黃酒多酚對同型半胱氨酸誘導的血管平滑肌細胞增殖和遷移的影響及其機制研究

劉龍斌，孟立平，季 政，許富康，池菊芳，郭航遠

312000浙江省紹興市人民醫院心內科 浙江大學紹興醫院

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·論著·

黃酒多酚對同型半胱氨酸誘導的血管平滑肌細胞增殖和遷移的影響及其機制研究

劉龍斌，孟立平，季 政，許富康，池菊芳，郭航遠

312000浙江省紹興市人民醫院心內科 浙江大學紹興醫院

【摘要】目的驗證黃酒多酚(YWPC)是否具有抑制同型半胱氨酸(Hcy)誘導的大鼠血管平滑肌細胞(VSMCs)增殖和遷移的作用以及其產生作用的信號通路。方法采用組織貼塊法培育SD大鼠胸主動脈VSMCs，取第4～7代細胞用于實驗。細胞分為5組，分別為對照組，Hcy組(500 μmol/L Hcy)，YWPC 1 mg/L組(500 μmol/L Hcy+1 mg/L YWPC)，YWPC 10 mg/L組(500 μmol/L Hcy+10 mg/L YWPC)，YWPC 100 mg/L組(500 μmol/L Hcy+100 mg/L YWPC)。采用MTT法檢測VSMCs增殖情況；細胞劃痕實驗和Transwell法檢測VSMCs遷移和侵襲情況；Western blotting法檢測p-AKT/AKT表達情況。為驗證YWPC是否經Pi3K/AKT通路發揮抑制VSMCs的增殖和遷移，分別加入LY-294002和胰島素生長因子1(IGF-1)用來抑制和激活Pi3K/AKT通路，細胞被分為Hcy組，YWPC組，LY-294002+Hcy組，LY-294002+YWPC組；Hcy組，YWPC組，IGF-1+Hcy組，IGF-1+YWPC組，再分別采用上述方法檢測VSMCs增殖、遷移和侵襲情況。結果培養大鼠胸主動脈VSMCs，2周左右細胞融合可以傳代，經SM-actin細胞免疫熒光鑒定及DAPI核染，確定細胞純度在99%以上。24、48 h時，5組OD值比較，差異有統計學意義(F=52.575，P=0.016；F=83.756，P=0.014)；其中Hcy組OD值高于對照組和YWPC組，且與YWPC呈劑量依賴性(P<0.05)。24、48、72、96 h時，5組VSMCs遷移面積比較，差異均有統計學意義(P<0.05)；其中Hcy組VSMCs遷移面積多于對照組(P<0.05)；YWPC組VSMCs遷移面積低于Hcy組，且與YWPC呈劑量依賴性(P<0.05)。48 h時，5組遷移細胞數比較，差異有統計學意義(F=79.354，P=0.001)；其中Hcy組穿透Transwell膜細胞數高于對照組(P<0.05)；YWPC組穿透Transwell膜細胞數低于Hcy組，且與YWPC呈劑量依賴性(P<0.05)。5組p-AKT/AKT比較，差異有統計學意義(F=56.723，P=0.002)；其中Hcy組p-AKT/AKT高于對照組(P<0.05)；YWPC組p-AKT/AKT低于Hcy組，且與YWPC呈劑量依賴性(P<0.05)。加入LY-294002：24 h時，各組OD值、VSMCs遷移面積比較，差異有統計學意義(F=46.875，P=0.004；F=67.723，P=0.002)；其中LY-294002+Hcy組OD值、VSMCs遷移面積低于Hcy組(P<0.05)；LY-294002+Hcy組與LY-294002+YWPC組OD值、VSMCs遷移面積比較，差異無統計學意義(P>0.05)。48 h時，各組VSMCs穿透Transwell膜細胞數、p-AKT/AKT比較，差異有統計學意義(F=52.904，P=0.003；F=87.904，P=0.001)；其中LY-294002+Hcy組VSMCs穿透Transwell膜細胞數、p-AKT/AKT低于Hcy組(P<0.05)；LY-294002+Hcy組與LY-294002+YWPC組VSMCs穿透Transwell膜細胞數、p-AKT/AKT比較，差異無統計學意義(P>0.05)。加入IGF-1：24 h時，各組OD值、VSMCs遷移面積比較，差異有統計學意義(F=48.052，P=0.007；F=63.085，P=0.002)；其中IGF-1+YWPC組OD值、VSMCs遷移面積高于YWPC組(P<0.05)；IGF-1+Hcy組與IGF-1+YWPC組OD值、VSMCs遷移面積比較，差異無統計學意義(P>0.05)。48 h時，各組VSMCs穿透Transwell膜細胞數、p-AKT/AKT比較，差異有統計學意義(F=55.941，P=0.008；F=65.011，P=0.005)；其中IGF-1+YWPC組VSMCs穿透Transwell膜細胞數、p-AKT/AKT高于YWPC組(P<0.05)；IGF-1+Hcy組與IGF-1+YWPC組VSMCs穿透Transwell膜細胞數、p-AKT/AKT比較，差異無統計學意義(P>0.05)。結論YWPC通過抑制Pi3K/AKT信號通路抑制Hcy誘導的VSMCs增殖和遷移。

【關鍵詞】多酚類；肌，平滑，血管；Pi3K/AKT

劉龍斌，孟立平，季政，等.黃酒多酚對同型半胱氨酸誘導的血管平滑肌細胞增殖和遷移的影響及其機制研究[J].中國全科醫學，2016，19(14)：1676-1683.[www.chinagp.net]

Liu LB，Meng LP，Ji Z，et al.Influence of yellow wine polyphenol compounds on homocysteine induced VSMCs proliferation and migration and its mechanism[J].Chinese General Practice，2016，19(14)：1676-1683.

黃酒作為我國的特產，是世界上最古老的釀造酒種之一。黃酒以紅粬、糯米和水為原料，以人工自然發酵釀制而成。現已證實黃酒中含有豐富的多酚、氨基酸、多肽、維生素、低聚糖、有機酸以及礦物質等有益于心腦血管健康的成分[1]。筆者前期研究已經證實黃酒不但可以抑制大鼠血管平滑肌細胞(VSMCs)增殖和遷移，而且可以抑制低密度脂蛋白受體基因敲除(LDLR-/-)小鼠動脈粥樣硬化形成[2-4]。

隨著“地中海飲食”以及“法國悖論”等概念的提出，大量的研究證實規律適量的飲用紅酒具有心血管保護作用[5-6]，并且已經闡明紅酒的心血管保護作用主要源于其中的多酚類成分[7]。紹興黃酒由糯米發酵而成，同樣富含沒食子酸、兒茶素等多酚類物質，所以推測，黃酒中主要也是多酚類物質在發揮其心腦血管保護作用。本研究主要驗證黃酒多酚(YWPC)是否具有抑制VSMCs增殖和遷移的作用以及是否通過抑制Pi3K/AKT途徑實現這一作用。

1材料與方法

1.1實驗材料(1)實驗動物：SPF級SD大鼠，雌雄不限，出生約60 d，體質量150～180 g(購自浙江省醫學科學院實驗動物中心)；遺傳背景為C57BL/6J 10代后雄性LDLR-/-小鼠(購于南京醫科大學實驗動物中心)；(2)實驗試劑：YWPC(由上海中藥制藥技術有限公司分離提取，純度約60%)；乙醚、甲醇、75%乙醇、95%乙醇、無水乙醇、甲醛(杭州化學試劑有限公司)，DMEM高糖培養基、磷酸鹽緩沖液(PBS)、0.25%胰蛋白酶-EDTA、青霉素和鏈霉素(杭州吉諾生物醫藥技術有限公司)；同型半胱氨酸(Hcy)、雷帕霉素(Sigma公司)，二甲基亞砜(DMSO)(MP Biomedicals公司)，胎牛血清(GIBCO公司)，MTT(Emresco公司)；DAPI(Rcohe公司)；兔抗p70S6K、p-p70S6K多克隆抗體、兔抗大鼠平滑肌肌動蛋白(SM-actin)單克隆抗體(ABCOM公司)；辣根過氧化酶標記的山羊抗兔或抗鼠二抗、異硫氰酸熒光素(FITC)標記的山羊抗兔IgG(Jackson公司)；Western blotting相關試劑(江蘇碧云天生物技術研究所)。

1.2實驗方法

1.2.1VSMCs原代細胞培養以及鑒定采用組織貼塊法培育大鼠胸主動脈VSMCs，采用SM-actin免疫熒光鑒定VSMCs，并通過SM-actin與DAPI核染之間的關系鑒定VSMCs的純度[8]。取第4～7代細胞用于后續實驗，細胞加干預因素時采用含2.5%胎牛血清的培養基。

1.2.2實驗分組

1.2.2.1驗證不同濃度YWPC是否可以抑制Hcy誘導的VSMCs增殖和遷移細胞分為5組，分別為對照組，Hcy組(500 μmol/L Hcy)，YWPC 1 mg/L組(500 μmol/L Hcy+1 mg/L YWPC)，YWPC 10 mg/L組(500 μmol/L Hcy+10 mg/L YWPC)，YWPC 100 mg/L組(500 μmol/L Hcy+100 mg/L YWPC)。

1.2.2.2驗證YWPC是否經Pi3K/AKT通路抑制VSMCs的增殖和遷移(1)抑制Pi3K通路部分：待細胞生長到70%～80%后，血清饑餓使細胞同步化，加入20 nmol/L LY-294002孵育12 h以阻斷Pi3K通路，再加入Hcy和YWPC干預VSMCs，觀察Pi3K通路被抑制后YWPC對VSMCs的作用，細胞分為4組，分別為：Hcy組、YWPC組、LY-294002+Hcy組和LY-294002+YWPC組。(2)激活Pi3K通路部分：待細胞生長到70%～80%后，血清饑餓使細胞同步化，加入3 μg/L 胰島素生長因子1(IGF-1)孵育12 h以激活Pi3K通路，再加入Hcy和YWPC干預VSMCs，觀察Pi3K通路被激活后YWPC對VSMCs的作用，細胞分為4組，分別為：Hcy組、YWPC組、IGF-1+Hcy組和IGF-1+YWPC組。

1.2.3MTT法檢測VSMCs增殖取第4～7代培養細胞，0.25%胰蛋白酶消化單層VSMCs，用含10%胎牛血清的DMEM高糖培養基配成細胞懸液并計數，以6×103個細胞/孔接種于96孔培養板中。待細胞貼壁后，無血清培養基培養24 h使細胞同步化。各組設4個復孔，2個不加細胞的空白對照孔。細胞于37 ℃、5% CO2孵箱培養48 h。培養結束，每孔加入MTT液20 μl，37 ℃繼續孵育4～6 h，終止培養，小心棄去培養上清液，每孔加入150 μl DMSO，震蕩10 min，選擇490 nm波長于酶聯免疫檢測儀測定各孔吸光度(OD值)并記錄。以時間為橫軸，OD值為縱軸繪制VSMCs生長曲線。

1.2.4細胞劃痕實驗觀察VSMCs遷移取第4～7代培養細胞，0.25%胰蛋白酶消化單層VSMCs，用含10%胎牛血清的DMEM高糖培養基配成細胞懸液并計數，以105個細胞/孔接種于6孔培養板中，每孔體積2 ml。細胞鋪滿板底后，無血清培養基培養24 h使細胞同步化，加入1.8 mmol/L羥基脲作用12 h抑制細胞增殖。用100 μl黃色槍頭垂直于孔板制造細胞劃痕，吸去細胞培養液，用PBS沖洗孔板3次，洗去劃痕產生的細胞碎片。加入各組相應的干預因子，拍照記錄0、12、24、48、72、96 h圖片，用Image-Pro Plus 6.0分析計算細胞遷移的面積，細胞遷移的面積與最開始的劃痕面積之間的比值表示遷移的距離。

1.2.5Transwell法檢測VSMCs侵襲能力取第4～7代培養細胞，血清饑餓使細胞同步化，加入1.8 mmol/L羥基脲作用12 h抑制細胞增殖，0.25%胰蛋白酶消化單層VSMCs，用含有上述各組干預因子的DMEM高糖培養基(無血清)配成細胞懸液并計數(3×104/ml)。各組24孔板配套的Transwell小室(0.8 μm)上室加入200 μl細胞懸液，下室加入含有10%胎牛血清的DMEM高糖培養基500 μl，培養48 h。干預結束后以棉簽輕輕擦去上層未穿透膜的VSMCs，取下Transwell半透膜，PBS洗滌3次，3.7%多聚甲醛溶液室溫固定5 min，流水沖洗后，用2 mg/L DAPI染核，PBS沖洗后，熒光顯微鏡下隨機取5個視野計數穿膜細胞數并記錄。

1.2.6Western blotting測定VSMCs中p-AKT/AKT表達各組干預因子干預48 h后，裂解VSMCs提取蛋白，BCA法蛋白定量，十二烷基硫酸鈉(SDS)-聚丙烯酰氨凝膠電泳(PAGE)每孔加入20 μl樣品，80 V進行蛋白濃聚30 min，120 V進行凝膠電泳2 h，并用孔徑0.45 μm硝酸纖維素膜250 mA進行轉膜90 min。轉膜完畢經常溫下TBST洗膜3次，脫脂奶粉封閉2 h后，以1∶1 000濃度加入兔抗鼠p-AKT/AKT一抗，4 ℃孵育過夜，常溫下TBST洗膜3次，辣根過氧化酶標記的羊抗兔二抗孵育后ECL化學發光法檢測目標蛋白。暗室柯達膠片顯影，Quantity one軟件定量分析。

2結果

2.1VSMCs原代培養及鑒定采用組織貼塊法培養大鼠胸主動脈VSMCs，約8d組織塊周圍有細胞爬出，2周左右細胞融合可以傳代。傳代后細胞呈典型“峰谷”狀排列生長，用SM-actin細胞免疫熒光鑒定VSMCs，DAPI核染之后確定細胞純度在99%以上(見圖1，本文彩圖詳見本刊網站www.chinagp.net電子期相應文章附件)。

注：A=VSMCs形態學(×100)，B=細胞免疫熒光鑒定(×400)

圖1大鼠胸主動脈VSMCs形態學及細胞免疫熒光鑒定

Figure1IdentificationoftherataorticVSMCsbymorphologyandimmunocytochemistry

2.25組VSMCs不同時間增殖情況比較12 h時，5組OD值比較，差異無統計學意義(F=2.147，P=0.455)。24 h時，5組OD值比較，差異有統計學意義(F=52.575，P=0.016)；其中Hcy組OD值高于對照組和YWPC組，且與YWPC呈劑量依賴性(P<0.05)。48 h時，5組OD值比較，差異有統計學意義(F=83.756，P=0.014)；其中Hcy組OD值高于對照組和YWPC組，且與YWPC呈劑量依賴性(P<0.05，見圖2)。

注：Hcy=同型半胱氨酸，YWPC=黃酒多酚

圖2不同時間點各組VSMCs增殖情況

Figure 2Status of VSMCs proliferation of each group at different time points

2.35組VSMCs遷移面積比較12 h時，5組VSMCs遷移面積比較，差異無統計學意義(P>0.05)。24、48、72、96 h時，5組VSMCs遷移面積比較，差異均有統計學意義(P<0.05)；其中Hcy組VSMCs遷移面積大于對照組，差異有統計學意義(P<0.05)；YWPC組VSMCs遷移面積小于Hcy組，且與YWPC呈劑量依賴性(P<0.05，見表1)。

表1　不同時間點各組VSMCs遷移面積比較

注：與對照組比較，aP<0.05；與Hcy組比較，bP<0.05；Hcy=同型半胱氨酸，YWPC=黃酒多酚

2.45組VSMCs侵襲能力比較5組VSMCs 48 h穿透Transwell膜細胞數分別為(46±6)、(277±36)、(194±21)、(126±10)、(69±5)，5組遷移細胞數比較，差異有統計學意義(F=79.354，P=0.001)；其中Hcy組穿透Transwell膜細胞數多于對照組，差異有統計學意義(P<0.05)；YWPC組穿透Transwell膜細胞數少于Hcy組，且與YWPC呈劑量依賴性(P<0.05，見圖3)。

圖3　　　　Transwell小室培養48 h后各組遷移到下室的細胞DAPI染色圖

Figure 3DAPI staining graph of VSMCs migration to lower chamber after 48 h culture in Transwell chamber

2.5YWPC抑制Pi3K/AKT通路的激活5組p-AKT/AKT比較，差異有統計學意義(F=56.723，P=0.002)；其中Hcy組p-AKT/AKT高于對照組，差異有統計學意義(P<0.05)；YWPC組p-AKT/AKT低于Hcy組，且與YWPC呈劑量依賴性(P<0.05，見圖4)。

注：與對照組比較，aP<0.05；與Hcy組比較，bP<0.05

圖4Western blotting檢測各組VSMCs中AKT和p-AKT的表達

Figure 4Expression of AKT and p-AKT in VSMCs of each group detected by western blotting method

2.6LY-294002對YWPC抑制Hcy誘導的VSMCs增殖和遷移的影響

2.6.1不同時間點各干預因素對VSMCs增殖的影響12 h時，各組OD值比較，差異無統計學意義(F=4.247，P=0.239)；24 h時，各組OD值比較，差異有統計學意義(F=46.875，P=0.004)；其中LY-294002+Hcy組OD值低于Hcy組，差異有統計學意義(P<0.05)；LY-294002+Hcy組與LY-294002+YWPC組OD值比較，差異無統計學意義(P>0.05)。48 h時，各組OD值比較，差異有統計學意義(F=85.736，P=0.001)；其中LY-294002+Hcy組OD值低于Hcy組，差異有統計學意義(P<0.05)；LY-294002+Hcy組與LY-294002+YWPC組OD值比較，差異無統計學意義(P>0.05，見圖5)。

2.6.2不同時間點各干預因素對VSMCs遷移的影響24 h時，各組VSMCs遷移面積比較，差異有統計學意義(F=67.723，P=0.002)；其中LY-294002+Hcy組VSMCs遷移面積小于Hcy組，差異有統計學意義(P<0.05)；LY-294002+Hcy組與LY-294002+YWPC組VSMCs遷移面積比較，差異無統計學意義(P>0.05，見圖6)。

2.6.3不同時間點各干預因素對VSMCs侵襲的影響48 h時，各組VSMCs穿透Transwell膜細胞數比較，差異有統計學意義(F=52.904，P=0.003)；其中LY-294002+Hcy組VSMCs穿透Transwell膜細胞數少于Hcy組，差異有統計學意義(P<0.05)；LY-294002+Hcy組與LY-294002+YWPC組VSMCs穿透Transwell膜細胞數比較，差異無統計學意義(P>0.05，見圖6)。

2.6.4各干預因素對p-AKT/AKT的影響48 h時，各組p-AKT/AKT比較，差異有統計學意義(F=87.904，P=0.001)；其中YWPC組、LY-294002+Hcy組、LY-294002+YWPC組p-AKT/AKT低于Hcy組(P<0.05)；LY-294002+Hcy組與LY-294002+YWPC組p-AKT/AKT比較，差異無統計學意義(P>0.05，見圖7)。

2.7IGF-1對YWPC抑制Hcy誘導的VSMCs增殖和遷移的影響

2.7.1不同時間點各干預因素對VSMCs增殖的影響12 h時，各組OD值比較，差異無統計學意義(F=6.251，P=0.238)；24 h時，各組OD值比較，差異有統計學意義(F=48.052，P=0.007)；其中IGF-1+YWPC組和IGF-1+Hcy組OD值高于YWPC組，差異有統計學意義(P<0.05)；IGF-1+Hcy組與IGF-1+YWPC組OD值比較，差異無統計學意義(P>0.05)。48 h時，各組OD值比較，差異有統計學意義(F=44.052，P=0.003)；其中IGF-1+YWPC組和IGF-1+Hcy組OD值高于YWPC組，差異有統計學意義(P<0.05)；IGF-1+Hcy組與IGF-1+YWPC組OD值比較，差異無統計學意義(P>0.05，見圖8)。

圖5　不同時間點各個干預因素對VSMCs增殖的影響

Figure 5Influence of each intervention factor on VSMCs proliferation at different time points

圖6　　　　Transwell小室48 h時各組遷移到下室的細胞DAPI染色圖

Figure 6DAPI staining graph of VSMCs migration to lower chamber after 48 h culture in Transwell chamber and VSMCs migration after 24 h cell wound scratch assay

2.7.2不同時間點各干預因素對VSMCs遷移的影響24 h時，各組VSMCs遷移面積比較，差異有統計學意義(F=63.085，P=0.002)；其中IGF-1+YWPC組VSMCs遷移面積大于YWPC組，差異有統計學意義(P<0.05)；IGF-1+Hcy組與IGF-1+YWPC組VSMCs遷移面積比較，差異無統計學意義(P>0.05，見圖9)。

2.7.3不同時間點各干預因素對VSMCs侵襲的影響48 h時，各組VSMCs穿透Transwell膜細胞數比較，差異有統計學意義(F=55.941，P=0.008)；其中IGF-1+YWPC組VSMCs穿透Transwell膜細胞數多于YWPC組，差異有統計學意義(P<0.05)；IGF-1+Hcy組與IGF-1+YWPC組VSMCs穿透Transwell膜細胞數比較，差異無統計學意義(P>0.05，見圖9)。

注：與Hcy組比較，aP<0.05

圖7Western blotting檢測各組VSMCs中p-AKT/AKT的表達

Figure 7Expression of p-AKT/AKT of VSMCs in each group detected by western blotting method

2.7.4各干預因素對p-AKT/AKT的影響48 h時，各組p-AKT/AKT比較，差異有統計學意義(F=65.011，P=0.005)；其中Hcy組、IGF-1+Hcy組和IGF-1+YWPC組p-AKT/AKT高于YWPC組，差異有統計學意義(P<0.05)；IGF-1+Hcy組與IGF-1+YWPC組p-AKT/AKT比較，差異無統計學意義(P>0.05，見圖10)。

注：IGF-1=胰島素生長因子1

圖8不同時間點各個干預因素對VSMCs增殖的影響

Figure 8Influence of each intervention factor on VSMCs proliferation at different time points

圖9　　　Transwell小室48 h時各組遷移到下室的細胞DAPI染色圖

Figure 9DAPI staining graph of VSMCs migration to lower chamber after 48 h culture in Transwell chamber and VSMCs migration after 24 h cell wound scratch assay

注：與YWPC組比較，aP<0.05

圖10Western blotting檢測各組VSMCs中p-AKT/AKT的表達

Figure 10Expression of p-AKT/AKT of VSMCs detected by western blotting method

3討論

研究顯示規律適量地飲用紅酒具有心血管保護作用[5-6]，并且已經闡明紅酒的心血管保護作用主要是由于其中的多酚類成分[7，9]。紅酒多酚由白藜蘆醇、兒茶素、花青素等組成，通過調節血脂、改善血管功能、抑制VSMCs增殖和遷移等作用而發揮心血管保護作用。黃酒是一種古老的釀造酒種，以水、紅粬、糯米和小麥為原料，采用人工發酵釀制而成。與紅酒一樣，目前發現紹興黃酒中也富含兒茶素、沒食子酸等多酚類物質(約50 mg/L)[1，10-11]。筆者前期實驗已經證明YWPC具有抑制LDLR-/-小鼠動脈粥樣硬化的作用，然而其抑制小鼠動脈粥樣硬化的具體機制尚未闡明[12]。

VSMCs位于動脈血管的中層，在正常狀態下主要發揮收縮血管的功能，當遇到炎性因子等血管損傷因素時，VSMCs可以被激活而增加增殖和遷移的能力[13]。VSMCs大量增殖、遷移、吞噬氧化低密度脂蛋白(ox-LDL)之后形成肌源性泡沫細胞，并進一步分泌更多的炎性因子，使炎性反應級聯放大，細胞外基質降解，最終導致粥樣斑塊的形成以及斑塊的破裂。本實驗研究結果顯示，YWPC組OD值、遷移面積、侵襲能力均低于Hcy組，且p-AKT/AKT低于Hcy組，推測YWPC可能是通過Pi3K/AKT途徑發揮抑制Hcy誘導的VSMCs的增殖和遷移，為驗證此推測，本實驗分別采用Pi3K特異性抑制劑LY-294002抑制VSMCs中的Pi3K/AKT通路和Pi3K激動劑IGF-1激活Pi3K/AKT通路，采用LY-294002干預細胞后，細胞內Pi3K/AKT通路被抑制，與Hcy組比較，LY-294002+Hcy組VSMCs OD值和遷移減少，說明抑制Pi3K/AKT通路可以抑制VSMCs增殖和遷移。在加入LY-294002的基礎上再加Hcy或YWPC，此時由于Pi3K/AKT通路已經被抑制，YWPC和Hcy對Pi3K/AKT通路的影響消失，此時實驗結果發現LY-294002+Hcy組與LY-294002+YWPC組VSMCs增殖和遷移比較無差異，證實YWPC和Hcy是通過作用在Pi3K/AKT通路發揮其影響VSMCs增殖和遷移的作用。同樣，采用IGF-1干預細胞后，細胞內Pi3K/AKT通路被激活，與YWPC組比較，IGF-1+YWPC組VSMCs增殖和遷移增加，說明激活Pi3K/AKT通路可以增加VSMCs增殖和遷移。在加入IGF-1的基礎上再加Hcy或YWPC，此時由于Pi3K/AKT通路已經被IGF-1持續激活，YWPC和Hcy對Pi3K/AKT通路的作用消失，此時實驗結果發現IGF-1+Hcy組與IGF-1+YWPC組VSMCs增殖和遷移比較無差異，證實YWPC和Hcy是通過作用在Pi3K/AKT通路上發揮其影響VSMCs增殖和遷移的作用。這可能是其具有抗動脈粥樣硬化作用的機制之一。

Pi3K/AKT通路在VSMCs增殖和遷移以及表型轉化中發揮著重要作用[14-15]，p-AKT可以進一步激活mTOR/p70S6K通路，增加p-p70S6K1的表達，最終增加VSMCs增殖和遷移[16]。有研究發現楊梅苷可以通過抑制p-AKT的表達從而抑制血小板衍生生長因子(PDGF)-BB誘導的VSMCs增殖和遷移。同時，Wang等[17]研究結果也顯示Apelin通過抑制Pi3K/AKT/FoxO3a/MMP-2通路抑制VSMCs的遷移，本研究結果與上述結果相符，表明YWPC可以抑制Pi3K/AKT通路，減少p-AKT的表達。

本研究在前期已經證實黃酒和YWPC具有抗動脈粥樣硬化作用的基礎上[2-3]，進一步探索證明YWPC具有抗Hcy誘導的VSMCs增殖和遷移的作用，并且證明其作用是通過抑制Pi3K/AKT通路而實現，這可能是其抗動脈粥樣硬化的一個重要機制。本實驗也存在一定的局限性，黃酒中的多酚類物質是由不同的單體成分組成的混合物，究竟是其中的何種確切成分在發揮作用目前尚不十分清楚，仍需后續實驗加以證明。

作者貢獻：劉龍斌進行實驗設計與實施、資料收集整理、撰寫論文、成文并對文章負責；孟立平、季政、許富康、池菊芳進行實驗實施、評估、資料收集；郭航遠進行質量控制及審校。

本文無利益沖突。

參考文獻

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(本文編輯：賈萌萌)

Influence of Yellow Wine Polyphenol Compounds on Homocysteine Induced VSMCs Proliferation and Migration and Its Mechanism

LIULong-bin，MENGLi-ping，JIZheng，etal.

DepartmentofCardiology，ShaoxingPeople′sHospital，Shaoxing312000，China

【Abstract】ObjectiveTo verify whether yellow wine polyphenol compounds(YWPC)could inhibit homocysteine(Hcy)induced rat aortic vascular smooth muscle cells(VSMCs)proliferation and migration and its signaling pathway.MethodsTissue-sticking method was used to culture SD rat VSMCs，and 4-7 generations of cells were obtained.The cells were divided into 5 groups，which were control group，Hcy group(500 μmol/L Hcy)，YWPC 1 mg/L group(500 μmol/L Hcy+1 mg/L YWPC)，YWPC 10 mg/L group(500 μmol/L Hcy+10 mg/L YWPC)and YWPC 100 mg/L group(500 μmol/L Hcy+100 mg/L YWPC).MTT method was used to detect VSMCs proliferation；cell wound scratch assay and Transwell method were used to detect VSMCs migration and invasion；Western blotting method was used to detect p-AKT/AKT expression.In order to verify whether YWPC can inhibit VSMCs proliferation and migration through Pi3K/AKT pathway，LY-294002 and IGF-1 were added respectively to inhibit and activate Pi3K/AKT pathway.The cells added with LY-294002 were divided into Hcy group，YWPC group，LY-294002+Hcy group，and LY-294002+YWPC group；the cells added with IGF-1 were divided into Hcy group，YWPC group，IGF-1+Hcy group，and IGF-1+YWPC group.The above methods were employed again to detect the proliferation，migration and invasion of VSMCs.ResultsRat aortic VSMCs were cultured.Two weeks later，cell fusion and passage occurred，and cell purity was determined to be above 99% by SM-actin cellular immune fluorescent identification and DAPI nuclear staining dye.At 24 h and 48 h，the five groups were significantly different in OD value(F=52.575，P=0.016；F=83.756，P=0.014)，and the OD value of Hcy group was higher than that of control group and YWPC group,and in a dose-dependent manner(P<0.05).At 24，48，72 and 96 h，the five groups were significantly different in VSMCs migration area(P<0.05)；Hcy group was higher than control group in VSMCs migration area(P<0.05)；YWPC group was lower than Hcy group in VSMCs migration area,and in a dose-dependent manner(P<0.05).At 48 h，the five groups were significantly different in the number of migrating cells(F=79.354，P=0.001)；Hcy group was higher than control group in the number of cells that penetrated through the transwell membrane(P<0.05)；the number of cells that penetrated through the transwell membrane of YWPC group was lower than that of Hcy group，and in a dose-dependent manner(P<0.05).The five group were significantly different in p-AKT/AKT(F=56.723，P=0.002)；Hcy group was higher than control group in p-AKT/AKT(P<0.05)；the p-AKT/AKT of YWPC group was lower than that of Hcy group，and in a dose-dependent manner(P<0.05).After adding LY-294002 for 24 hours，the four groups were significantly different in OD value，VSMCs migration area(F=46.875，P=0.004；F=67.723，P=0.002)；LY-294002+Hcy group was lower than Hcy group in OD value and VSMCs migration area(P<0.05)；LY-294002+Hcy group and LY-294002+YWPC group were not significantly different in OD value and VSMCs migration area(P>0.05).After adding LY-294002 for 48 hours，the four groups were significantly different in the number of cells that penetrated through the transwell membrane and p-AKT/AKT(F=52.904，P=0.003；F=87.904，P=0.001)；LY-294002+Hcy group was lower than Hcy group in the number of cells that penetrated through the transwell membrane and p-AKT/AKT(P<0.05)；LY-294002+Hcy group and LY-294002+YWPC group were not significantly different in the number of cells that penetrated through the transwell membrane and p-AKT/AKT(P>0.05).After adding IGF-1 for 24 hours，the four groups were significantly different in OD value and VSMCs migration area(F=48.052，P=0.007；F=63.085，P=0.002)；IGF-1+YWPC group was higher than YWPC group in OD value and VSMCs migration area(P<0.05)；IGF-1+Hcy group and IGF-1+YWPC group were not significantly different in OD value and VSMCs migration area(P>0.05).After adding IGF-1 for 48 hours，the four groups were significantly different in the number of cells that penetrated through the transwell membrane and p-AKT/AKT(F=55.941，P=0.008；F=65.011，P=0.005)；IGF-1+YWPC group was higher than YWPC group in the number of cells that penetrated through the transwell membrane and p-AKT/AKT(P<0.05)；IGF-1+Hcy group and IGF-1+YWPC group were not significantlydifferent in the number of cells that penetrated through the transwell membrane and p-AKT/AKT(P>0.05).ConclusionYWPC inhibits Hcy induced VSMCs proliferation and migration by suppressing Pi3K/AKT signaling pathway.

【Key words】Polyphenols；Muscle，smooth，vascular；Pi3K/AKT

基金項目：浙江省自然科學基金資助項目(LY14H020002)；紹興市科技局項目(2013B70072)

通信作者：郭航遠，312000浙江省紹興市人民醫院心內科 浙江大學紹興醫院；E-mail：ghangyuan@hotmail.com

【中圖分類號】R 543.31

【文獻標識碼】A

doi：10.3969/j.issn.1007-9572.2016.14.015

(收稿日期：2015-12-01；修回日期：2016-02-04)