(中國藥科大學生命科學與技術學院,江蘇南京210009)
α-淀粉酶(α-1,4-葡聚糖-4-葡聚糖水解酶,EC3.2.1.1)屬于內切酶,它能作用于淀粉分子內部的α-1,4糖苷鍵,將其水解成糊精、麥芽糖、低聚糖和葡萄糖等[1]。α-淀粉酶作為酶制劑的重要組成部分,占酶制劑市場約25%的份額,廣泛應用于食品、發酵、紡織、造紙、制藥以及臨床醫學等多個領域[2]。伴隨國內外淀粉加工業的不斷發展,α-淀粉酶的應用范圍還在不斷擴大[2]。因此,篩選高產α-淀粉酶菌株已成為酶制劑研究領域的重要方向。
野生菌株因產率低、性能差而不能直接用于工業化生產,需要通過菌種誘變選育出高產優良菌株[3-7]。不同的誘變方法對菌株會產生不同的突變效應,如紫外誘變可使DNA 形成嘧啶二聚體,氯化鋰誘變可使AT-GC堿基對發生轉換或導致堿基缺失[8-9]。單一誘變方法雖可得到高產菌侏,但幾率偏低;復合誘變具有協同效應,比單一誘變效果好[10]。鑒于此,作者在此采用紫外-氯化鋰對枯草芽孢桿菌BL01 進行復合誘變,以期得到高產α-淀粉酶菌株,對誘變條件進行了優化,并對高產菌株的遺傳穩定性進行了研究。
枯草芽孢桿菌BL01,自行篩選保藏。
LB培養基:蛋白胨10g·L-1,酵母提取物5g·L-1,氯化鈉10g·L-1,pH 值7.0,121 ℃滅菌20 min。固體培養基需加入20g·L-1的瓊脂;篩選培養基需加入1%可溶性淀粉;氯化鋰平板培養基需加入一定濃度的氯化鋰。
發酵培養基:可溶性淀粉60g·L-1,豆餅粉30g·L-1,(NH4)2SO45g·L-1,Na2HPO4·12H2O 5g·L-1,MgSO4·7H2O 0.1g·L-1,NaCl 0.1g·L-1,pH 值7.0,121 ℃滅菌20min。
斜面/平板培養:37 ℃培養箱中培養1~2d。
種子液培養:挑單菌落接種到30 mL LB 培養基中,于37 ℃、200r·min-1搖床培養12h。
發酵液培養:搖瓶裝量50 mL·(500 mL)-1,接種量2%,于37 ℃、200r·min-1搖床培養96h。
1.3.1 菌懸液的制備
從平板上挑取單菌落于LB液體培養基中,37℃、200r·min-1搖床培養12h,用生理鹽水稀釋至10-5數量級,即得菌懸液。
1.3.2 紫外誘變
取5mL菌懸液于直徑為9cm 的無菌培養皿中,待用。打開紫外燈,預熱20min,待光波穩定后,將無菌培養皿放置在距紫外燈垂直距離20cm 處,開啟磁力攪拌,分別照射30s、60s、90s、120s、150s、180s,于37 ℃避光培養。以未經處理的菌懸液為對照組。挑取20個單菌落進行搖瓶培養,按式(1)、(2)計算致死率與正突變率。

1.3.3 氯化鋰誘變
取0.1mL菌懸液均勻涂布于含濃度梯度為0%、0.3%、0.6%、0.9%、1.2%、1.5%的氯化鋰平板培養基上,37 ℃恒溫培養20h。其中0%為對照組。挑取20個單菌落進行搖瓶培養,按式(1)、(2)計算致死率與正突變率。
1.3.4 紫外-氯化鋰復合誘變
將菌懸液先經紫外照射一段時間后,再涂布在含一定濃度的氯化鋰平板培養基上,37 ℃避光培養。挑取30個單菌落進行搖瓶培養,按式(1)、(2)計算致死率與正突變率。
1.4.1 初篩
將誘變后的菌液涂布于篩選培養基上培養24h,測量透明圈直徑與菌落直徑,并計算其比值(HC 值),將HC值較大的單菌落保存于斜面培養基,以備復篩。
1.4.2 復篩
將初篩獲得的菌株先進行種子液培養,再進行發酵液培養,取上清,按QB/T 1803-93方法測定α-淀粉酶酶活。
酶活定義:將1mL液體酶在pH 值為6.0、60 ℃下,1h液化1g可溶性淀粉定義為一個酶活單位(U·mL-1)。
將出發菌株與復篩得到的高產菌株各連續傳代5代,每代重復3次,接入發酵培養基中,37 ℃、200r·min-1搖瓶培養96h后,離心,取上清,測定α-淀粉酶酶活,考察高產菌株傳代后產α-淀粉酶能力的穩定性。
由圖1可看出:隨著紫外照射時間的延長,致死率逐漸升高、正突變率先升高后略微降低;當紫外照射時間為150s時,致死率達到90.4%,正突變率達到最高值25.0%;酶活提高10%以上的菌株有4株。因此,選擇最佳紫外照射時間為150s較為適宜。

圖1 紫外誘變的致死率與正突變率Fig.1 Death rate and positive mutation rate of UV mutation

圖2 氯化鋰誘變的致死率與正突變率Fig.2 Death rate and positive mutation rate of LiCl mutation
由圖2可看出:隨著氯化鋰濃度的增大,致死率逐漸升高、正突變率逐漸降低;當氯化鋰濃度為0.3%時,致死率為49.2%,正突變率最大,為19.4%;酶活提高10%以上的菌株有3株。因此,選擇氯化鋰濃度為0.3%較為適宜。
在紫外照射時間為150s、氯化鋰濃度為0.3%的條件下進行紫外-氯化鋰復合誘變。
結果發現,致死率可達到96.3%,正突變率也達到了37.1%,比單一誘變效果要好。
誘變后的單菌落在篩選平板上培養后形成淀粉圈,挑取10個單菌落進行搖瓶發酵,研究HC 值與酶活的關系,結果如表1所示。
由表1可知,HC 值的大小在一定程度上反映了菌株產α-淀粉酶的能力,HC值越大,產酶能力越強。
以枯草芽孢桿菌BL01 為出發菌株,經過多次復合誘變,初篩出HC 值較大的100 株突變株,再經復篩、發酵后測定酶活。結果發現,有58株突變菌的酶活比原始菌株提高,將其中一株酶活高且產酶穩定的菌株命名為BL01-13。該高產菌株誘變后酶活達到357.70U·mL-1,是出發菌株的2.02倍。

表1 HC值與酶活的關系Tab .1 The relationship between HC value and enzyme activity

表2 高產菌株的遺傳穩定性(n=3)Tab.2 Genetic stability of high-producing strain(n=3)
由表2可知,高產菌株具有良好的遺傳穩定性,傳代5代后,酶活穩定在(357.73±4.06)U·mL-1范圍內。
采用紫外-氯化鋰對產α-淀粉酶菌株枯草芽孢桿菌BL01進行復合誘變,在紫外照射時間為150s、氯化鋰濃度為0.3%的最佳誘變條件下,經過淀粉圈初篩、發酵復篩,得到一株高產菌BL01-13,酶活達到357.70U·mL-1,是出發菌株的2.02倍,該菌遺傳穩定性良好,為淀粉酶產品的開發與應用奠定了基礎。
[1]de SOUZA P M,MAGALHAES P O.Application of microbialαamylase in industry-A review[J].Brazilian Journal of Microbiology,2010,41(4):850-861.
[2]van der MAAREL M J,van der VEEB B,UITDEHAAG J C,et al.Properties and applications of starch-converting enzymes of theα-amylase family[J].J Biotechnol,2002,94(2):137-155.
[3]汪杏莉,李宗偉,陳林海,等.工業微生物物理誘變育種技術的新進展[J].生物技術通報,2007,(2):114-118.
[4]張衛兵,梁琪,喬海軍,等.紫外線和硫酸二乙酯誘變高產凝乳酶地衣芽孢桿菌的研究[J].食品工業科技,2012,33(5):174-176.
[5]FIEDUREK J,GROMADA A.Screening and mutagenesis of molds for improvement of the simultaneous production of catalase and glucose oxidase[J].Enzyme and Microbial Technology,1997,20(5):344-347.
[6]王雅君,陳力力,廖杰瓊,等.微生物物理誘變育種方法的研究進展[J].農產品加工:學刊(中),2013,(2):25-31.
[7]李慧玲,劉祖艷,趙敏.產β-甘露聚糖酶菌株的物理和化學誘變育種研究[J].安徽農業科學,2014,42(18):5741,5750.
[8]謝鳳行,趙玉潔,周可,等.產胞外淀粉酶枯草芽孢桿菌的分離篩選及其紫外誘變育種[J].華北農學報,2009,24(3):78-82.
[9]楊森,王金水,楊小佳,等.枯草芽孢桿菌誘變育種研究進展[J].農產品加工:創新版(中),2014,(3):76-78.
[10]關亞鵬,婁忻,張莉,等.復合誘變選育高產富硒酵母[J].化學與生物工程,2014,31(9):46-48.