陜北紅洋芋的莖尖脫毒和分化培養基篩選

張艷艷，楊小琴，張媛媛

（陜西榆林市農業科學研究院，719000）

陜北紅洋芋的莖尖脫毒和分化培養基篩選

張艷艷，楊小琴，張媛媛

（陜西榆林市農業科學研究院，719000）

應用不同激素配比的培養基對榆林市本土馬鈴薯品種陜北紅洋芋進行莖尖的分化培養，以期獲得脫毒試管苗。試驗結果表明，最適合陜北紅洋芋莖尖分化成苗的培養基配方為MS+0.1 mg/L NAA+0.1 mg/L GA3+0.05 mg/L 6-BA，成活率達97.4%，分化成苗率達42.1%。

陜北紅洋芋；莖尖脫毒；培養基篩選

陜北紅洋芋是陜北榆林特有的馬鈴薯品種，有多年的栽培歷史。該品種植株繁茂，莖稈紫褐色，葉色深綠，薯塊較大，呈不規則橢圓形，紫皮白肉，產量較為可觀。由于馬鈴薯的傳統種植方式是用薯塊作為營養體進行繁殖，導致病毒隨著世代繁衍在母體內逐漸累積，從而引起種性退化，對生產造成很大為害。本研究采用莖尖脫毒技術來脫除馬鈴薯體內對生產造成損害的病毒，恢復馬鈴薯的優良種性，改善品質，提高產量，最終做到為生產服務［1］。同時，本研究還篩選了一系列不同激素配比的培養基，獲得了陜北紅洋芋最適宜的成活和成苗培養基，為后續的脫毒種苗生產提供了技術依據。

1　材料與方法

1.1試驗材料

以本地馬鈴薯品種陜北紅洋芋的薯塊萌發幼芽為供試材料。

1.2試驗方法

①培養基設計本試驗以云薯201［2］，隴薯6號［3］以及費烏瑞它［4］的研究結果為參考依據，以MS作為基礎培養基，以NAA、6-BA、GA3、D-泛酸鈣這4種生長調節劑的不同配比設計出了8種培養基。培養基成分詳見表1。

表1　不同配方的莖尖培養培養基組分

②外植體的制備選用標準薯型的薯塊室溫下置于暗光中自然萌芽，10 d后待薯塊長出約0.5 cm長的白色簇生芽時，將薯塊置于自然散射光下繼續萌芽。待芽長到1.5～2.0 cm時，即可取芽作外植體。

③外植體的處理用鑷子小心取下薯塊上的健壯芽，裝入紗袋中抽緊袋口，掛于自來水水龍頭下流水沖洗40～60 min。在無菌操作臺上，用75%的酒精均勻噴濕并靜置1 min，用無菌水沖洗一遍，之后用6%的次氯酸鈉溶液浸泡10 min，最后再用無菌水沖洗3遍，放于燒杯內控水備用。

④芽莖尖的剝離和培養將處理好的芽用無菌鑷子夾取放在體視顯微鏡下進行剝離，剝離的莖尖大小以帶有1～2個葉原基為宜。

將剝離的莖尖接種于上述8種培養基中放在日光溫室內培養并開始觀察愈傷組織的形成狀況。最初的2周適當遮光，2周后置于溫度20～27℃、光照16 h/d的條件下培養。待苗高約1 cm時轉入MS普通培養基中培養。

⑤統計成活率及成苗率莖尖接種培養6個月后進行調查，統計莖尖成活率（成活莖尖個數與接種莖尖個數之比）和成苗率（成苗莖尖個數與成活莖尖個數之比）。

表2　莖尖接種培養6個月后生長狀況

2　結果與分析

馬鈴薯莖尖接種6個月后，生長狀況已經穩定，之后基本上沒有大的變化。由表2可以看出，馬鈴薯莖尖在1號培養基（云薯201培養基）中能夠全部成活，但成苗率為0；莖尖在2號培養基（隴薯6號培養基）中能夠全部成活，成苗率接近40%；莖尖在3號培養基（費烏瑞它培養基）中的成活率較高，而且成苗率是試驗8種培養基中最高的；莖尖在4號培養基中絕大多數能夠成活，但多數發展為愈傷組織，且愈傷組織的生活力較強，一部分能夠分化成苗；莖尖在5號培養基中生長狀況良好，通過愈傷途徑可以得到一些苗子；6號培養基較5號培養基中6-BA的含量高了0.05 mg/L，成苗率下降了3.3%，7號培養基中6-BA含量更高，莖尖成苗率又進一步降低；莖尖在8號培養基中，莖尖極少出現愈傷化，生長過于緩慢，極少數能夠不通過愈傷途徑直接成苗。

試驗結果說明，參試的8種培養基中，3號參考費烏瑞它培養基而設計的培養基配方最適于陜北紅洋芋的莖尖組培；對于陜北紅洋芋來說最適宜其莖尖組培的6-BA濃度為0.05 mg/L。

3　結論與討論

陜北紅洋芋在陜北榆林具有較好種植和推廣前景。至今未對該品種作出判定，遺傳背景不詳。通過本試驗，筆者認為陜北紅洋芋與云薯［2］和隴薯［3］的培養特性相差較大，莖尖培養直接成苗的最適宜培養基的可借鑒性較低［5］。而與費烏瑞它［4］的莖尖培養直接成苗的最適宜培養基成分最為接近，并且參考費烏瑞它的最適宜培養基而設計的培養基配方可以使陜北紅洋芋的莖尖培養直接成苗率達到最高。故筆者猜測陜北紅洋芋與費烏瑞它或有相對較近的遺傳背景。

在NAA、GA3濃度固定的情況下調整6-BA的使用濃度，在一定范圍內能夠提高莖尖的成活率和成苗率，陜北紅洋芋的最適6-BA濃度為0.05 mg/L。當濃度達到0.2 mg/L的時候，對莖尖發育會產生抑制作用，這與前人結果一致［6］。另外，用D-泛酸鈣代替培養基中的NAA，初期雖然能夠明顯地促進不定芽的分化，但中后期莖尖分化就會日趨緩慢，甚至衰老死亡。因此，用D-泛酸鈣代替NAA促使莖尖分化成芽的培養基配方還有待改進。此外，有研究［7］在馬鈴薯莖尖分化培養的培養基中添加適量的玉米素，有顯著的成苗效果，在同等條件下，與6-BA相比較，效果更加顯著。

馬鈴薯在體外擴繁中，通過愈傷組織和不定芽再生的過程，會頻發多倍性。Curry等［8］建議應用流式細胞儀對任意途徑獲得的分化苗進行遺傳漂變的檢測，從而篩選對生產有價值的單株，摒棄無意義的變異材料。這為我們通過莖尖剝離獲得脫毒種苗的研究提供了遺傳性的檢測依據。

［1］黃曉梅.植物組織培養［M］.北京：化學工業出版社，2011：91-106.

［2］楊瓊芬，隋啟君，李世峰，等.馬鈴薯新品種“云薯201”脫毒種苗生產中的影響因素研究［J］.西南農業學報，2006，19（4）：679-682.

［3］齊恩芳，王一航，張武，等.馬鈴薯莖尖脫毒培養方法優化研究［J］.中國馬鈴薯，2007，21（4）：200-202.

［4］姜秀芳，張改英，田煒，等.鄭薯5號和費烏瑞它試管苗培育、快繁及試管薯誘導培養基的篩選［J］.中國馬鈴薯，2004，18（5）：280-281.

［5］郝文勝，趙青輝，曹亞利，等.誘導早大白莖尖分生組織適宜培養基的篩選［C］//中國作物學會馬鈴薯專業委員會2002年年會論文集，2002.

［6］仲乃琴.植物生長調節劑對不同馬鈴薯品種莖尖分生組織離體培養的影響［J］.甘肅農業大學學報，1999（3）：296-299.

［7］Muhammad A A，Hakoomat A.Effect of culture medium on direct organogenesis from different explants of various potato genotypes［J］.Biotechnology，2004（2）:187-193.

［8］Curry R F，Cassells A C.Callus initiation，maintenance，and shoot induction in potato［J］.Plant Cell Culture Protocols，1999，111:31-42.

Shoot-tip Virus-free Tissue Culture and Screening of Optimal Differential Medium of Shaibeihongyangyu

ZHANG Yanyan，YANG Xiaoqin，ZHANG Yuanyuan

In the paper，we prepared different differential medium with different ratios of hormones to culture the shoot tips of a native potato cultivar Shaibeihongyangyu in Yulin in vitro，in order to obtain virus-free plantlets.Ultimately，54 plantlets were obtained.The results showed that，the most optimal differential medium formula for Shaibeihongyangyu to achieve virus-free plantlet was MS+0.1 mg/L NAA+0.1 mg/L GA3+0.05 mg/L 6-BA，and the survival rate was 97.4%，while the seedling rate was 42.1%.

Shaibeihongyangyu；Virus-free of shoot tips；Screening of differential medium

S532

A

1001-3547（2015）04-0042-03

10.3865/j.issn.1001-3547.2015.04.015

國家馬鈴薯產業技術體系項目（CARS-10）

張艷艷（1984-），女，碩士，農藝師，從事馬鈴薯研究，電話：15029737898，E-mail：3881229@163.com

2014-12-23