趙行宇, 秦迎新, 沈 楠, 趙麗靜, 朱文赫, 陳默然, 張 巍
(吉林醫藥學院,吉林吉林132013)
山核桃青皮萃取物抗內源性H2O2致血管內皮細胞凋亡及機制研究
趙行宇, 秦迎新, 沈 楠, 趙麗靜, 朱文赫, 陳默然, 張 巍
(吉林醫藥學院,吉林吉林132013)
目的 探討山核桃青皮萃取物對過氧化氫 (H2O2)誘導血管內皮細胞凋亡的影響及可能機制。方法 以葡萄糖氧化酶 (GOX)催化生成內源性H2O2制作內皮細胞損傷模型;加入不同劑量的山核桃青皮萃取物,觀察細胞形態學改變;Annexin/PI雙標記染色,流式細胞儀檢測細胞凋亡率;Western blot檢測Caspase-3及Bcl-2和Bax蛋白表達量。結果 山核桃青皮萃取物改善了內源性H2O2導致的內皮細胞形態變化;流式檢測結果顯示萃取物對細胞模型凋亡有明顯的抑制作用;電泳結果顯示Caspase-3和Bax表達量降低,Bcl-2表達增加,隨劑量增加,作用增加,具有劑量依賴性。結論 山核桃青皮萃取物對內源性H2O2誘導的血管內皮細胞凋亡有抑制作用,其機制可能通過啟動Caspase途徑實現。
山核桃;細胞凋亡;過氧化氫
血管內皮損傷是動脈粥樣硬化等多種疾病發生的重要因素,在針對血管內皮損傷及保護作用進行的研究中,關于中藥提取成分的作用及機制的研究,近年有所增加[1-6]。內皮細胞損傷的原因中,氧化應激受到一些研究者的關注,因為氧化應激不僅可以直接導致細胞損傷,出現凋亡,而且多種凋亡刺激都伴隨有氧化應激或者增加了細胞內活性氧集團ROS水平[7-8]。研究也表明,通過抑制氧化應激可以抑制細胞凋亡,許多凋亡抑制劑都是通過增強細胞抗氧化的能力發揮作用,或者其本身就具有抗氧化活性。山核桃青皮是山核桃未成熟果實的青果皮,具有清熱解毒、抑菌鎮咳及抗癌等作用[7-10]。相關研究表明:山核桃青果皮萃取物在體外具有抗氧化活性[11-13],但針對內皮氧化應激損傷后,萃取物對其的作用及相關機制未見報道。本研究以GOX催化葡萄糖產生內源性H2O2制作內皮細胞損傷模型,觀察山核桃青皮萃取物干預后,氧化應激損傷的血管內皮細胞凋亡變化,并對這一作用的可能機制進行探討,為后續的研究提供進一步的證據。
1.1 藥物萃取 山核桃采自吉林省林區,室溫下晾干。將核桃果實處理后得核桃青皮,用80%乙醇回流萃取30 min,于低溫回收溶劑,萃取物用水分散后用乙酸乙酯萃取,回收溶劑得萃取物0.324 kg,采用普魯士藍法測定總酚的量,極性部位總酚的量為18.2%。收集于旋轉蒸發瓶中蒸干,過濾除菌,萃取物稱重以DMSO溶解終質量濃度為500μg/mL[14]。
1.2 試劑 胎牛血清由杭州四季青公司生產;高糖DMEM培養基購自美國GIBCO公司;胰蛋白酶(Trypsin)、過氧化氫檢測試劑盒購于艾美捷科技有限公司,Annexin-V/PI雙染凋亡試劑盒、葡萄糖氧化酶(GOX)、Caspase-3、Bcl-2和Bax抗體購自美國Sigma公司。
1.3 萃取物對葡萄糖氧化酶活性的影響 取24孔版,每培養孔加入高糖DMEM培養基,分5組,復孔數為5,置培養箱靜置1 h,各組分別加入50μL培養基、10 mU GOX、10mU GOX+25μg/mL萃取物、10 mU GOX+50 μg/m L萃取物、10 mU GOX+100μg/mL萃取物,在1、3、6、12 h按試劑盒的檢測方法測量過氧化氫產生量。
1.4 細胞株及培養 人血管內皮細胞系 (EVC-304),購于中科院上海細胞庫,由吉林醫藥學院科學實驗室保存。細胞培養于高糖DMEM培養液中,培養條件為在5%CO2、濕度95%。每2天更換1次培養液,每周按1:3傳代。
1.5 內皮細胞形態學觀察 取對數生長期的細胞,培養24 h,分成5組,正常對照組、10 mU GOX組、10 mU GOX+25μg/mL萃取物組、10 mU GOX+50μg/mL萃取物組、10 mU GOX+100μg/mL萃取物組,用DMEM培養基稀釋液分別培養24 h后,倒置顯微鏡下觀察內皮細胞的形態學改變。
1.6 流式細胞儀檢測細胞凋亡 細胞處理同 “1.4”項,12 h后用胰酶消化,PBS洗滌細胞2次,在15 000 r/m in條件下離心10min,棄去上清液;按試劑盒說明書分別加入AnnexinⅤ-FITC和PI,用流式細胞儀檢測細胞凋亡率。
1.7 Western blot檢測Caspase-3及Bcl-2和Bax蛋白表達把上述分組培養的細胞用裂解液裂解后,收集提取細胞蛋
白,使用BCA法測蛋白的量。上樣量取60μg蛋白,設備為SDS-PAGE電泳儀,電轉凝膠上的蛋白至PVDF膜,兔抗人Caspase-3、Bcl-2及Bax抗體稀釋至1:1 000,4℃冰箱中孵育過夜,再用辣根過氧化物酶標記的二抗孵育2 h后,曝光顯影。以β-actin為內參,數據以正常對照組基準,計算各個樣品相對于正常對照組蛋白量的相對表達量。
1.8 統計學方法 統計分析軟件為SPSS 13.0版本,不同劑量組數據先進行方差齊性檢驗,再進行單因素方差分析和Student-Newman-Keuls(SNK)檢驗。
2.1 萃取物對葡萄糖氧化酶活性的影響 葡萄糖氧化酶在不同質量濃度萃取物條件下,產生過氧化氫的量見表1。可見與正常對照組相比,不同質量濃度萃取物和GOX組反應產生過氧化氫濃度明顯增加,差異顯著 (P<0.01),同一時間點過氧化氫的量隨萃取物質量濃度增加所有下降,但組間沒有顯著性差異,不同時間點過氧化氫的量沒有顯著性差異。
表1 不同萃取物質量濃度對葡萄糖氧化酶催化產生H2O2的量的影響

表1 不同萃取物質量濃度對葡萄糖氧化酶催化產生H2O2的量的影響
注:與正常對照組比較,**P<0.01
21.5±4.3 20.9±5.1 20.3±5.3 19.4±6.2 10 mU GOX 53.3±5.2** 48.3±6.8** 50.3±4.9** 52.3±5.9**10 mU GOX+25μg/m L山核桃青皮萃取物 52.4±6.1** 49.3±4.9** 49.6±5.7** 49.5±6.3**10 mU GOX+50μg/m L山核桃青皮萃取物 50.5±5.7** 48.3±5.0** 48.7±5.8** 48.9±6.8**10 mUGOX+100μg/mL山核桃青皮萃取物 48.8±5.9** 47.1±5.6** 48.5±6.0** 50.1±6.6 1 h 3 h 6 h 12 h正常對照組組別H2O2/(μmol.L-1)**
2.2 萃取物對EVC-304細胞形態的影響 正常對照組(圖1A)細胞生長良好,貼壁生長,呈多角形或長梭形,呈鵝卵石樣鋪滿底層。而10 mU GOX組(圖1B)細胞在作用24 h后,細胞胞體變小、間隙增大,細胞變圓收縮,胞漿透明,失去細胞間連接,大多數細胞懸浮脫落;不同質量濃度萃取物與10mU GOX混合培養后(圖1C~圖1E)細胞形態與狀態與正常對照相似,但隨劑量增加,細胞形態改善越好,具有劑量依賴性。

圖1 各組EVC-304細胞形態(×400)
2.3 萃取物對細胞凋亡的影響 各組內皮細胞的凋亡百分比見表2,由表可見,正常對照組的凋亡最少,10 mU GOX組凋亡最多,與正常對照組比較,其它各組差異顯著 (P<0.01);與10 mU GOX組比,其它各組差異顯著 (P<0.05,P<0.01);不同給藥劑量組凋亡量介于正常對照組與10 mU GOX組之間,隨劑量增加,凋亡增加。具有劑量依賴性。
表2 各組對EVC-304細胞凋亡的影響

表2 各組對EVC-304細胞凋亡的影響
注:與正常對照組比較,**P<0.01;與10 mU GOX組比較,#P<0.05,##P<0.01
組別 細胞凋亡率/%正常對照組 3.15±1.07##10 mUGOX組 46.31±4.85**10 mUGOX+25μg/mL山核桃青皮萃取物組 9.48±3.17**##10 mUGOX+50μg/mL山核桃青皮萃取物組 18.59±5.24**##10 mU GOX+100μg/m L山核桃青皮萃取物組 32.65±6.13**#
2.4 萃取物對Caspase-3及Bcl-2和Bax蛋白表達 各組內皮細胞的Caspase-3及Bcl-2和Bax蛋白相對表達情況見圖2和表3。結果可知,正常對照組與GOX組表達量存在明顯差異 (P<0.01),與正常對照組相比,不同劑量萃取物導致Caspase-3蛋白表達升高,25μg/mL組差異顯著(P<0.05);Bcl-2蛋白表達降低,25μg/mL和50μg/mL山核桃青皮萃取物組差異顯著 (P<0.01,P<0.05);Bax蛋白表達升高,25μg/mL和50μg/mL山核桃青皮萃取物組差異顯著(P<0.01,P<0.05)。與GOX組相比,使用萃取物后,Caspase-3蛋白表達下降,不同劑量給藥組差異顯著(P<0.05,P<0.01);Bcl-2蛋白表達上升,50μg/mL和100μg/mL山核桃青皮萃取物組差異顯著 (P<0.05,P<0.01);Bax蛋白表達下降,100μg/mL山核桃青皮萃取物組差異顯著 (P<0.01)。隨萃取物劑量增加,變化越明顯,具有劑量依賴特性。

圖2 萃取物對Caspase-3、BcI-2和Bax蛋白表達的影響
表3 各組Caspase-3及BcI-2和Bax蛋白相對表達量

表3 各組Caspase-3及BcI-2和Bax蛋白相對表達量
注:與10 mU GOX組比較,*P<0.05,**P<0.01;與正常對照組比較,#P<0.05,##P<0.01
Caspase-3 Bcl-2 Bax正常對照組10 mU GOX組組別1** 2.31±0.98##1** 0.31±0.16##1** 3.35±1.05##10 mUGOX+25μg/mL山核桃青皮萃取物組 2.01±0.87*# 0.43±0.17## 2.83±0.93##10 mU GOX+50μg/m L山核桃青皮萃取物組 1.65±0.74** 0.55±0.17*# 2.11±0.89#10 mU GOX+100μg/m L山核桃青皮萃取物組 1.29±0.34** 0.65±0.16** 1.75±0.90**
在體內正常水平的H2O2在具有一定意義,如參與免疫和信號傳導的過程[15-18]。但在一些異常狀態時,H2O2產生過多,就會產生破壞作用,損傷人體正常的組織細胞,損傷核酸結構,誘發突變及細胞凋亡等改變,進而引發老年癡呆癥、心臟病、帕金森病和腫瘤等多種疾病[19-22]。在我們的研究中,針對人血管內皮細胞首次采用了酶催化,緩慢而持久的產生內源性H2O2誘導損傷,避免了外源性H2O2損傷嚴重且迅速消失、無法模擬體內H2O2損傷的缺點。從不同質量濃度的萃取物與GOX在高糖培養液中生成過氧化氫的實驗結果看,過氧化氫的量比較穩定,至于高劑量萃取物質量濃度下過氧化氫的量的下降趨勢,可能是由于酚類物質自身的抗氧化作用導致的過氧化氫分解造成的,但由于對過氧化氫的量的影響尚未達到顯著的差異,該損傷模型可以用于實驗研究。實驗結果也顯示:加入GOX后,細胞形態上改變明顯,流式結果也顯示細胞出現大量的凋亡,說明,加入GOX后,可以有效的模擬內源性H2O2損傷造成的凋亡。使用不同質量濃度的萃取物進行干預的結果表明,核桃青皮萃取物對內源性H2O2損傷導致的凋亡作用具有抑制作用,說明萃取物對由內源性H2O2損傷的血管內皮細胞具有保護作用,并且在一定劑量范圍內,質量濃度越高抑制作用也越強,說明這種保護作用有一定的劑量依賴特點。同時我們也觀察到萃取物干預后,Caspase-3及Bax蛋白表達下降、Bcl-2蛋白表達增加,這說明,萃取物的保護作用與對凋亡相關蛋白Bcl-2和Bax表達的調節以及Caspase凋亡通路有關,而且這種變化也具有劑量依賴的特點,說明萃取物可以影響凋亡相關蛋白的表達,實現對凋亡通路的調控。Bax蛋白在對Caspase凋亡通路的影響上,表現為促進凋亡的發生,其表達的增加會增加Bax蛋白的同源結合,激活Caspase凋亡通路,引發凋亡。而Bcl-2蛋白與Bax競爭異源結合,抑制Bax蛋白對Caspase凋亡通路的激活,發揮對H2O2損傷細胞的保護作用。實驗中Caspase-3蛋白表達下降的結果也說明,除了上述的抑制凋亡作用外,其還可以通過下調Caspase凋亡通路的蛋白,來實現對細胞的保護作用。但這兩種作用之間有無相互影響,以及是否還有其他的原因,仍然需要進一步的研究。
[1] 王如科,孫源源,韓建一,等.銀杏葉提取物對過氧化氫刺激下的血管內皮細胞的影響[J].現代生物醫學進展,2014,14(26):5038-5042.
[2] 馬桂鑫,趙文文,陳修平.血管內皮細胞損傷模型及中藥保護作用研究進展[J].中草藥,2014,45(2):276-280.
[3] 劉海云,崔艷茹,伍慶華,等.菟絲子總黃酮對過氧化氫損傷的血管內皮細胞的保護作用[J].中國實驗方劑學雜志,2013,19(18):215-218.
[4] 錢衛東,方祝元,陳 藝,等.降脂抗氧化合劑對高血壓合并高脂血癥患者血管內皮功能的影響[J].中成藥,2014,36(5):929-933.
[5] 楊金果,李運倫,周洪雷.鉤藤和萊菔子生物堿抗高血壓血管內皮細胞損傷效應[J].中成藥,2013,35(5):889-893.
[6] 高培國,強 輝,凌 鳴.葛根素對過氧化氫誘導的血管內皮細胞損傷的保護作用[J].西安交通大學學報:醫學版,2012,33(2):245-260.
[7] 徐 巍.青龍衣的藥用研究概述[J].中醫藥信息,2002,19(6):13-14.
[8] 郜海燕,李興飛,陳杭君,等.山核桃多酚物質萃取及抗氧化研究進展[J].食品科學,2011,32(5):336-341.
[9] 吳峰華,楊虎清,何志平.山核桃青果皮萃取物抗氧化活性研究[J].中國食品學報,2011,11(1):40-44.
[10] 呂海寧,折改梅,郭志琴,等.核桃青皮在體外清除自由基的活性研究[J].華西藥學雜志,2011,26(1):32 -34.
[11] Loor G,Kondapalli J,Schriewer JM,et al.Menadione triggers cell death through ROS-dependent mechanisms involving PARP activation without requiring apoptosis[J].Free Radic BiolMed,2010,49(12):1925-1936.
[12] Sed lic F,Sepac A,Pravdic D,et al.Mitochondrial depolarization underlies delay in permeability transition by pre-conditioning with isoflurane:roles of ROS and Ca2+[J].Am Physiol Gell Physiol,2010,299(2):C506-515.
[13] Oliveira I,Sousa A,Ferreira IC,etal.Total phenols,antioxidant potential and antimicrobial activity of walnut(Juglans regia L.)green husks[J].Food Ghem Toxicol,2008,46(7):2326-2331.
[14] 趙國建,席東亮,段江蓮.核桃青皮多酚萃取工藝優化[J].陜西農業科學,2013,59(4):3-8.
[15] 劉樹森.線粒體呼吸鏈與活性氧[J].生命科學,2008,20(4):519-527.
[16] 丁宏娟,何建成,王文武.滌痰湯對帕金森病大鼠行為學和氧化應激反應的影響[J].上海中醫藥雜志,2009,43(3):63-65.
[17] 吳 眉,高 穎,唐苾芯,等.“吳氏消瘤散”抗S180實體瘤及免疫調節作用的實驗研究[J].上海中醫藥雜志,2014,48(3):66-69.
[18] 岳雅麗,郭 妍,王俊宏,等.老年高血壓患者血管硬化與非酶糖基化及氧化應激的相關性研究[J].實用老年醫學,2014,28(1):33-36.
[19] 張 季,嚴春臨,張丹參,等.蒺藜皂苷對老年癡呆小鼠腦組織中H2O2、CAT、GSH-Px含量及海馬超微結構的影響[J].中國老年學雜志,2011,31(6):2258-2260.
[20] 臧 琳,郭景茹,郭 爽,等.H2O2誘導BRL-3A細胞模擬大鼠肝臟氧化應激損傷的研究[J].中國獸醫學報,2013,33(3):445-449.
[21] 張 瑩,沐曉芹,梁海海,等.白藜蘆醇對H2O2所致乳鼠心肌細胞損傷的保護機制研究[J].哈爾濱醫科大學學報,2013,47(1):43-45.
[22] Liu X,Fang L,Zhou Y,et al.Comparison of UV/PDS and UV/H2O2processes for the degradation of atenolol in water[J].JEnviron Sci(Ghina),2013,25(8):1519-1528.
R285.5
B
1001-1528(2015)11-2511-04
10.3969/j.issn.1001-1528.2015.11.039
2014-10-15
吉林省科技廳科技發展項目 (20130101157JC);吉林省教育廳 “十二五”科學技術研究項目 (2012-334);吉林省教育廳“十二五”科學技術研究項目 (2014-363)
趙行宇(1970—),男,碩士,副教授,研究方向為抗氧化應激中藥篩選。Tel:13844239332,E-mail:jlmmczw@163.com