不同誘變方法對TL-15028菌株產泰樂菌素相關性能的影響

李春玲，丁亞蓮，謝文靜，牛春，張萍

(寧夏泰瑞制藥股份有限公司，銀川，750101)

不同誘變方法對TL-15028菌株產泰樂菌素相關性能的影響

李春玲，丁亞蓮，謝文靜，牛春，張萍*

(寧夏泰瑞制藥股份有限公司，銀川，750101)

為了選育出泰樂菌素高產菌株，以弗氏鏈霉菌 (Streptomycesfradiae) TL-15028菌株作為出發菌株，利用化學誘變、物理誘變以及復合誘變的方法對菌株進行誘變處理，比較不同誘變方法的誘變效果，通過誘變篩選出1株遺傳穩定性好、且具有泰樂菌素和豆油抗性的菌株TLEU-1503，其發酵效價比出發菌株提高了36.5%，達到14124 μg/mL，對泰樂菌素高效生產、品質提升具有重要意義。

泰樂菌素；高產菌株；復合誘變；選育

泰樂菌素(Tylosin)是一種16元大環內酯類禽畜專用抗生素，主要由弗氏鏈霉菌(Streptomycesfradiae)產生，可有效抑制革蘭氏陽性菌、某些革蘭氏陰性球菌、支原體、分枝桿菌、螺旋體及原蟲等微生物的生長，對豬流行性肺炎、雞敗血癥等多種常見疾病有著獨特的療效[1-3]。同時，泰樂菌素還可以促進禽畜生長，提高飼料利用率，縮短飼養周期，提高經濟效益[4]。泰樂菌素高效、低殘留、不易產生耐藥性，被廣泛用作獸藥和飼料添加劑，也是國家規劃重點發展的獸藥產品[5-7]。但是，目前國內泰樂菌素基礎與應用研究方面較弱，特別是生產菌種的效價遠不及國外水平，嚴重阻礙了泰樂菌素產量和品質的提升。開展泰樂菌素高產菌株的選育是提高泰樂菌素產量的關鍵，因此，本研究利用化學誘變、物理誘變及兩者結合的方法對菌株進行誘變處理，定向選育出具有泰樂菌素、豆油抗性的高產穩定性菌株，為進一步提高泰樂菌素的產量和品質奠定基礎。

1 材料和方法

1.1 材料 出發菌為弗氏鏈霉菌(Streptomycesfradiae)TL-15028菌株，由寧夏泰瑞制藥有限公司技術中心保存。所用試劑均為國產分析純，恒溫大幅振蕩搖床(HQL150C，武漢科學儀器廠)、恒溫培養箱(LHP160，江蘇杰瑞爾電器有限公司)、分光光度計(BECKMANDU-600)、高效液相色譜系統(Watesr)。

1.2 方法

1.2.1 誘變前準備

1.2.1.1 培養基配制 試管斜面與平皿培養基: 含玉米淀粉，NH4NO3，K2HPO4，MgSO4·7H2O，NaCl，FeSO4·7H2O，瓊脂。種子搖瓶培養基：含豆餅粉，精油，酵母粉，玉米漿，重質CaCO3。發酵搖瓶培養基：含魚粉，玉米淀粉，精油，甜菜堿鹽酸鹽，K2HPO4，NiSO4·6H2O，MgSO4·7H2O，輕質CaCO3，KCl，NaCl。pH調至7.2，121℃滅菌15 min，備用。

1.2.1.2 培養條件 在黑暗、溫度29 ℃、相對濕度40%條件下培養，試管斜面培養9 d，平皿培養18 d，種子搖瓶轉速220 r/min、培養48 h，發酵搖瓶轉速220 r/min、培養6 d。

1.2.1.3 菌種復壯 取保藏的斜面試管，倒入6 mL無菌生理鹽水，用接種環刮取培養物表面的孢子，使其懸浮，再用脫脂棉過濾，將濾液倒入離心管中，5000 r/min離心2 min，棄上清液，然后加入5 mL生理鹽水，用移液器反復吸打沉淀物，倒入三角錐形瓶(型號為100 mL，瓶中裝有15粒玻璃珠) 中，再用5 mL生理鹽水沖洗離心管2次，一并倒入錐形瓶，29 ℃，220 r/min震蕩15 min，過濾得到孢子懸浮液。將孢子懸浮液用稀釋至1×10-4，每個平板加入200 μL孢子懸浮液，涂布均勻，培養后挑取單菌落，先進行抑菌圈初篩，然后搖瓶復篩。

1.2.2 誘變方法

1.2.2.1 紫外(UV)誘變處理 參照張明明等[8]的方法，并做了一定改進。誘變處理時間分別為0 s(對照)、15 s、30 s、60 s、90 s。誘變結束后，在黑暗中放置1 h，吸取孢子懸浮液，梯度稀釋，涂布平板，在29 ℃培養箱中倒置培養18 d。

1.2.2.2 甲基磺酸乙酯(EMS)誘變處理 參照徐紅梅等[9]的方法，并做了一定改進。誘變處理時間分別為1、2、3、4、5 h，吸取誘變后的孢子懸浮液梯度稀釋，涂布平板，于29 ℃培養箱倒置培養18 d。

1.2.2.3 LiCl+UV復合誘變處理 吸取5 mL孢子懸浮液置于50 mL三角瓶內，加入1%的 LiCl，放置在搖床間振蕩4 h，然后經UV誘變處理60 s，梯度稀釋，涂布平板，于29 ℃培養箱倒置培養18 d。

1.2.2.4 EMS+UV復合誘變處理 吸取5 mL孢子懸浮液于50 mL三角瓶中，加入15 μL EMS，放置于29 ℃，220 r/min搖床間震蕩4 h，然后經UV誘變處理60 s，梯度稀釋，涂布平板，于29 ℃培養箱倒置培養18 d。

1.2.3 性能檢測

1.2.3.1 泰樂菌素效價測定 參照Choi等[10]的方法，并做了一定改進。采用HPLC法，色譜柱為ODS柱，流動相為0.85 mol /L氯化鈉、40%乙腈溶液，用l mol/L的鹽酸調pH至2.5，流速為1 mL/min，檢測波長為290 nm；待測效價=(標準品的單位×待測樣品的峰面積×待測樣品的稀釋倍數)/標準品的峰面積。

1.2.3.2 致死率和正突變率 每個處理30皿，重復3次，以未做誘變處理的孢子懸浮液作為對照，致死率=(對照處理平板菌落-誘變處理平板菌落)/對照處理平板菌落×100%。正突變率=誘變處理后效價高于對照5%的菌株數/誘變處理后菌株總數×100%。1.2.3.3 菌株遺傳穩定性測定 將高產菌株進行斜面保存，并連續傳代 3次，采用搖瓶發酵法測定每一代菌株泰樂菌素效價，分析遺傳穩定性。

1.2.3.4 菌株泰樂菌素抗性的檢測 孢子懸液稀釋后涂布于含有15000 μg/mL泰樂菌素的平板上，于29 ℃培養箱倒置培養18 d，檢測菌株的泰樂菌素抗性。

1.2.3.5 菌株豆油抗性的檢測 將孢子懸液稀釋后涂布于含有4%豆油的平板上，以不含豆油的平板為對照，于29 ℃培養箱倒置培養18 d，檢測菌株的豆油抗性。發酵液中豆油殘量的測定具體參照徐紅梅[9]的方法進行。

2 結果與分析

2.1 不同誘變方法誘變影響的比較 原始菌株復壯培養后，選取編號TL-15028的菌株為原始出發菌株，分別采用UV、EMS、LiCl+UV、EMS+UV誘變方法進行誘變處理。結果發現，采用UV誘變，隨著處理時間增加，菌體致死率、正突變率顯著升高，90 s的致死率最高，達到89.1%；60 s的致死率為68.3%，正突變率與90 s無顯著差異，且效價最高(表1)。采用UV處理60 s，利用瓊脂柱法進行初篩，得到11株正突變株，通過發酵搖瓶法復篩后，得到2株編號為TLU-1501、TLU-1502的菌株，其效價分別為12854、12973 μg/mL。

采用EMS誘變，隨著處理時間增加，菌體致死率、正突變率顯著升高，5 h的致死率最高，達到93.7%；4 h的致死率為66.1%，正突變率與5 h無顯著差異，且效價最高(表1)。采用EMS處理4 h，得到1株編號為TLE-1501的優良菌株，其發酵效價為12767 μg/mL。

采用LiCl+UV復合誘變，得到23株正突變株，復篩后獲得2株編號為TLLU-1501、TLLU-1502的優良菌株，其發酵效價分別為13162、12236 μg/mL。采用EMS+UV復合誘變，得到34株正突變株，復篩后獲得3株編號為TLEU-1501、TLEU-1502、TLEU-1503的優良菌株，其發酵效價分別為13427、l3873、14124 μg/mL。

表1 不同誘變方法誘變影響的比較

同一誘變方法中同列數據上標字母表示差異顯著(P<0.05)。

2.2 不同誘變方法所選優良菌株遺傳穩定性檢測 對不同誘變方法獲得優良菌種進行進一步復篩，

測定其遺傳穩定性，結果發現，菌株TLU-1502、TLLU-1502、TLEU-1503遺傳穩定性好(表2)。

表2 優良菌種遺傳穩定性分析

2.3 優良菌株泰樂菌素抗性檢測 將菌株TLU-1502、TLLU-1502、TLEU-1503的菌株孢子懸液稀釋為1×10-4，然后分別涂布于含有15000 μg/mL泰樂菌素的培養基平板上，培養后，觀察菌落的生長情況，結果發現，TLU-1502和TLEU-1503菌株的生長情況好，而TLLU-1502生長情況一般(表3)。結果表明，TLLU-1502、TLEU-1503具有較好的泰樂菌素抗性。

表3 泰樂菌素對菌株生長的影響

+++表示菌落生長好，++表示菌落生長一般。

2.4 優良菌株豆油抗性檢測 將菌株TLU-1502、TLLU-1502、TLEU-1503的菌株孢子懸液稀釋為1×10-4，然后分別涂布于含有4.0%豆油的平板上，以不含豆油的平板為對照。培養后，觀察菌落的生長情況，結果發現，含豆油的培養基上三株菌種的菌落比不含豆油的培養基上的菌落明顯大，且未見孢子(表4)。結果表明，這3個菌株均具有較好的豆油抗性。

表4 豆油對菌株生長的影響

2.5 優良菌株發酵組分的分析 將菌株選育出的優良菌株TLLU-1502、TLEU-1503以及原始菌株TL-15028進行搖瓶發酵(培養液中豆油含量40 g/L)，發酵后，分別測定它們生產泰樂菌素4種主要組分的效價以及發酵液中的殘油量，結果發現，TLEU-1503菌種生產的泰樂菌素中A組分明顯高于對照，而C組分低于對照(表5)。TLEU-1503發酵液中的殘油量最低，說明TLEU-1503對豆油的利用效率最高(表6)。

表5 發酵液中泰樂菌素組分的比較

表6 發酵液中殘油量的比較

3 討 論

采用UV和EMS單一誘變，處理時間是關鍵，時間過短(處理時間30 s)，誘變的正突變率較低，時間過長(處理時間90 s)，致死率過高，均不利于后期的篩選。因此，在綜合考慮致死率、正突變率、突變菌株效價的前提下，以60 s作為UV適宜的誘變處理時間。同樣，在EMS誘變處理時，也是綜合考慮上述指標后，以4 h作為適宜的誘變處理時間。UV誘變的機理是使菌體內同鏈DNA形成胸腺嘧啶二聚體，阻止堿基正常配對，進而引起突變，但UV突變易產生光修復。EMS是一種化學誘變劑，可使菌體內DNA的鳥嘌呤烷基化，導致堿基錯配，進而引起突變。采用UV和EMS單一誘變，對弗氏鏈霉菌誘變效果可能有限，往往不及復合誘變[2]。相比單一誘變而言，復合誘變產生的突變更多，正突變率更高，其對應的表型可能更豐富，更容易選育出符合預期的優良菌株。本文所采用的LiCl+UV、EMS+UV兩種復合誘變方法，其誘變效果較單一誘變更佳，其中，EMS+UV誘變效果最佳，這與徐紅梅等[9]的結論一致。同時，本文對誘變得到優良菌株進行了泰樂菌素抗性、豆油抗性的定向篩選，使其更符合實際生產的要求。

相對出發菌株而言，TLEU-1503的發酵組分中泰樂菌素A含量明顯提升，C含量有較大幅度的下降，有利于泰樂菌素品質的提升，這與甘士喜等的研究結論相符[11]。同時，TLEU-1503還具有較好的泰樂菌素抗性和豆油抗性，這樣既可以避免發酵生產過程中不斷積累的泰樂菌素的反饋抑制作用；還可以充分利用發酵液中的豆油，有助于提高生產效率。TLEU-1503發酵組分中泰樂菌素A含量明顯提升，C含量大幅下降，這一現象可能是由兩方面的因素造成的，首先可能是由于TLEU-1503生產泰樂菌素的效率增加了，其次可能是由于催化組分C向組分A轉化的大菌素C甲基轉移酶活性提高了[9,11]。弗氏鏈霉菌發酵生產過程中常以豆油作為碳源，豆油在被利用時，菌體必須具備較高活性的脂肪酶，TLEU-1503具有較高的豆油利用效率，這表明其菌體的脂肪酶活性較高[12]。有關TLEU-1503菌株大菌素C甲基轉移酶活性和脂肪酶活性變化還有待于進一步深入研究。

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(編輯：陳希)

The Effect of Different Induction Mutation Method on Production Performance for Tylosin in TL-15028 Strain

LI Chun-ling, DING Ya-lian, XIE Wen-jing, NIU Chun, ZHANG Ping*

(NingxiaTairuiPharmaceuticalCompanyLimited,Yinchuan750101,China)

In order to screening of high yield strain for tylosin, TL-15028 strain was selected as original strain. The original strain was mutation treated with chemical mutation, physical mutation and compound mutation, respectively. The mutagenic effect of the three methods were compared. The TLEU-1503 strain, which with high inheritance stability and resistance to tylosin and soybean oil, was screened. The potency of TLEU-1503 strain, which was 14124 μg/mL, had improved 36.5% than original strain. The result had great significance for efficient production and quality improvement of tylosin.

tylosin; high yield strain; compound mutation; screening

李春玲，主要從事微生物發酵菌種選育研究。

2016-07-28

A

1002-1280 (2016) 12-0029-05

S852.6