNA-134( miR-134)在人肺腺癌細胞順鉑耐藥中的作用及機制。方法:采用miRNA芯片篩選A549/CDDP和A549細胞差異表達miRNA,應用real-time PCR驗證miR-134的表達。將miR-134模擬物和抑制物分別轉染A549/CDDP和A549細胞,應用MTT法檢測肺癌細胞對順鉑的敏感性。Western blot技術檢測miR-134對叉頭框蛋白M1( FOXM1)和多藥耐藥相關蛋白1( MRP1)表達的影響。結果: miRNA芯片顯示,13 種miRNAs在A549/CDDP和A549細胞中呈顯著表達;其中,miR-134下調最顯著。miR-134模擬物轉染組A549/ CDDP細胞對順鉑的敏感性較陰性對照組顯著提高( P<0. 01),而miR-134抑制物轉染組A549細胞對順鉑的敏感性較陰性對照組顯著降低( P<0. 01)。FOXM1 siRNA能夠有效抑制FOXM1蛋白表達,si-FOXM1轉染組A549/CDDP細胞對順鉑的敏感性較陰性對照組顯著提高( P<0. 01)。此外,Western blot結果顯示miR-134能夠抑制MRP1蛋白表達。結論: miR-134能夠增加肺腺癌細胞對順鉑的敏感性,其機制可能與調控FOXM1和MRP1表達有關。
[關鍵詞]微小RNA-134;肺腺癌;順鉑耐藥;叉頭框蛋白M1;多藥耐藥相關蛋白1
微小RNA( microRNA,miRNA)是一類非編碼小分子RNA,普遍存在于原核和真核生物中。越來越多的研究表明miRNA與人類多種腫瘤的發生發展、侵襲轉移及化療耐藥密切相關[1-3]。miR-134基因定位于14q32,發揮抑癌基因功能,多在腫瘤中表達下調[4-6]。但是miR-134在腫瘤細胞化療耐藥中的作用及可能的調節機制尚不清楚。本研究中,我們通過miRNA芯片篩選了肺癌順鉑( cisplatin,CDDP)耐藥細胞A549/CDDP和A549親本細胞間的表達差異,并對差異表達的miR-134在肺癌順鉑耐藥中的作用及機制進行了探討,以期為臨床個體化治療肺腺癌提供有價值的化療耐藥分子標記物,并為逆轉其化療耐藥尋找新的分子治療靶點。
1細胞和主要試劑
人肺腺癌細胞系A549和順鉑耐藥細胞系A549/CDDP均為本室保存。
RPMI-1640培養基和胎牛血清為Gibco產品; Lipofectamine 2000轉染試劑和Trizol試劑為Invitrogen產品; miR-134模擬物( miR-134)及其陰性對照( negative control,NC)、miR-134抑制物( anti-miR-134)及其陰性對照( anti-NC)和叉頭框蛋白M1( forkhead box protein M1,FOXM1)干擾RNA( si-FOXM1)均為上海吉瑪公司產品;順鉑和MTT試劑為Sigma產品; FOXM1、多藥耐藥相關蛋白1 ( multidrug-associated protein 1,MRP1)和β-actin抗體為Santa Cruz產品; TaqMan miRNA分析試劑盒和實時熒光定量PCR分析儀為ABI產品。
2方法
2.1細胞培養和轉染人肺腺癌細胞系A549用含10%胎牛血清、青霉素1×105U/L、鏈霉素100 mg/L 的RPMI-1640培養液培養,A549/CDDP細胞系另加終濃度為40 μmol/L的順鉑以維持其耐藥性。2種細胞均于37℃、5% CO2條件下常規培養。在轉染前1 d,取生長狀態良好的細胞,用胰酶消化,細胞計數后,均勻鋪于細胞板。12~16 h后時進行轉染,轉染按照Lipofectamine 2000轉染試劑說明書進行。
2.2基因芯片篩選A549/CDDP和A549細胞差異表達的miRNA采用Trizol試劑提取細胞總RNA,應用分光光度計檢測RNA的純度和濃度,并用1. 5%凝膠電泳檢測RNA的完整性,確定A260/A280值在1. 8~2. 1之間并且完整性好的總RNA交由杭州聯川生物公司進行miRNA芯片分析。
2.3RNA提取和real-time PCR采用Trizol試劑提取細胞總RNA,應用TaqMan miRNA反轉錄試劑盒反轉錄合成cDNA。應用TaqMan miRNA檢測試劑盒分析miR-134的表達水平,以U6作為內參照,實驗重復3次。
2.4MTT法檢測細胞對順鉑的敏感性取對數生長期的A549細胞和A549/CDDP細胞,接種于96孔板,每孔2×103個細胞。分別轉染anti-NC、anti-miR-134、NC和miR-134,每組設置5個復孔。于轉染24 h后分別加入不同終濃度的順鉑。藥物共培養48 h后,每孔加入2 g/L的MTT 50 μL,置37℃、5% CO2溫箱中4 h,翻板棄培養液,每孔加入DMSO 150 μL,置37℃、5% CO2溫箱中30 min,酶標儀570 nm波長測各孔的吸光度( A),計算半數抑制濃度( IC50)。
2.5Western blot法檢測蛋白的表達水平收集細胞,運用總蛋白提取試劑盒提取總蛋白,經10%十二烷基硫酸鈉-聚丙烯酰胺凝膠電泳后轉膜,將膜置于含5%脫脂奶粉的TBST緩沖液中,37℃封閉2 h。分別加入FOXM1和MRP1單克隆抗體,在4℃下孵育過夜。1×TBST緩沖液洗膜,加辣根過氧化物酶標記的Ⅱ抗,置于37℃孵育2 h。1×BST緩沖液洗膜,采用化學發光法檢測目的蛋白條帶。以β-actin作為內參照。
3統計學處理
采用SPSS 13. 0統計軟件進行數據分析,數據結果以均數±標準差( mean±SD)表示,組間比較采用獨立樣本t檢驗或單因素方差分析,以P<0. 05為差異有統計學意義。
1 miRNA在A549/CDDP和A549細胞間的表達差異
利用高通量miRNA芯片技術檢測發現A549/CDDP細胞中有13條miRNAs與A549親本細胞呈顯著差異,其中7種miRNA(包括miR-134、miR-200b、miR-495、miR-379、miR-194、miR-376a和miR-127)在A549/CDDP中表達下調,6種miRNA(包括miR-125a、miR-324、miR-100、miR-99a和miR-27a)表達上調,見表1。應用realtime PCR的方法對芯片中下調最顯著的miR-134進行驗證,結果顯示miR-134在A549/CDDP細胞中下調了( 15.40±0.56)倍( P<0.01),提示miR-134可能與肺腺癌順鉑耐藥相關。

表1 在A549/CDDP和A549細胞系中差異表達的miRNATable 1.miRNAs differentially expressed in A549/CDDP and A549 cell lines ( Mean±SD.n =3)
2 miR-134的表達影響肺腺癌細胞對順鉑的敏感性
A549/CDDP細胞轉染miR-134模擬物后其對順鉑的半數抑制量較陰性對照組顯著下降( P<0. 01)。A549細胞轉染miR-134抑制物后其對順鉑的半數抑制量較陰性對照組顯著增高( P<0. 01),見圖1。

Figure 1.Effects of miR-134 on A549/CDDP and A549 cells sensitivity to cisplatin.Mean±SD.n = 3.**P<0. 01 vs NC;##P<0. 01 vs anti-NC.圖1 miR-134對A549/CDDP和A549細胞順鉑敏感性的影響
3 miR-134抑制FOXM1蛋白表達
Western blot結果顯示,FOXM1在A549/CDDP中表達顯著升高,轉染miR-134模擬物后FOXM1表達受到抑制,而在A549細胞中轉染miR-134抑制物后FOXM1蛋白的表達升高,見圖2。

Figure 2.miR-134 regulated FOXM1 protein expression.Mean±SD.n =3.**P<0. 01 vs A549;##P<0. 01 vs NC;△△P<0. 01 vs anti-NC.圖2 miR-134調控FOXM1蛋白表達
4 FOXM1基因沉默影響肺腺癌細胞對順鉑的敏感性
FOXM1 siRNA轉染A549/CDDP后FOXM1蛋白的表達顯著下調,細胞對順鉑的半數抑制量較陰性對照組顯著下降( P<0. 01),見圖3。
5 miR-134抑制MRP1的表達
Western blot結果顯示,A549/CDDP細胞轉染miR-134模擬物后MRP1蛋白的表達顯著下調,而在A549細胞中轉染miR-134抑制物后MRP1蛋白的表達升高,見圖4。

Figure 3.FOXM1 knockdown increased sensitivity of A549/ CDDP cells to cisplatin.Mean±SD.n = 3.**P<0. 01 vs NC.圖3 FOXM1基因沉默增加A549/CDDP細胞對順鉑的敏感性

Figure 4.miR-134 suppressed MRP1 protein expression.Mean ±SD.n =3.**P<0. 01 vs NC;##P<0. 01 vs anti-NC.圖4 miR-134抑制MRP1蛋白表達
miRNA主要是通過抑制靶基因的翻譯或介導靶基因mRNA的降解在轉錄后調控過程中發揮作用。隨著對miRNA分子調控網絡研究的不斷深入,miRNA在肺癌中的作用及機制已有相關文獻報道。Raponi等[7]發現miR-155的表達水平與非小細胞肺癌病人的生存期有顯著相關性,是非小細胞肺癌預后判斷的一個重要的miRNA因子。Fei等[8]報道miR-21、miR-181a和miR-16在肺癌細胞A549的增殖過程中發揮著聯合作用,利用反義核酸技術抑制3種miRNAs的表達可以通過誘導凋亡發生和細胞周期阻滯從而顯著抑制A549細胞的增殖。另外,Zhang等[9]研究發現miR-513a-3p在肺癌細胞系中過表達能增加腫瘤細胞的化療敏感性,提示miRNA是一個有前途的腫瘤治療藥物,但miRNA在肺癌化療耐藥中的作用及機制仍不完全清楚。因此,深入研究miRNA在肺癌耐藥中的分子機制,為逆轉肺癌化療耐藥尋找新的分子治療靶點顯得尤為重要。
本研究中,我們利用高通量miRNA芯片技術對A549/CDDP細胞與A549親本細胞之間miRNA差異表達譜進行了分析,發現其中有13條miRNAs呈顯著差異表達,其中miR-134在A549/CDDP中表達水平顯著下調了( 15. 40±0. 56)倍,提示miR-134可能與肺癌的化療耐藥相關。已有的研究顯示miR-134在腫瘤中多發揮抑癌基因功能,如miR-134通過靶向調控ITGB1抑制肝癌細胞轉移[5]; miR-134能夠抑制子宮內膜癌干細胞增殖和侵襲[6]。但miR-134與肺腺癌化療耐藥的關系尚不清楚。本研究中,我們將miR-134模擬物轉染A549/CDDP細胞后其對順鉑的半數抑制量顯著下降,而A549細胞轉染miR-134抑制物后其對順鉑的半數抑制量顯著升高。表明miR-134能夠增加肺腺癌細胞對順鉑的敏感性。
我們曾報道過miR-134能夠通過靶基因FOXM1抑制非小細胞肺癌上皮間質轉化[4]。FOXM1是叉頭框轉錄因子家族中的一員,FOXM1在很多的人類腫瘤中(包括人肺癌、原發性胰腺癌、乳腺癌、前列腺癌、肝癌等)表達量上調,目前已確認FOXM1參與了多種致癌信號途徑的調控[10]。為研究FOXM1在miR-134調控順鉑耐藥中的作用,我們通過Western blot技術檢測FOXM1蛋白表達,結果顯示FOXM1 在A549/CDDP細胞中表達顯著升高,miR-134能夠抑制FOXM1蛋白表達。應用干擾RNA沉默FOXM1后,A549/CDDP細胞對順鉑的敏感性增加。表明FOXM1參與了miR-134誘導的順鉑耐藥。
MRP1屬于ATP-binding cassette ( ABC)超家族跨膜轉運蛋白,已有研究顯示其在順鉑耐藥的肺腺癌細胞中過表達,是導致肺癌化療耐藥的重要機制[11-13]。因此有必要檢測MRP1是否受miR-134調控。Western blot結果顯示,miR-134能夠抑制MRP1蛋白的表達。
綜上所述,miR-134在肺腺癌順鉑耐藥細胞系中表達下調,過表達miR-134能夠提高肺腺癌細胞對順鉑的敏感性,其作用可能是通過調控FOXM1和MRP1基因表達實現。
[參考文獻]
[1]范博,張亮,馬馳,等.微小RNA與腫瘤發生的關系[J].中華腫瘤雜志,2012,34( 6) : 35-38.
[2]Li H,Yang BB.Friend or foe: the role of microRNA in chemotherapy resistance[J].Acta Pharmacol Sin,2013,34( 7) : 870-879.
[3]Shenouda SK,Alahari SK.MicroRNA function in cancer: oncogene or a tumor suppressor?[J].Cancer Metastasis Rev,2009,28( 3-4) : 369-378.
[4]Li J,Wang Y,Luo J,et al.miR-134 inhibits epithelial to mesenchymal transition by targeting FOXM1 in non-small cell lung cancer cells[J].FEBS Lett,2012,586( 20) : 3761-3765.
[5]Zha R,Guo W,Zhang Z,et al.Genome-wide screening identified that miR-134 acts as a metastasis suppressor by targeting integrin β1 in hepatocellular carcinoma[J].PLoS One,2014,9( 2) : e87665.
[6]Gao Y,Liu T,Huang Y.MicroRNA-134 suppresses endometrial cancer stem cells by targeting POGLUT1 and Notch pathway proteins[J].FEBS Lett,2015,589( 2) : 207-214.
[7]Raponi M,Dossey L,Jatkoe T,et al.MicroRNAs classifiers for predicting prognosis of squamous cell lung cancer [J].Cancer Res,2009,69( 14) : 5776-5783.
[8]Fei J,Lan F,Guo M,et al.Inhibitory effects of antimiRNA oligonucleotides ( AMOs) on A549 cell growth [J].J Drug Target,2008,16( 9) : 688-693.
[9]Zhang X,Zhu J,Xing R,et al.miR-513a-3p sensitizes human lung adenocarcinoma cells to chemotherapy by targeting GSTP1[J].Lung Cancer,2012,77( 3) : 488-494.
[10]Wang Z,Ahmad A,Li Y,et al.Forkhead box M1 transcription factor: a novel target for cancer therapy[J].Cancer Treat Rev,2010,36( 2) : 151-156.
[11]Li XQ,Li J,Shi SB,et al.Expression of MRP1,BCRP,LRP and ERCC1 as prognostic factors in non-small cell lung cancer patients receiving postoperative cisplatin-based chemotherapy[J].Int J Biol Markes,2009,24( 4) : 230-237.
[12]邵淑麗,崔婷婷,賈紅雙,等.靶向MRP1基因的shRNA穩定逆轉肺癌的多藥耐藥性[J].中國病理生理雜志,2011,27( 12) : 2265-2269.
[13]Zhou YT,Li K,Tian H.Effects of vinorelbine on cisplatin resistance reversal in human lung cancer A549/DDP cells[J].Asian Pac J Cancer Prev,2013,14( 8) : 4635-4639.
miR-134 regulates cisplatin resistance of human lung adenocarcinoma cells
YU Wan-jun1,WANG Yi-ping2,LI Ji-peng2,WANG Hua-ying1
(1Department of Respiratory and Critical Care Medicine,2Department of Laboratory Medicine,Yinzhou People’s Hospital,Ningbo 315040,China.E-mail: yingmeire@163.com)
[ABSTRACT]AIM: To investigate the roles of microRNA-134 ( miR-134) in the cisplatin resistance of lung adenocarcinoma cells.METHODS: miRNA microarray was applied to compare the miRNA expression profile between A549/ CDDP and A549 cells.Real-time PCR was used to confirm the expression of miR-134.miR-134 mimics and inhibitors were transfected into A549/CDDP and A549 cells,respectively.MTT assay was used to detect the sensitivity of lung cancer cells to cisplatin.Western blot was applied to test whether miR-134 regulated forkhead box protein M1 ( FOXM1) and multidrug-associated protein 1 ( MRP1) expression.RESULTS: Based on the data of miRNA microarray,13 miRNAs were found to be differentially expressed in A549/CDDP cells compared with A549 cells,among which miR-134 was the most significantly down-regulated one.Compared with control group,A549/CDDP cells transfected with miR-134 mimics showed greatly enhanced sensitivity to cisplatin as indicated by IC(50)values ( P<0. 01).In contrast,suppression of the miR-134 level in the A549 cells resulted in a decreased sensitivity to cisplatin ( P<0. 01).FOXM1 siRNA down-regulated the protein levels of FOXM1.A549/CDDP cells transfected with si-FOXM1 showed enhanced sensitivity to cisplatin ( P<0. 01).In addition,the result of Western blot showed that miR-134 repressed MRP1 protein expression.CONCLUSION: miR-134 effectively increases the sensitivity of lung adenocarcinoma cells to cisplatin,and this effect of miR-134 may be partly due to its regulation of FOXM1 and MRP1 expression.
[KEY WORDS]MicroRNA-134; Lung adenocarcinoma; Cisplatin resistance; Forkhead box protein M1; Multidrug-associated protein 1
通訊作者△Tel: 0574-87016828; E-mail: yingmeire@163.com
*[基金項目]浙江省自然科學基金資助項目( No.LY14H160002) ;浙江省醫藥衛生科技項目( No.2014KYB248)
[收稿日期]2015-01-26[修回日期]2015-03-26
[文章編號]1000-4718( 2015)07-1214-05
[中圖分類號]R730. 23
[文獻標志碼]A
doi:10.3969/j.issn.1000-4718.2015.07.011