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槲皮素對NAFLD大鼠血清SOD活力和MDA含量的影響

2015-12-29 08:59:02李秀麗劉志杰劉青妍周家樂李林曄吳傳昊趙燕星鄭曉敏
赤峰學院學報·自然科學版 2015年16期
關鍵詞:氧化應激劑量血清

李秀麗,白 音,劉志杰,劉青妍,周家樂,李林曄,吳傳昊,趙燕星,鄭曉敏

(赤峰學院 醫學院,內蒙古 赤峰 024000)

非酒精性脂肪性肝?。╪onalcoholic fatty liver diseases,NAFLD)是一種進展性疾病.發病機制不清,1998年Day和James提出的“二次打擊”學說現已成為解釋NAFLD發生機制的主要理論.“第一次打擊”主要是指胰島素抵抗(IR)和脂代謝紊亂所導致的肝細胞脂質沉積,形成單純性脂肪肝,而在此基礎上發生的氧化應激、脂質過氧化損傷成為NAFLD發病中的“第二次打擊”[1],這些因素可以使脂肪變性后的肝細胞更易受到損傷進一步出現炎癥,而發展成為非酒精性脂肪性肝炎.筆者在前期研究中闡述了槲皮素(Quercetin)通過影響IR和調節脂質代謝對改善脂質堆積細胞模型的改善作用[2-3],本文在此基礎上,進一步研究槲皮素是否通過影響氧化應激改善NAFLD.

1 材料與方法

1.1 動物

清潔級雄性SD大鼠50只,體重180g~200g,由北京維通利華實驗動物技術有限公司提供,許可證號:SCXK2012-0001.動物飼養于赤峰學院醫學院藥理學教研室動物室,4-5只分籠飼養,自由攝食進水.溫度23℃-24℃,濕度40%-45%,12小時明暗交替.

1.2 試劑與藥物

甘油三酯(TG)、總膽固醇(TC)、低密度脂蛋白膽固醇(LDL-c)、高密度脂蛋白膽固醇(HLD-c)、丙氨酸氨基轉移酶(ALT)、天冬氨酸氨基轉移酶(AST)、丙二醛(MDA)、超氧化物歧化酶(SOD)試劑盒購自南京建成生物工程研究所.槲皮素購自鄭州荔諾生物科技有限公司.

1.3 方法

SD大鼠50只,4-5只分籠飼養,經適應性喂養1周后,隨機分為 5組:正常對照組(Con)、模型組(Model)、槲皮素低劑量組 (QuL,100mg/kg)、槲皮素中劑量組(QuM,200mg/kg)、槲皮素高劑量組(QuH,300mg/kg),每組為 10只.Model、QuL、QuM、QuH組各給予高脂飼料(2g膽固醇、10g豬油、0.3g膽酸鈉、87.7g普通飼料),建立NAFLD模型,Con組給予普通飼料喂養.各組實驗動物皆自由飲水.第8周末從普通飼料組和高脂組各取出一只做病理驗證是否成膜.9周開始QuL組、QuM組、QuH組每日上午8:30-9:00定時灌胃,分別給予槲皮素100mg/kg、200mg/kg、300mg/kg, Con組和mode兩組給予蒸餾水4mg/kg,每日一次.槲皮素治療4周,所有大鼠隔夜禁食12小時后,麻醉后解剖,自腹主動脈取血,離心取血清備用.迅速取出肝組織,用濾紙吸干表面,稱重,并取肝右葉組織外側端一塊投入10%的多聚甲醛中固定以利于病理檢查.其余肝組織投于液氮中速凍后,置于-80℃冰箱備用.

1.4 觀測項目與方法

(1)觀察SD大鼠的精神與食欲狀態、毛發和活動情況.在全部實驗完成后測體重和肝濕重,計算肝指數(肝指數=肝濕重 /體重×100%);(2) 血清 ALT、AST、TG、TC,LDL-C、HDL-C指標的測定,采用全自動生化儀檢測.(3)肝組織SOD,MDA含量的測定.稱取大鼠肝組織200mg,加冰生理鹽水2mL后制成10%勻漿,4℃3500r·min離心15min后取上清液,SOD測定采用黃嘌呤氧化酶法,MDA采用硫代巴比妥酸比色分析法,操作步驟按試劑盒說明書.

1.5 統計學處理

2 結果

2.1 一般結果

各組大鼠均發育良好.正常組大鼠精神狀態、進食與生長正常,活動度好,毛色潤澤,皮毛整潔,無死亡.造模期間,高脂組進食正常,毛色偏黃暗淡,體重增加明顯,模型組體形增長較給藥組快,各組活動度較好,造模期間各組大鼠均未出現腹瀉及死亡(表1).

2.2 肝臟病理染色

第八周末取高脂飼料組和普通飼料組肝臟病理標本,經HE染色顯示,形成NAFLD模型.藥物干預4周結果,HE染色觀察,Con組肝細胞排列整齊,肝小葉規則,細胞呈多邊形,中央有大而圓的核,細胞質均勻,肝細胞內無脂滴沉積.Model組肝細胞腫脹,胞質中出現大小不均的脂滴空泡,以大泡性脂肪滴為主,核居邊,細胞界限不清.QueL組脂滴空泡有所減少,QueM、QueH劑量組脂滴空泡顯著下降(圖1).

圖1 肝臟的HE染色

2.3 槲皮素對大鼠肝臟指數的影響

與Con組比較,Model組大鼠體重增加明顯(p<0.05),肝濕重和肝指數均顯著高于Con組(P<0.05).與Model組相比,喂養4周末時QuL、QuM、QuH組大鼠體重均明顯下降(中、高劑量組P<0.05,低劑量組無統計學意義),肝濕重明顯降低(中劑量組P<0.05,高劑量組P<0.01,低劑量組無統計學意義),高劑量組大鼠肝指數明顯降低(P<0.05),而低、中劑量組大鼠肝指數無統計學意義(P>0.05)見表1.

表1 槲皮素對各組大鼠體重、肝濕重及肝指數(±s)的影響

表1 槲皮素對各組大鼠體重、肝濕重及肝指數(±s)的影響

與 Con 比較,*P<0.05, **P<0.01; 與 Model組比較,#P<0.05,##P<0.01

組別 n 體重/g 肝臟濕重/g 肝指數/%Con 9 449.40±42.37 11.75±0.44 2.44±0.06 Model 9 612.88±46.90*19.77±0.43*3.82±0.06 QuH 10 539.64±39.78##13.23±0.65##3.24±0.43#QuM 10 552.23±48.43#16.54±0.98#3.68±0.17#QuL 10 580.34±37.78 15.11±1.21 3.26±0.13

2.4 槲皮素對血清、肝組織生化指標的影響

2.4.1 槲皮素對血脂的影響:給槲皮素4周后QuH組、QuM組和QuL組大鼠血清TG、TC與Model組比較均有下降(P<0.05),其中QuH組TG顯著下降 (為P<0.01),QuM、QuH組的LDL-c組有下降趨勢(P>0.05),而對于HDL-C的測定QuH、QuM、QuL組與Model組比較有升高趨勢,但沒有差異(P>0.05),詳見表2.通過對肝組織中TG、TC的測定,Model組與Con組比較有顯著性差異(P<0.05).給藥組三個劑量組與模型組比較都有所降低(P<0.05),其中高劑量組降低膽固醇比較明顯,具有非常顯著差異(P<0.01),詳見表 3.

表2 槲皮素對各組大鼠血脂的影響(±s)

表2 槲皮素對各組大鼠血脂的影響(±s)

與 Con 比較,*P<0.05;與 Model組比較,#P<0.05,##P<0.01

組別 n TG/mmol.L-1 TC/mmol.L-1 LDL-c/mmol.L-1 HDL-c/mmol.L-1 Con 9 1.47±0.25 2.86±0.16 0.72±0.27 0.88±1.03 Model 9 3.76±0.14* 7.92±1.98* 5.67±0.09* 0.46±0.09*QuH 10 2.01±0.18## 6.32±2.28# 4.79±0.08 0.44±0.15 QuM 10 2.78±0.21# 5.83±1.30# 4.66±1.25 058±0.12 QuL 10 2.89±0.16# 5.86±1.821# 5.48±1.17 0.67±0.27

表3 槲皮素對各組大鼠肝組織TG、TC含量和脂質氧化指標的影響(±s)

表3 槲皮素對各組大鼠肝組織TG、TC含量和脂質氧化指標的影響(±s)

與 Con 比較,*P<0.05;與 Model組比較,#P<0.05,##P<0.01

組別 n TG/mg.g-1 TC/mg.g-1 SOD(U.mg-1) MDA(nmmol.ml-1)Con 9 1.50±0.04 2.9±0.24 187.21±24.30 1.54±2.35 Model 9 7.76±0.10* 5.65±0.21* 111.87±4.23* 3.26±5.49*QuH 10 3.36±0.16# 2.78±024## 148.89±5.58# 1.29±1.87##QuM 10 3.99±0.29# 3.46±0.33# 142.34±4.78# 2.31±1.67##QuL 10 4.77±0.07# 3.58±0.20# 128.89±2.89 2.97±1.98

2.4.2 槲皮素對肝功能的影響:給藥4周后,與Model組比較給藥組大鼠血清ALT降低(QuL組和QuH組P<0.05,而QuM組無統計學意義);QuM組和QuH組大鼠血清AST較Model組降低 (P<0.05,P<0.01),而QuL組無統計學意義(表 4).

2.4.3 槲皮素對脂質氧化的影響:與Con組比較,Model組SOD活性顯著降低(P<0.05),MDA顯著升高(P<0.05).Model組QuM和QuH組大鼠的SOD明顯提高(P<0.05),QuL組無意義.QuM、QuH組大鼠MDA與Model組相比均降低了,呈現非常顯著性差異(P<0.01),QuL組MDA無顯著性意義(表 3).

表4 槲皮素對各組大鼠肝功能的影響(±s)

表4 槲皮素對各組大鼠肝功能的影響(±s)

與 Con 比較,*P<0.05;與 Model組比較,#P<0.05,##P<0.01

組別 n ALT/U.L-1 AST/U.L-1 Con 9 34.87±3.89 169.98±12.32 Model 9 66.56±6.23** 253.54±17.98*QuH 10 41.90±8.57# 190.23±17.45#QuM 10 67.90±10.97 201.87±14.45#QuL 10 48.26±8.11# 248.21±9.12

3 討論

隨著糖尿病和肥胖在世界范圍的流行,與之密切相關的NAFLD發病率也在不斷提高,正日益成為公共健康問題.盡管目前學者們對NAFLD的病理生理學機制進行了大量研究,但其明確的發病機制和治療藥物現仍然不明確.國內外的學者針對其治療藥物和發病機制進行了廣泛的研究.在本研究中,利用高脂飲食誘導形成的非酒精性單純性脂肪肝模型,槲皮素組與模型組比較能改善高脂飲食誘導的SD大鼠模型的脂質堆積,降低TG和TC水平,降低ATL、AST.其作用機制如何?本研究從氧化應激和抗氧化的兩個關鍵因子入手.

近年來,有關氧化應激發病機制和抗氧化劑在NAFLD發病進程中的防治作用日益引起廣泛關注[4].氧化應激、脂質過氧化被認為可能是導致NAFLD并促其發展的最主要因素之一.在病理情況下活性氧(reactive oxygen soecies,ROS)的產生增多,超過抗氧化系統的清除能力出現相對或絕對過剩,其攻擊臨近組織、細胞產生氧化應激.氧化應激和ROS形成的主要部位,也是ROS打擊的首要靶點是肝實質細胞線粒體.線粒體是肝細胞最重要的細胞器之一,是肝臟脂肪酸進行β氧化和三羧酸循環、ATP、ROS形成的主要場所.盡管線粒體能夠修復ROS導致的線粒體DNA(mtDNA)的損傷,但由于mtDNA靠近細胞內膜(ROS的產生部位)并缺乏組蛋白和非組蛋白的保護,修復程序不完整,易受細胞內氧自由基侵襲,導致mtDNA堿基對的缺失突變,從而影響肝細胞脂肪代謝[5-6].

在NAFLD時,肝臟脂質沉積使血清游離脂肪酸增多,肝臟攝取更多的游離脂肪酸增加了線粒體β氧化代償性速度,進而使得ROS產生增加,一方面導致mtDNA損傷加劇,另一方面ROS損傷線粒體呼吸鏈,阻斷呼吸鏈的任何部位又可導致ROS的增加,增加的ROS進一步增加氧化性脂質堆積,引起更多的脂質過氧化,抑制呼吸鏈的電子傳遞,形成一個惡性循環[7].

在氧化應激過程中的丙二醛(MDA)是ROS與細胞膜磷脂的不飽和脂肪酸反應形成的物質,是評價人體氧化應激的一個非常重要的指標.機體存在兩類抗氧化系統,其中一類是酶抗氧化系統,包括SOD、過氧化氫酶(CAT)、谷胱甘肽過氧化物酶(GSH-Px)等.抗氧化物質的消耗形成另一個惡性循環,脂肪堆積產生的的ROS等物質能消耗SOD等抗氧化物質,抗氧化物質的減少更易導致ROS對線粒體的損害效應.因此SOD的檢測和評價也作為人體氧化應激和抗氧化最常用的另一指標.本實驗通過檢測MDA和SOD可知機體氧化應激和抗氧化物質的程度.實驗結果顯示,Model組大鼠血清中SOD活力與Con組大鼠相比明顯降低(P<0.05),MDA含量升高顯著(P<0.05),提示 NAFLD的發生與氧應激和抗氧化物質的損傷的程度有關.給藥四周后,槲皮素中、高劑量與模型組比較能明顯提高SOD(P<0.05),降低MDA(P<0.05),說明槲皮素起到了明顯的抗氧化作用,并且槲皮素高劑量組大鼠肝臟脂肪變化明顯較空白模型組輕,推測槲皮素治療NAFLD的重要機制可能是自身作為一種抗氧化劑,具有明顯的抗氧化作用,抑制或防止脂質過氧化,減輕肝臟脂肪沉積.至于槲皮素治療NAFLD的其他機制還有待進一步研究.

〔1〕李秀麗,唐曉光,高麗楓,等.蓽茇-13味治療大鼠非酒精性脂肪肝病的實驗研究[J].赤峰學院學報(自然科學版),2011,27(1):35-37.

〔2〕李秀麗,鄒繼紅,劉青妍,等.槲皮素改善肝細胞脂質堆積作用的實驗研究[J].時珍國醫國藥,2011,22(10):2384~2386.

〔3〕XIULI LI, RONG WANG, NA ZHOU,et,al.Quercetin improves insulin resistance and hepatic lipid accumulation in vitro in a NAFLD cell model.BIOMEDICAL REPORTS 1:71-76,2013.

〔4〕董婷,盧勝家,劉璇,等.氧化應激在非酒精性脂肪性肝炎發病機制中的作用[J].肝臟,2012,17(8):602-604.

〔5〕楊麗麗,柳濤,王森,等.氧化應激與非酒精性脂肪性肝病研究進展[J].世界華人消化雜志,2009,17(9):896-900.

〔6〕池肇春,周長宏,史光軍,等.非酒精性脂肪性肝病[M].北京:軍事醫學科學出版社,2009.80.

〔7〕Michikawa Y,Mazzucchelli F,Bresolin N,et al.Agingdependent large accumulation of point mutations in the human mtDNA control region for replication[J].Science,1999,286:774~779.

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