徐露 張太君
摘要:目的 觀察冰片聯合燈盞花素對缺氧/復氧下血腦屏障(BBB)通透性的影響,探討其保護BBB的作用機制。方法 培養原代大鼠腦微血管內皮細胞(BMEC),在缺氧培養箱中缺氧2 h,再復氧24 h,建立單層BMEC體外BBB模型。實驗分為正常對照組、模型組、冰片組、燈盞花素組、冰片+燈盞花素組,各給藥組給予相應藥物干預,檢測各組跨內皮細胞電阻(TEER)值和辣根過氧化物酶(HRP)的通透性,ELISA、Western blot檢測BMEC中緊密連接蛋白ZO-1及Claudin-5蛋白表達。結果 缺氧/復氧損傷導致TEER值降低,HRP通透率增加,ZO-1及Claudin-5蛋白表達降低;冰片聯合燈盞花素可明顯改善上述損傷。結論 冰片聯合燈盞花素對缺氧/復氧下BBB的損傷具有保護作用,其機制可能與上調ZO-1、Claudin-5蛋白表達有關。
關鍵詞:冰片;燈盞花素;血腦屏障;大鼠
DOI:10.3969/j.issn.1005-5304.2016.02.021
中圖分類號:R285.5 文獻標識碼:A 文章編號:1005-5304(2016)02-0076-03
Effects of Borneolum Syntheticum Combined with Breviscapine on Blood-brain Barrier Permeability Induced by Hypoxia/Reoxygenation Injury XU Lu1, ZHANG Tai-jun2 (1. Key Lab of Biochemical and Molecular Pharmacology, Chongqing Medical University, Chongqing 400016, China; 2. Chongqing City Hospital of Traditional Chinese Medicine, Chongqing 400021, China)
Abstract: Objective To observe effects of Borneolum Syntheticum combined with breviscapine on blood-brain barrier (BBB) permeability induced by hypoxia/reoxygenation injury. Methods The BBB model in vitro was established by primarily culturing brain microvascular endothelial cells (BMEC), hypoxia 2 h and reoxygenation 24 h. The experiment was divided into normal control group, model group, Borneolum Syntheticum group, breviscapine group, and Borneolum Syntheticum-breviscapine group. All treatment groups were given relevant medicine. TEER and HRP were detected; ELISA and Western blot was used to detect the expressions of ZO-1 and Claudin-5 in BMEC. Results Hypoxia/reoxygenation induced injury decreased TEER, increased permeability rate of HRP, and decreased the expressions of ZO-1 and Claudin-5; while Borneolum Syntheticum combined with breviscapine could improve damage caused by hypoxia/reoxygenation. Conclusion Borneolum Syntheticum combined with breviscapine shows obvious protective effect on BBB permeability induced by hypoxia/reoxygenation, and the mechanism is involved in the regulation of ZO-1 and Claudin-5 protein expressions.
Key words: Borneolum Syntheticum; breviscapine; blood-brain barrier; rats
血腦屏障(blood-brain barrier,BBB)是人體的一道重要生理屏障,主要作用是阻止某些有害物質進入腦組織,同時促進營養物質進入腦組織,BBB在保持腦組織內環境穩定方面起積極的作用。腦微血管內皮細胞(brain microvascular endothelial cells,BMEC)是BBB的重要組成部分,其特殊的細胞膜轉運系統和細胞間緊密連接,在中樞神經系統血管內外物質交換中起重要的作用。然而當腦組織受到炎癥侵襲、缺
基金項目:重慶市自然科學基金(cstc2012jjA10137)
通訊作者:張太君,E-mail:4345422@qq.com
血、缺氧損傷時,BMEC及其緊密連接的完整性遭到破壞,使BBB通透性增高,大量有害物質進入腦組織后加重腦神經血管損傷。
燈盞花素是臨床常用的腦保護劑,能改善腦微循環、減輕腦組織損傷[1]。但燈盞花素水溶性較高,難以通過BBB,如能在腦組織中提高其藥物濃度,療效會更為明顯。冰片是一種芳香開竅藥物,有研究表明,冰片能抑制P-糖蛋白,協助其他難通過BBB的藥物進入BBB[2]。本實驗將冰片和燈盞花素聯合用藥,觀察其對缺氧/復氧下BBB通透性的影響,探討其保護BBB的作用機制。
1 實驗材料
1.1 動物
SPF級7日齡SD大鼠6只,體質量(30±5)g,雌雄不限,重慶醫科大學實驗動物中心,許可證號XCXK(渝)20090006,封閉且無菌條件下飼養。
1.2 藥物
燈盞花素(20 mg/支),湖南恒生制藥有限公司,純度≥95%,批號20131012,用生理鹽水配制成1 mg/mL溶液備用;天然冰片,河南萬博化工產品有限公司,純度95%,批號A130916,用0.8%羧甲基纖維素鈉配制成0.5 mg/mL混懸液備用。
1.3 主要試劑與儀器
辣根過氧化物酶(HRP),Sigma公司;ELISA試劑盒、Western blot試劑盒、組織蛋白提取試劑、兔抗ZO-1單克隆抗體和小鼠抗Claudin-5單克隆抗體,Santa Cruz公司。Bio-Red酶標儀(美國Gene公司),跨內皮細胞電阻(TEER)儀(美國Millipore公司),凝膠成像系統(美國Thermo公司)。
2 實驗方法
2.1 腦微血管內皮細胞培養
參考文獻[3],將SD大鼠脫頸處死,75%酒精浸泡3~5 min進行消毒。快速取出全腦,置于預冷的D-Hank's液中,去除小腦、間腦、血管、腦膜等,保留皮質。用眼科剪將腦組織剪成約1 mm3碎片,再加0.7 mg/mLⅡ型膠原酶,37 ℃消化1 h,1000×g離心10 min,棄上清液,加20%BSA,1000×g離心20 min,保留底層沉淀。再加1 mg/mL膠原酶/分散酶,37 ℃消化1 h,700×g離心6 min,棄上清液,DMEM液漂洗2次,棄上清液,加DMEM培養液(20%胎牛血清FBS、2 mmol/L L-谷氨酸、30 ?g/mL內皮細胞生長因子、100 ?g/mL肝素鈉)后,接種于75 cm2培養瓶中,2 d后換液,單層BMEC長成后融合70%~80%時傳代。用消化液(0.25%胰酶和0.02%EDTA組成)消化,消化終止后用巴氏管輕輕吹打成細胞懸液,1000×g離心5 min,棄上清液,加DMEM培養液,接種于培養板中。
2.2 分組、造模及給藥
將培養的BMEC密度調至4×105/mL,吸取0.5 mL接種于Transwell板上,多聚酯細胞膜的細胞密度約為2×105/cm2,向Transwell板加1.5 mL完全培養基,37 ℃、5%CO2培養箱中繼續培養,2 d換液1次。待細胞融合時分為5組:正常對照組Transwell板全程正常孵育;模型組置于缺氧培養箱中2 h,再迅速置于正常培養箱中24 h;冰片組根據前期預實驗及文獻[4],置于正常培養箱時加冰片使其終濃度為5 ?mol/L;燈盞花素組根據前期的預實驗,置于正常培養箱時加燈盞花素使其終濃度為10 ?mol/L;冰片+燈盞花素組置于正常培養箱時加冰片和燈盞花素使其終濃度分別為5 ?mol/L和10 ?mol/L。
2.3 跨內皮細胞電阻值測定
待BMEC達到融合狀態后,將電阻儀電極插入Transwell小室中,計算TEER值[(測得電阻值-基礎電阻值)÷小室膜面積],測量每組復氧24 h時TEER值。
2.4 辣根過氧化物酶通透率測定
棄Transell板內培養基,在供體池中加含有500 ng HRP培養基,在受體池中加1150 ?L相同培養基,使Transwell內外液面相平,于復氧后24 h從受體池中取樣50 ?L,向樣品中各加50 ?L四甲基聯苯胺溶液和H2O2,顯色10 min,加1 mol/L H2SO4 50 ?L終止反應,于酶標儀450 nm處測定吸光度(A)值。另將10 ng/mL HRP溶液用無血清DMEM培養基等比稀釋,按上述方法顯色并測定A值,計算HRP通透率[(CHRP受體池×V受體池)÷(CHRP供體池×V供體池)×100%][5]。
2.5 ELISA檢測ZO-1及Claudin-5蛋白表達
嚴格按照ZO-1及Claudin-5 ELISA試劑盒說明方法進行操作,于酶標儀450 nm處測定各組A值。
2.6 Western blot檢測ZO-1及Claudin-5蛋白表達
棄Transell板內培養基,用預冷濃度為0.01 mol/L 的PBS沖洗3次,加冰的裂解液,0 ℃放置30 min,再將細胞刮掉,離心后棄上清液,得到總蛋白。嚴格按照試劑盒說明操作,檢測ZO-1及Claudin-5蛋白表達情況,所得條帶用凝膠成像系統進行光密度掃描。
3 統計學方法
采用SPSS18.0統計軟件進行分析。實驗數據以—x±s表示,兩組間比較采用t檢驗。P<0.05表示差異有統計學意義。
4 結果
4.1 冰片聯合燈盞花素對大鼠跨內皮細胞電阻值和辣根過氧化物酶通透率的影響
缺氧/復氧損傷可顯著降低BBB的TEER值,增加HRP通透率,差異有統計學意義(P<0.01);與模型組比較,冰片組TEER值和HRP通透率均無明顯差異(P>0.05),燈盞花素組和冰片+燈盞花素組TEER值明顯升高,HRP通透率明顯降低,差異有統計學意義(P<0.01),其中以冰片+燈盞花素組效果更為顯著。結果見表1。
4.2 冰片聯合燈盞花素對大鼠腦微血管內皮細胞ZO-1及Claudin-5蛋白表達的影響
與正常對照組比較,缺氧/復氧損傷后ZO-1及Claudin-5蛋白表達均顯著降低(P<0.01);冰片組、燈盞花素組、冰片+燈盞花素組均能顯著上調ZO-1及Claudin-5蛋白表達(P<0.01),冰片+燈盞花素組作用更為顯著。結果見表2、表3、圖1。
5 討論
BMEC作為BBB形成的主要結構,它們之間形成的緊密連接是BBB主要的物質基礎。當緊密連接蛋白的表達量、位置分布或結構功能等發生改變時,BMEC及其緊密連接的完整性遭到破壞,從而使BBB通透性增高,大量有害物質進入腦組織后加重腦神經血管損傷。作為與緊密連接密切相關的關鍵蛋白ZO-1和Claudin-5蛋白更起著非常重要的作用。有研究表明,ZO-1缺失將會導致緊密連接結構遭到破壞[6];Claudin-5表達下降也已被證明與血管通透性增加密切相關[7]。
本實驗結果表明,單獨使用冰片,其TEER值和HRP通透率與模型組比較并無顯著差異,單用燈盞花素和冰片聯合燈盞花素均可明顯增加TEER值和降低HRP通透率,維持BBB的完整性,但冰片聯合燈盞花素效果更為明顯。ELISA和Western blot檢測結果也顯示,燈盞花素和冰片聯合燈盞花素均可明顯促進ZO-1和Claudin-5蛋白的表達。
綜上所述,冰片聯合燈盞花素對缺氧/復氧損傷BBB具有明顯的保護作用,且與單用燈盞花素比較,聯合用藥可明顯增強藥理效應,根據Western blot、ELISA實驗結果雙重提示,其作用機制可能為上調ZO-1和Claudin-5蛋白的表達,維持BMEC及其緊密連接的完整性。
參考文獻:
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(收稿日期:2015-05-14)
(修回日期:2015-06-10;編輯:華強)