核黃素復合羥丙基甲基纖維素涂膜處理對采后楊梅果實冷藏品質及抗氧化活性的影響

汪開拓，廖云霞，闞建全，韓　林，馬　莉，許　凱（.重慶三峽學院生命科學與工程學院，重慶40400；.西南大學食品科學學院，重慶40075）

核黃素復合羥丙基甲基纖維素涂膜處理對采后楊梅果實冷藏品質及抗氧化活性的影響

汪開拓1，2，廖云霞1，闞建全2，韓林1，馬莉1，許凱1
（1.重慶三峽學院生命科學與工程學院，重慶404100；2.西南大學食品科學學院，重慶400715）

以“烏種”楊梅果實為試材，研究了核黃素復合羥丙基甲基纖維素（HPMC）涂膜處理對采后楊梅果實在1℃貯藏期間品質及抗氧化活性的影響。結果顯示，單一1mmol/L核黃素或1%HPMC處理均可有效抑制楊梅果實在整個貯藏期間腐爛率上升和品質劣變。核黃素復合HPMC涂膜處理則較單一處理更為顯著（p＜0.05）的抑制了楊梅果實在貯藏期間腐爛的發生，并降低了果實呼吸速率和MDA積累，從而維持了果實品質。同時，復合處理可顯著（p＜0.05）誘導楊梅果實在貯藏期間花色苷合成相關酶，如PAL、C4H、4-CL和DFR活性的上升，從而使經復合處理的果實中矢車菊-3-葡萄糖苷、榭皮素-3-O-蕓香苷、楊梅黃酮和總花色苷含量以及DPPH自由基清除率和總還原力均顯著（p＜0.05）高于單一處理水平。結果說明，核黃素復合羥丙基甲基纖維素涂膜處理在采后楊梅果實保鮮領域具有良好的應用前景。

核黃素，羥丙基甲基纖維素（HPMC），楊梅，品質，抗氧化

楊梅（Myrica rubra Seib&Zucc.）屬于楊梅科喬木植物，為主產于我國江南地區的亞熱帶水果，其具有色澤鮮艷、風味濃郁和柔軟多汁等特點，故深受廣大消費者喜愛，種植面積和產量逐年提高。同時，楊梅果實中富含的花色苷被證實具有清除人體內過量活性氧自由基、維持活性氧代謝平衡的作用，因而具有抗癌和抗突變的功能，并能預防糖尿病、心血管疾病和腫瘤等多種慢性病的發生［1］。但楊梅果果實組織嬌嫩，在采收和貯運過程中極易遭受病原菌侵染而發生大量腐爛，果實中的花色苷類物質也迅速分解，從而導致楊梅果實采后腐爛率的上升和抗氧化活性的急劇降低［2］。常規的楊梅保鮮方法主要是通過物理（如氣調、射線和熱空氣等）、化學（如SO2、萘乙酸、1-甲基環丙烯和茉莉酸甲酯等）和生物（如膜醭畢赤酵母和羅倫隱球酵母等）處理，從而抑制低溫貯藏期間楊梅果實霉菌性病害的發生，進而延長果實貯藏期［3］。但這些保鮮處理方法有些不僅存在一定的安全隱患，而且其保鮮效果也易受到處理方式和濃度的影響。因此，尋求更有效的綠色保鮮方法一直是楊梅采后保鮮研究的熱點。

可食性涂膜是近年來較為有效的果蔬保鮮方法。羥丙基甲基纖維素（hydroxypropylmethylcellulose，HPMC）作為綠色天然的纖維素衍生物，分散性和成膜性極佳，具有良好的廣譜抗菌功能［4-5］，已作為涂膜劑應用在柑橘［6］和葡萄［7］保鮮中。但現階段的研究也表明，單一涂（被）膜處理存在功效單一、作用時間短等不足，保鮮效果有限，因此需要尋找其他方法與涂膜處理相結合來提高其對果實的綜合保鮮效果。核黃素（Riboflavin）即水溶性維生素B2（Vitamin B2），為含有核糖醇側鏈的異咯嗪衍生物，在動物性食品中有廣泛分布。核黃素不僅在醫學上可防治口、眼和舌等部位炎癥，同時大量研究也證實核黃素作為抗性激發子可有效調控植物的一系列抗病相關蛋白和植保素的合成，從而有效抑制病原菌的侵染［8］。因此，本研究將核黃素添加進HPMC涂膜劑中，以分析該復合涂膜處理對楊梅果實在1℃貯藏期間腐爛、品質及抗氧化活性的影響，從而為楊梅果實采后保鮮技術的應用提供支撐。

1　材料與方法

1.1材料與儀器

“烏種”楊梅果實（Mycira rubra Sieb.et Zucc.Cv Wumei） 產自重慶市萬州區燕山鄉種植基地，采摘后2h內運回實驗室，挑選無病蟲害和機械傷且大小基本相同、著色均勻的商業成熟楊梅果實，25℃下自然風預冷1h左右散去田間熱，隨后仔細清洗并迅速風干，楊梅果實是否達到商業成熟可依據色差進行判斷，當果實表面a*平均值達到或超過10時，可認為轉色充分，達到商業成熟［2］；苯丙氨酸、β-巰基乙醇、硫代巴比妥酸國藥集團化學試劑有限公司；輔酶A、4-香豆酸、矢車菊-3-葡萄糖苷、榭皮素-3-O-蕓香苷、楊梅黃酮、福林酚溶液、DPPH試劑美國Sigma公司；硼酸、硼砂、三氯乙酸、磷酸氫二鈉、磷酸二氫鈉、丙酮、乙醇西隴化工股份有限公司；乙腈（色譜純） 美國Tedia公司。

LLOYD TAPlus型質構儀英國勞埃德儀器公司；UV-1600型分光光度計上海美譜達儀器有限公司；5424型臺式冷凍離心機德國艾德本公司；DW-40L92超低溫冰箱海爾公司；PL601-S型電子天平梅特勒-托利多公司；LC-20A型高效液相色譜儀日本島津公司。

1.2處理方法

1.2.1含有核黃素的HPMC涂膜劑的制備HPMC膜制劑的配制參考Sánchez-González等［7］的方法進行，略有改動。準確稱取HPMC 5g溶于500m L無菌蒸餾水中配成1%的HPMC溶液，隨后將該溶液加熱至80℃并攪拌保溫2h，再冷卻至30℃并重新定容至500m L后緩慢加入核黃素粉劑，使溶液中核黃素終濃度達到1mmol/L，最后用稀鹽酸調節pH至6.5左右制成母液（可不添加核黃素單獨制備HPMC涂膜劑母液）。母液于室溫下自然冷卻后用兩層紗布進行過濾，再經真空泵抽真空至0.05～0.2MPa下脫氣1h，隨后于4℃冷庫中靜置過夜后再次脫氣，即形成含（不含）有核黃素的HPMC保鮮膜制劑。

1.2.2處理將經挑選、預冷和75%表面消毒過的楊梅果實分為四組：a.對照組，果實不經任何處理；b.核黃素處理組，將果實浸泡于1mmol/L核黃素溶液10min；c.HPMC處理組：果實浸泡于上述制備好的1% HPMC保鮮膜制劑中10m in，并在此過程中用軟塑料棒仔細翻轉以確保果實涂膜均勻。浸泡完成后，將楊梅果實小心取出于不銹鋼食品架上，在室溫下以自然風緩慢晾干2h以在果實表面形成穩定涂膜；d.核黃素+HPMC處理組：果實浸泡溶液為含有1mmol/L核黃素的1%HPMC保鮮膜制劑，方法同處理c。處理完成后將果實用聚乙烯塑料盒（20cm×12cm×8cm）分裝，置于（1±0.5）℃、90%～95%RH環境中貯藏8d。分別在果實貯藏前（0d）以及貯藏期間每隔2d取樣，測定果實腐爛率、品質參數和呼吸速率；同時取樣在液氮中速凍，保存于-60℃條件下，用于其余指標的測定。每組約3kg楊梅果實，整個實驗重復三次。

1.3指標測定

1.3.1腐爛率楊梅果實表面出現霉菌性病斑即記為爛果。腐爛率（%）=（爛果數/總果數）×100

1.3.2硬度用TAPlus質構儀測定果實硬度，下壓速度1mm/s，探頭直徑5mm，結果以N/cm2表示。

1.3.3可溶性固形物（TSS）、可滴定酸（TA）和pH測定

手持WYT-4型折光儀測定果實TSS含量；用標準NaOH滴定果實20m L果汁至pH 8.2來測定TA含量，結果以檸檬酸百分數來表示；用PHS-25B型pH計測定果實pH。

1.3.4苯丙氨酸解氨酶PAL、對香豆酰-CoA連接酶（4-CL）、肉桂酸羥化酶（C4H）和二氫黃酮醇還原酶（DFR）等花色苷合成相關酶活性的測定楊梅果實粗酶液參照文獻［9］進行提取。PAL、C4H、4-CL和CFR酶活性分別參照Zucker［10］、Knobloch［11］、Lamb［12］和Ju［13］的方法進行測定，酶系反應液分別在290、333、340、550nm處吸光值1h增加0.001為1個酶活力單位，以上結果均以U/mg蛋白表示。

1.3.5花色苷單體及總花色苷含量的測定總花色苷含量的測定參照pH差異法進行［14］；以文獻［15］的高效液相色譜法測定果實中花色苷單體。以上結果均以mg/kgFW表示。

1.3.6抗氧化活性的測定以DPPH自由基清除率和總還原力來評價果實抗氧化活性。DPPH自由基清除率按照Larrauri［16］的方法進行測定，結果以DPPH自由基清除百分率來表示；還原力參考Ozsoy等［17］的方法進行測定，結果按反應液吸光值（700nm）來表示。

1.3.7呼吸速率和MDA含量的測定參照文獻［18］測定楊梅果實呼吸速率。采用GXH-305型紅外線CO2分析儀測定果實呼吸速率，以氣體流速為1L/m in的標準CO2作對照，載氣為脫CO2的空氣，結果以mgCO2/（kg FW·h）表示。取1g楊梅果實凍樣加入5m L 5%三氯乙酸進行勻漿，去上清液參照Hodges等［19］的TBA法測定MDA含量。

1.4數據分析

以上各指標測定除腐爛率和硬度重復10次外，其余指標均重復3次。運用SPSS 18.0軟件進行數據處理分析，用鄧肯氏多重比較方法進行差異顯著性檢驗，5%為顯著水平。

2　結果與分析

2.1核黃素復合HPMC涂膜處理對楊梅果實貯藏期間腐爛率的影響

如圖1所示，楊梅果實在1℃貯藏期間，其腐爛率隨貯藏時間的延長而逐漸上升，貯藏8d后，對照組果實腐爛率達到35.1%，果實已基本失去食用價值。1mmol/L核黃素和1%的HPMC涂膜的單一處理可顯著（p＜0.05）抑制楊梅果實冷藏期間腐爛的發生，貯藏8d后果實腐爛率較對照組水平分別下降了47.6%和59.6%；用含有1mmol/L核黃素和1%HPMC復合膜制劑進行涂膜處理較單一處理更為顯著（p＜0.05）地降低了果實腐爛率，經復合處理的果實腐爛率在貯藏后8d僅為8.7%，所以復合涂膜處理對抑制楊梅果實的腐爛效果最好。

圖1　核黃素復合HPMC涂膜處理對楊梅果實貯藏期間腐爛率的影響Fig.1　The effects of riboflavin in combination with HPMC coating treatmenton decay incidence in Chinese bayberries during the storages

2.2核黃素復合HPMC涂膜處理對楊梅果實貯藏期間呼吸速率和MDA含量的影響

楊梅果實在采后冷藏期間生理代謝旺盛，呼吸速率持續維持在較高水平。單一的核黃素處理對果實呼吸速率無顯著（p＞0.05）影響，但單一1%HPMC涂膜及其復合核黃素的處理可顯著（p＜0.05）降低果實冷藏期間呼吸速率，從而減慢果實底物代謝水平（見圖2A）。

楊梅果實冷藏期間MDA含量逐漸上升，顯示果實細胞膜脂過氧化程度逐漸加劇。經單一的核黃素處理的果實在冷藏后期其MDA含量均顯著（p＜0.05）低于對照水平；1%的HPMC涂膜處理較單一的核黃素處理更為顯著（p＜0.05）的抑制了果實MDA含量的上升，使其在整個冷藏期間均維持在較低水平；經復合處理的果實其MDA含量在整個貯藏期間顯著（p＜0.05）低于單一處理果實（見圖2B）。所以，經復合涂膜處理的果實不僅顯著降低了呼吸速率，且MDA含量也顯著受到了抑制，對楊梅果實的保鮮起到了良好的作用。

圖2　核黃素復合HPMC涂膜處理對楊梅果實貯藏期間呼吸速率（A）和MDA含量（B）的影響Fig.2　The effects of riboflavin in combination with HPMC coating treatmenton respiration rate（A）and MDA content（B）in Chinese bayberries during the storages

2.3核黃素復合HPMC涂膜處理對楊梅果實貯藏期間品質的影響

如表1所示，經單一HPMC涂膜處理的楊梅果實在1℃貯藏8d后，果實中TA和TSS含量以及硬度均顯著（p＜0.05）高于對照組果實。核黃素復合HPMC涂膜處理較單一涂膜處理更為有效的抑制了果實軟化；同時，復合處理最為顯著（p＜0.05）的延緩了果實pH的上升。綜上所述，復合涂膜處理可以保持楊梅果實貯藏期間最好的品質指標（TA、TSS和硬度）。

2.4核黃素復合HPMC涂膜處理對楊梅果實貯藏期間花色苷合成相關酶的影響

PAL、C4H、4-CL和DFR為楊梅果實中花色苷合成的關鍵酶類。如圖3（A）和圖3（D）所示，對照果實在1℃貯藏期間PAL和DFR活性在貯藏前4d緩慢上升，隨后迅速下降；而圖3（B）和圖3（C）顯示，C4H和4-CL活性卻隨著貯藏時間的延長而逐漸下降。1% HPMC涂膜處理可顯著（p＜0.05）抑制果實貯藏后期PAL、C4H和DFR活性的下降，使這些酶活性在貯藏期后4d仍然維持在較高水平，但HPMC處理對4-CL活性在貯藏后期無顯著（p＞0.05）影響。核黃素則全面誘導了貯藏期間楊梅果實中PAL、C4H、4-CL和DFR活性，使其在整個貯藏期間均顯著（p＜0.05）高于對照果實。而核黃素復合HPMC涂膜處理，則較核黃素的單一處理更為顯著（p＜0.05），誘導了上述3種酶活性的提高，所以，復合涂膜處理對楊梅果實中花色苷合成酶活性均有提高作用。

表1　核黃素復合HPMC涂膜處理對楊梅果實貯藏期間品質的影響Table 1　The effects of Riboflavin in combination with HPMC coating treatmenton quality parameters in Chinese bayberries during the storages

2.5核黃素復合HPMC涂膜處理對楊梅果實貯藏期間花色苷含量的影響

矢車菊-3-葡萄糖苷（cyanidin-3-glucoside，C3G）、槲皮素-3-O-蕓香苷（quercetin-3-O-rutinoside，Q3R）以及楊梅黃酮（myricetin，MT）為楊梅中主要的花色苷類單體物質，其中C3G為最主要花色苷類單體［9］。如圖4所示，對照組果實中Q3R和MT含量在1℃貯藏期間逐漸下降；C3G和總花色苷含量均在貯藏前2d緩慢上升，隨后逐漸下降。單一的核黃素和HPMC涂膜處理均可顯著（p＜0.05）抑制果實花色苷類單體物質在貯藏期間的下降，但經兩者的復合處理的果實的花色苷類物質含量在整個貯藏期間均顯著（p＜0.05）高于單一處理水平，所以復合涂膜處理可以使楊梅果實中的花色苷含量在貯藏期間維持最高水平。

2.6核黃素復合HPMC涂膜處理對楊梅果實抗氧化活性的影響

如圖5所示，楊梅果實在1℃貯藏期間，伴隨著花色苷類物質含量的下降，其DPPH自由基清除率和總還原力也隨貯藏時間的延長而逐漸降低。對照果實在1℃下貯藏8d后，其DPPH自由基清除率和總還原力僅為貯藏前的57.2%和43.3%。經核黃素或HPMC涂膜處理后，楊梅果實DPPH自由基清除率和總還原力下降速度明顯減慢；復合處理更為有效的延緩了果實貯藏期間抗氧化活性的降低，1℃貯藏8d后，經復合處理的果實中DPPH自由基清除率和總還原力為貯藏前的91.2%和82.9%，因而保持了較高的抗氧化活性。

圖3　核黃素復合HPMC涂膜處理對楊梅果實貯藏期間PAL（A）、C4H（B）、4-CL（C）和DFR（D）的影響Fig.3　The effects of riboflavin in combination with HPMC coating treatmenton activities of PAL（A），C4H（B），4-CL（C）and DFR（D）in Chinese bayberries during the storages

3　結論與討論

楊梅果實采后生理代謝旺盛，低溫冷藏仍然會發生嚴重的腐爛和品質劣變現象。涂膜處理可有效抑制果實采后病原菌侵染和衰老進程，從而維持果實品質，延長貨架期［20］。HPMC為近年來新合成的纖維素衍生物，其無毒可降解，分散性和成膜性較好，作為食品涂膜劑可有效抑制多種病菌的生長［5］。研究顯示，HPMC涂膜處理可顯著抑制柑橘果實在貯藏期間青霉菌的侵染，并維持果實中揮發性成分的含量［6］；而用HPMC對葡萄果實進行涂膜處理則顯著延緩了葡萄果實在冷藏期間呼吸速率的上升，因此減少了呼吸底物的消耗，降低了果實失重率并維持了果實品質［7］。在本研究中，HPMC涂膜處理較單一的核黃素處理更為顯著的抑制了楊梅果實采后1℃貯藏期間腐爛率的上升，同時有效降低呼吸速率和MDA含量，延緩果實采后衰老進程，因此減慢了果實硬度、TSS、TA含量的下降和pH的上升。核黃素復合HPMC涂膜處理較單一HPMC涂膜處理更為有效的抑制了果實腐爛并維持了果實品質。因此，在HPMC膜制劑添加核黃素可增進HPMC膜對楊梅果實的保鮮效果。

圖4　核黃素復合HPMC涂膜處理對楊梅果實貯藏期間C3G（A）、Q3R（B）、MT（C）和總花色苷（D）含量的影響Fig.4　The effects of Riboflavin in combination with HPMC coating treatmenton contents of C3G（A），Q3R（B），MT（C）and total anthocyanins（D）in Chinese bayberries during the storages

圖5 核黃素復合HPMC涂膜處理對楊梅果實貯藏期間DPPH自由基清除力（A）和總還原力（B）的影響Fig.5　The effects of riboflavin in combination with HPMC coating treatmenton scavenging capacity against DPPH（A）and reducing power（B）in Chinese bayberries during the storages

楊梅果實主要功能性物質——花色苷是通過苯丙烷類代謝途徑進行合成，而在此途徑中，PAL是第一限速酶、C4H和4-CL則是合成花色苷前體4-香豆酰輔酶A關鍵酶，DFR則是合成無色花青素的關鍵酶，這些酶活性的大小直接關系著楊梅果實中花色苷的合成量［21］。核黃素作為化學激發子可顯著誘導模式植物擬南芥［22］和煙草［23］中苯丙烷類代謝酶活性的上升，從而促進酚類物質的合成。在本研究中，單一核黃素處理較HPMC涂膜處理更為有效的誘導了楊梅果實在1℃貯藏期間PAL、C4H、4-CL和DFR酶活性的提高，因而全面促進了果實貯藏期間C3G、Q3R和MT等花色苷單體物質以及總花色苷含量的上升，進而抑制了果實DPPH自由基清除率和總還原力在冷藏期間的下降，維持了果實抗氧化活性。核黃素復合HPMC涂膜處理則較單一核黃素處理更為有效的維持了果實抗氧化活性。這些結果顯示，核黃素處理可有效維持楊梅果實冷藏期間的抗氧化活性，而HPMC涂膜則增強了核黃素對抗氧化物質的誘導作用。與本研究相類似，HPMC涂膜處理復合檸檬精油也較單一的精油處理更為有效的抑制了葡萄貯藏期間抗氧化活性的下降［7］。

因此，本研究表明，單一的HPMC涂膜處理對楊梅果實有較好的品質維持作用，而核黃素則能延緩果實冷藏期間抗氧化活性的下降；兩者的復合處理可達到良好的互補作用，即不僅更有效的抑制楊梅果實采后貯藏期間腐爛的發生和品質的下降，而且能全面誘導果實貯藏期間花色苷合成酶活性的上升，從而促進花色苷的合成并延緩抗氧化活性的下降，這些結果顯示了該復合涂膜處理在楊梅保鮮中有良好的應用前景。

［1］Bao J S，Cai Y，Sun M.Anthocyanins，flavonols and free radical scavenging activity of Chinese bayberry（Myrica rubra）extracts and their color properties and stability［J］.Journal of Agricultural and Food Chemistry，2005，53（6）：2327-2332.

［2］Zhang W S，Chen K S，Zhang B，et al.Postharvest responses of Chinese bayberry fruit［J］.Postharvest Biology and Technology，2005，37：241-251.

［3］鞏衛琪，房祥軍，郜海燕，等.楊梅采后病害與控制技術研究進展［J］.生物技術進展，2013，3（6）：403-407.

［4］吳俊紅，王家俊，厲依俏，等.殼聚糖/羥丙基甲基纖維素包裝薄膜的結構與性能［J］.浙江理工大學學報，2010（1）：64-68.

［5］Sánchez-González L，González-Martínez C，Chiralt A，et al. Physicaland antimicrobialpropertiesofchitosan-tea tree essential oil composite films［J］.Journal of Food Engineering，2010，98：443-452.

［6］Sánchez-Moreno C，Plaza L，de Ancos B，et al.Quantitative bioactive compounds assessment and their relative contribution to the antioxidant capacity of commercial orange［J］.Journal of the Science of Food and Agriculture，2003，83：430-439.

［7］Sánchez-González L，Pastor C，Vargas M，et al.Effect of hydroxypropyl methyl cellulose and chitosan coatings with and without bergamot essential oil on quality and safety of coldstored grapes［J］.Postharvest Biology and Technology，2011，60：57-63.

［8］Taheri P，Tarighi S.Riboflavin induces resistance in rice against Rhizoctonia solani via jasmonate-mediated priming of phenylpropanoid pathway［J］.Journal of Plant Physiology，2010，167：201-208.

［9］Wang K，Cao S，Jin P，et al.Effect of hot air treatment on postharvestmould decay in Chinesebayberry fruitand the possible mechanisms［J］.International Journal of Food Microbiology，2010，141：11-16.

［10］Zucker M.Sequential induction of phenylalanine ammonia lyase and a lyase-inactivating system in potato tuber disks［J］. Plant Physiology，1968，43：365-374.

［11］Knobloch K H，Hahlbrock K.4-Coumarate：CoA ligase from cell suspension culture of Petroselinum hortense Hoffm.Partial purication，substrate specificity，and further properties［J］.Archives of Biochemistry and Biophysics，1977，184：233-248.

［12］Lamb C J，Rubery PH.A spectrophotometric assay for trapscinnamic acid 4-hydroxylase activity［J］.Analytical Biochemistry，1975，68：554-561.

［13］Ju ZG，Yuan Y B，Liu C L，et al.Dihydroflavonol reductase activity and anthocyanin accumulation in‘Delicious’，‘Golden Delicious’ and‘Indo’ apples［J］.Scientiahorticulturae-Amsterdam，1997，70：31-43.

［14］Cheng GW，Breen P J.Activity of phenylalanine ammonia lyase（PAL）and concentration of anthocyanins and phenolics in developing strawberry fruit［J］.Journal of the American Society for Horticultural Science，1991，116：865-869.

［15］Wang K T，Jin P，Shang H T，etal.Effectofmethyl jasmonate in combination with ethanol treatment on postharvest decay and antioxidant capacityinChinesebayberries［J］.Journalof Agricultural and Food Chemistry，2010，58：9597-9604.

［16］Larrauri JA，Sanchez-Moreno C，Saura-Calixto F.Effect of temperature on the free radical scavenging capacity of extracts from red and white grape pomace peels［J］.Journal of Agricultural and Food Chemistry，1998，46：2694-2697.

［17］Ozsoy N，Can A，Yanardag R，et al.Antioxidant activity of Smilax excelsa L.leaf extracts［J］.Food Chemistry，2008，110：571-583.

［18］Wang K，Jin P，Shang H，et al.A combination of hot air treatment and nano-packing reduces fruit decay and maintains quality in postharvest Chinese bayberries［J］.Journal of the Science of Food and Agriculture，2010，90：2427-2432.

［19］Hodges D M，DeLong JM，Forney C F，et al.Improving the thiobarbituric acid-reactive-substances assay for estimating lipid peroxidation in plant tissues containing anthocyanin and other interfering compounds［J］.Planta，1999，207：604-611.

［20］Duan J，Wu R，Strik B C，et al.Effect of edible coatings on the quality of fresh blueberries（Duke and Elliott） under commercialstorageconditions［J］.PostharvestBiologyand Technology，2011，59：71-79.

［21］張上隆，陳昆松.果實品質形成與調控的分子生理［M］.北京：中國農業出版社，2007：153-164.

［22］Liu F，Wei F，Wang L，et al.Riboflavin activates defense responses in tobacco and induces resistance against Phytophthora parasiticaandRalstoniasolanacearum［J］.Physiological and Molecular Plant Pathology，2010，74：330-336.

［23］Zhang S，Yang X，Sun M，et al.Riboflavin-induced Priming for Pathogen Defense in Arabidopsis thaliana［J］.Journal of Integrative Plant Biology，2009，51：167-174.

Effect of riboflavin in combination w ith hydroxypropylmethyl cellulose（HPMC）coating on quality and antioxidant activity in harvested Chinese bayberries during refrigerated storage

WANG Kai-tuo1，2，LIAO Yun-xia1，KAN Jian-quan2，HAN Lin1，MA Li1，XU Kai1
（1.College of Life Science and Engineering，Chongqing Three Gorges University，Chongqing 404100，China；2.College of Food Science，Southwest University，Chongqing 400715，China）

In the p resent study，the effects of riboflavin in combination w ith HPMC coating on quality and antioxidant activity in harvested Chinese bayberries during the storage at 1℃ were investigated.The results exhibited that the treatment of 1mmol/L riboflavin or 1%HPMC coating alone could effectively inhibit the increase in decay incidence and quality deterioration in Chinese bayberries during the whole storage.The combination of riboflavin and HPMC coating more significantly inhibited decay occurrence and reduced resp iration rate and MDA accumulation in Chinese bayberries during the storage com pared w ith the either alone，which ledto maintainingthe fruit quality parameters.Meanwhile，the combinedtreatment could significantly induce the increase in the activities of anthocyanin synthesis related enzymes such as PAL，C4H，4-CL and DFR in Chinese bayberries during the storage，resulting in higher contents of C3G，Q3R，MT and total anthocyanins as well as scavenging capacity against 1，1-d iphenyl-2-pic rylhyd razyl（DPPH）and reducing power than riboflavin or HPMC app lied alone.These results ind icated that riboflavin in combination w ith HPMC coating m ightob tain a p rom ising app lication in p reservation of harvested Chinese bayberry.

riboflavin；hyd roxyp ropylmethyl cellulose（HPMC）；Chinese bayberry；quality；antioxidant

TS255.3

A

1002-0306（2015）06-0331-07

10.13386/j.issn1002-0306.2015.06.064

2014-07-02

汪開拓（1983-），男，博士，副教授，研究方向：農產品貯藏與加工。

國家自然基金青年項目（31201440）；國家教育部科學技術研究重點項目（212141）；重慶市自然科學基金項目（cstcjjA80018）；博士后面上基金項目（2014M552300）；重慶市教委科學技術研究重點項目（KJ121120）；第二批重慶市高等學校青年骨干教師資助計劃（2014046）；重慶三峽學院科研創新團隊建設計劃（201302）；重慶三峽學院2014年度大學生創新性實驗計劃。