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堿性成纖維細胞生長因子-殼聚糖載體誘導神經干細胞向神經元分化的機制

2016-06-07 08:09:26段紅梅王聰楊朝陽郝鵬尚俊奎李曉光
中國康復理論與實踐 2016年5期
關鍵詞:殼聚糖

段紅梅,王聰,楊朝陽,,郝鵬,尚俊奎,李曉光,

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堿性成纖維細胞生長因子-殼聚糖載體誘導神經干細胞向神經元分化的機制

段紅梅1,王聰2,楊朝陽1,2,郝鵬2,尚俊奎2,李曉光1,2

[摘要]目的探討堿性成纖維細胞生長因子(bFGF)-殼聚糖載體誘導神經干細胞高比例向神經元分化的潛在機制。方法純化后神經干細胞分別與單純殼聚糖、可溶性bFGF和bFGF-殼聚糖載體共培養。在共培養3 h、24 h、3 d和7 d后,Nestin、β-Ⅲtubulin、微管相關蛋白2(MAP2)和成纖維細胞生長因子受體1(FGFR1)的免疫熒光雙標記觀察受體的表達情況;實時熒光定量PCR (qRT-PCR)及Western blotting分別檢測不同時間點神經干細胞誘導后相關基因的RNA水平變化。結果誘導后3 h,FGFR1的表達量在三組中無明顯差異;誘導后24 h,bFGF-殼聚糖載體組FGFR1的表達量顯著高于單純殼聚糖組和可溶性bFGF組(P<0.001);誘導后3 d和7 d,FGFR1的表達量在單純殼聚糖組和可溶性bFGF組顯著減少(P<0.001),而在bFGF-殼聚糖載體組仍維持較高水平;qPT-PCR及Western blotting結果顯示,bFGF-殼聚糖載體組中與Erk/MAPK信號通路相關基因的表達水平顯著高于單純殼聚糖組和可溶性bFGF組(P<0.001)。結論bFGF-殼聚糖載體通過緩釋bFGF,可能上調FGFR1的表達,進而激活Erk/MAPK信號通路,促進神經干細胞向神經元的分化。

[關鍵詞]堿性成纖維細胞生長因子;殼聚糖;神經元;神經干細胞;分化;大鼠

[本文著錄格式]段紅梅,王聰,楊朝陽,等.堿性成纖維細胞生長因子-殼聚糖載體誘導神經干細胞向神經元分化的機制[J].中國康復理論與實踐,2016,22(5):528-534.

作者單位:1.北京航空航天大學生物與醫學工程學院,北京市100191;2.首都醫科大學神經生物學系,北京市100069。

CITED AS:Duan HM,Wang C,Yang ZY,et al.Mechanism of basic fibroblast growth factor-chitosan carrier inducing neural stem cells to differentiate into neurons[J].Zhongguo Kangfu Lilun Yu Shijian,2016,22(5):528-534.

神經干細胞(neural stem cells,NSCs)是來源于神經系統,具有自我更新能力和多向分化潛能的細胞群落[1],最初由Reynolds和Richards于1992年從成年鼠的紋狀體和海馬中分離得到。Gage曾將NSCs的特性概括為:可以生成神經組織,或者來源于神經系統;具有自我更新能力;通過不對稱分裂產生新的細胞[2]。后來的研究表明,成年動物內源性NSCs主要存在于海馬齒狀回顆粒細胞下層[3](subgranular zone,SGZ)、側腦室下區[4](subventricle zone,SVZ)、脊髓中央管室管膜區[5](central canal,CC)。

許多中樞神經系統疾病,如腦[6]、脊髓損傷[7]、腦卒中[8]和神經退行性疾病[9]等,通過將NSCs移植入受損的中樞神經系統,可以使受損組織的結構和功能得到恢復[10-12]。因此,NSCs的誘導分化研究成為近年來研究的熱點。

先前的研究表明,通過向培養基內添加胎牛血清[13]、腦源性神經營養因子、神經營養素3等神經營養因子[14],可以激活神經發生相關信號通路,誘導NSCs向神經元分化。同時,我們先前的研究也證實,bFGF-殼聚糖載體可以誘導NSCs向神經元分化,并形成功能性神經網絡[15]。但關于其誘導分化的機制研究較少。

堿性成纖維細胞生長因子(basic fibroblast growth factor,bFGF),即FGF-2,是成纖維細胞生長因子(fibroblast growth factor,FGF)家族的一員,具有促進神經組織生長發育、血管生成、創傷愈合和組織修復等作用[16-17]。關于bFGF的受體(fibroblast growth factor receptor,FGFR),到目前為止被確認的有5種[18]。bFGF與細胞膜上的FGFR結合,使FGFR變成二聚體,催化自身的磷酸化,進而使bFGF的受體激活,將胞外信號傳遞至胞內,激活絲裂原活化蛋白激酶(extracellular regulated protein kinases/mitogen activated protein kinase,Erk/MAPK)信號通路,實現將胞外信息傳遞至胞內,進而發揮其生物學作用[17]。Erk、c-jun、c-fos 為Erk/MAPK信號通路中的關鍵因子。Erk1/2平時位于胞漿內,一旦被激活,則迅速穿過核膜,磷酸化下游多種核轉錄因子如Erk-1、c-Myc等,間接激活jun和fos[19]。

本實驗利用免疫熒光染色和qRT-PCR技術探索bFGF-殼聚糖載體誘導NSCs向神經元分化的潛在機制。

1 材料與方法

1.1實驗動物及分組

40只新生24 h Wistar大鼠,SPF級,首都醫科大學實驗動物部提供,許可證號:SYXK(京)2013-0004。

1.2實驗方法

1.2.1 NSCs的分離培養

新生24 h Wistar大鼠,冰凍麻醉,75A酒精消毒,于超凈臺取出脊髓,置D-hanks液(GIBCO)中清洗3次。解剖顯微鏡(OLYMPUS)下剝離硬脊膜,剪碎脊髓,吸管輕輕吹打為單細胞懸液,以1×105細胞/cm2的濃度種植于含有新鮮培養基的培養瓶(COSTAR)內。培養基成分(體積比):96.8A DMEM/F12(GIBCO)、2A B27(INVITROGEN)、0.1A bFGF(20 ng/ml,SIGMA)、0.1A EGF(20 ng/ml,SIGMA)和1A青鏈霉素(SIGMA)。細胞置5A CO2培養箱(SANYO)中37℃培養。每3天半量換液1次。細胞懸液1000 r/min離心5 min,棄1/2培養基,細胞沉淀吹打混勻,加入等量新鮮培養基。1周左右形成NSCs球傳代。P3-P4時,相差倒置顯微鏡(B1X71,OLYMPUS)下觀察NSCs形態。

1.2.2NSCs的誘導分化

取P3-P4神經球,以350球/cm2的密度種植于包被有左旋多聚賴氨酸(SIGMA)的蓋玻片上。單純殼聚糖組向培養基中加入10 mg/ml殼聚糖(SIGMA),可溶性bFGF組向培養基中加入20 ng/ml bFGF(SIGMA),bFGF-殼聚糖載體組向培養基中加入10 mg/ml bFGF-殼聚糖載體。每3天半量換液1次。

1.2.3免疫熒光

在誘導后3 h、24 h,分別行Nestin/FGFR1的免疫雙標染色;誘導后3 d,Tuj1/FGFR1的免疫雙標染色;誘導后7 d,MAP2/FGFR1的免疫雙標染色。

免疫熒光染色的過程如下:4A多聚甲醛4℃固定40 min,0.3A TritonX-100破膜5 min,1A NGS室溫封閉30 min,加入相應一抗,37℃孵育2 h,加入Al-exa594和Alexa488標記的山羊抗小鼠或兔的熒光二抗(1∶300,INVITROGEN),37℃避光孵育1 h,Hoechst 33342(1∶1500,SIGMA)復染核,50A PB甘油封片,激光共聚焦掃描顯微鏡(SP8,LEICA)下觀察照相。

該部分實驗涉及的一抗和稀釋比例如下:兔來源FGFR1(1∶100),小鼠來源Nestin(1∶100),小鼠來源Tuj1(1∶150),小鼠來源MAP2(1∶150)。

1.2.4圖像分析

參考先前發表的計算受體數量的方法,并對其進行改進[20]。用Image-Pro Plus 6.1軟件計算各時間點受體的表達量。

1.2.5qRT-PCR

1.2.5.1RNA提取及cDNA合成

在誘導3 h、24 h、3 d和7 d時,分別收集三種誘導條件下的細胞,5×109細胞量加1 ml Trizol充分混勻,室溫靜置5 min;每加1 ml Trizol需加0.2 ml氯仿,輕輕振蕩15 s,室溫放置15 min;12000 g/min,4℃,離心15 min;吸取上清液,加入等體積異丙醇,12000 g/min,4℃,離心10 min,棄上清,見白色沉淀;加入1 ml 70A乙醇輕輕洗滌沉淀,12000 g/ min,4℃,離心5 min,棄上清,盡量吸干液體;吹干;加入RNase free water,溶解RNA 10 min。利用NANODROP 2000測量RNA濃度,并將RNA反轉錄為cDNA。具體反轉錄體系如下:1 μg RNA,1 μg Anchored Oligo(dT)Primer,10 μl 2×TS Reaction Mix,1 μg Enzyme Mix,gDNARemovergDNA Remover,6 μl RNase-free Water。

1.2.5.2引物設計及qRT-PCR

從NCBI-Gene Bank中查找cDNA序列,利用Primer Premier 5.0軟件設計引物,由上海生工股份有限公司進行引物合成,具體引物序列見表1。qRT-PCR選用Roche Lightcycler 480系統,依次經過95℃,5 min,預變性;95℃,10 s,變性;59℃,55 s,退火延伸;共進行40循環。具體反應體系如下:1 μl PCR上游引物,1 μl PCR下游引物,10 μl Lightcycler 480 SYBR Green I Master,1 μl cDNAs,1 μl ddH2O。

1.2.6Western blotting

分別收集三種誘導條件下各時間點的細胞,具體實驗步驟參考先前發表的文章[21]。

1.3統計學分析

表1 用于qRT-PCR分析的引物序列

2 結果

2.1免疫熒光染色

NSCs分別在單純殼聚糖、可溶性bFGF和bFGF-殼聚糖載體三種誘導條件下,誘導后3 h,FGFR1的表達均維持較高水平,組間差異不明顯(圖1),此時,NSCs尚未從神經球內爬出,故無法統計單個細胞表達FGFR1的數量。

誘導后24 h,bFGF-殼聚糖載體組細胞膜上受體的數量顯著多于單純殼聚糖組和可溶性bFGF組(P<0.001)。見圖2和圖5。

在誘導后3 d和7 d,單純殼聚糖組和可溶性bFGF組細胞膜上受體的數量顯著減少(P<0.001),而bFGF-殼聚糖載體組細胞膜上受體的數量仍然維持在較高水平。見圖3、圖4、圖6和圖7。

圖1 NSCs誘導3 h后Nestin和FGFR1的表達(免疫熒光染色)

圖2 NSCs誘導24 h后Nestin和FGFR1的表達(免疫熒光染色)

圖3 NSCs誘導3 d后Tuj1和FGFR1的表達(免疫熒光染色)

圖4 NSCs誘導7 d后MAP2和FGFR1的表達(免疫熒光染色)

圖5 NSCs誘導24 h后FGFR的數量

圖6 NSCs誘導3 d后FGFR的數量

2.2qRT-PCR及Western blotting

在三種誘導條件下,隨著誘導時間的不斷延長,在bFGF-殼聚糖載體組中FGFR1及Erk/MAPK信號通路關鍵因子Erk、c-jun、c-fos的表達量顯著高于其他兩組(P<0.001)。見圖8和圖9。

圖9 Western blotting檢測NSCs分化過程中關鍵因子蛋白水平的變化

3 討論

中樞神經系統損傷后,神經系統的修復和再生一直是難以攻克的世界難題。將NSCs移植入損傷區來修復神經系統損傷成為近年來研究的熱點。我們實驗室建立了一個體外NSCs誘導分化模型,通過向純化的NSCs中加入適量的bFGF-殼聚糖載體誘導其分化為多種神經細胞,如神經元、星形膠質細胞和少突膠質細胞,并且分化為神經元比例較高。

殼聚糖是甲殼素脫乙酰化的產物,其具有良好的生物相容性和可降解性,因此將殼聚糖作為藥物緩釋系統具有極大的優勢[22-23]。bFGF-殼聚糖載體對bFGF具有緩釋作用,能夠長時間緩慢釋放bFGF[24]。而單純bFGF的半衰期較短[25],僅9~10 min,單獨存在易被降解。因此我們實驗室采用bFGF-殼聚糖載體誘導干細胞的分化。

本研究形態學的結果表明,bFGF-殼聚糖載體通過緩慢釋放的bFGF長時程激活細胞表面的FGFR,使細胞持續表達FGFR,并維持在較高水平。這可能是bFGF-殼聚糖載體誘導NSCs高比例向神經元分化的主要機制。qRT-PCR及Western blotting的結果進一步驗證形態學的結果,同時證明bFGF-殼聚糖載體可能通過活化Erk1/2-MAPK信號通路,上調下游轉錄因子Erk、c-fos和c-jun,啟動細胞的增殖、分化。

綜上所述,干細胞的移植治療是目前研究的熱點。我們自發研制的bFGF-殼聚糖載體,通過緩釋bFGF誘導NSCs表面的FGFR1數量增加,可能會上調Erk/MAPK信號通路,來完成NSCs高比例向神經元的分化過程。這將為NSCs移植治療中樞神經系統損傷提供新的思路。

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Mechanism of Basic Fibroblast Growth Factor-chitosan Carrier Inducing Neural Stem Cells to Differentiate into Neurons

DUAN Hong-mei1,WANG Cong2,YANG Zhao-yang1,2,HAO Peng2,SHANG Jun-kui2,LI Xiao-guang1,2
1.Department of Biomedical Engineering,School of Biological Science and Medical Engineering,Beihang University,Beijing 100191,China;2.Department of Neurobiology,Capital Medical University,Beijing 100069,China

Correspondence to LI Xiao-guang.E-mail:lxgchina@sina.com

Abstract:Objective To investigate the potential mechanism of basic fibroblast growth factor(bFGF)-chitosan carrier to induce neural stem cells to differentiate into neurons.Methods After purification,the neural stem cells were cocultured with chitosan,soluble bFGF and bFGF-chitosan carrier.Three hours,twenty-four hours,three days and seven days after induction,immunofluorescence staining of Nestin,beta tubulin III,microtubule-associated protein-2(MAP2),and fibroblast growth factor receptor 1(FGFR1)were used to observe the expression of FGFR1;real-time fluorescent quantitative polymerase chain reaction(qRT-PCR)and Western blotting were used to detect RNA and protein level changes after induction.Results Three hours after induction,there was no significant difference in the expression of FGFR1 among three groups.Twenty-four hours after induction,the expression level of FGFR1 was significantly higher in the bFGF-chitosan carrier group than in the chitosan group and the soluble bFGF group(P<0.001);three days and seven days after induction,the expression of FGFR1 decreased significantly in the chitosan group and soluble bFGF group(P<0.001),however,it was still higher in the bFGF-chitosan carrier group;moreover,the expression of genes associated with the pathway of extracellular regulated protein kinases/mitogen activated protein kinase(Erk/MAPK)was significantly higher in the bFGF-chitosan carrier group than in the chitosan group and soluble bFGF group(P<0.001).Conclusion bFGF-chitosan carrier might upregulate the expression of FGFR1,then activate Erk/MAPK signal pathways,and finally promote the differentiation of neural stem cells into neurons.

Key words:basic fibroblast growth factor;chitosan;neuron;neural stem cell;differentiation;rats

DOI:10.3969/j.issn.1006-9771.2016.05.009

[中圖分類號]R318.5

[文獻標識碼]A

[文章編號]1006-9771(2016)05-0528-07

基金項目:1.國家“863”計劃項目(No.2012AA020506);2.國家自然科學基金面上項目(No.31271037);3.國家自然科學基金國際合作與交流項目(No.31320103903);4.“十二五”國家科技支撐計劃項目(No.2012BAI17B04);5.高等學校全國優秀博士學位論文作者專項資金資助項目(No.201356);6.國家國際科技合作專項項目(No.2014DFA30640);7.國家自然科學基金委員會資助項目(No.31130022)。

作者簡介:段紅梅(1983-),女,河南駐馬店市人,博士研究生,主要研究方向:生物材料在細胞誘導及脊髓損傷修復過程中的作用。通訊作者:李曉光(1959-),男,吉林長春市人,博士,教授,主要研究方向:應用組織工程學的方法修復神經系統損傷的研究。E-mail:lxgchina@sina.com。

收稿日期:(2016-03-28修回日期:2016-04-26)

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