新型GH5家族β-甘露聚糖酶的基因挖掘及表達鑒定

唐存多，史紅玲，蔚曉華，張 梅，唐青海，岳 超，姚倫廣，夏 敏，闞云超,*（.南陽師范學院 昆蟲生物反應器河南省工程實驗室，河南 南陽 4706；.南陽師范學院生命科學與技術學院，河南 南陽 4706；.蓬萊市市場監督管理局，山東 蓬萊 65600）

新型GH5家族β-甘露聚糖酶的基因挖掘及表達鑒定

唐存多1，史紅玲1，蔚曉華2，張 梅3，唐青海1，岳 超1，姚倫廣1，夏 敏2，闞云超1,*
（1.南陽師范學院 昆蟲生物反應器河南省工程實驗室，河南 南陽 473061；2.南陽師范學院生命科學與技術學院，河南 南陽 473061；3.蓬萊市市場監督管理局，山東 蓬萊 265600）

為了獲得性能優良的新型β-甘露聚糖酶，本研究采用基因挖掘技術從米曲霉（Aspergillus oryzae）RIB40基因組中挖掘到了2 個假定的新型 GH5家族β-甘露聚糖酶基因，分別命名為Aoman5A和Aoman5B。對這兩條序列做了相關的生物信息學分析，同時借助pPIC9KM質粒將兩個酶的成熟肽編碼基因在Pichia pastoris GS115中實現了表達，并對表達產物進行了純化和鑒定。生物信息學分析的結果表明AoMan5A含有20 個氨基酸殘基的信號肽，而AoMan5B含有21 個氨基酸殘基的信號肽和12 個氨基酸殘基的前導肽；序列比對的結果顯示兩個酶與目前已報道的序列最高的同源性分別為68%和79%，且AoMan5A的N端還攜帶有一個1家族的CBM；三維結構預測的結果顯示，兩者均符合（α/β）8的TIM-桶狀結構。表達鑒定的結果表明，在同樣表達條件下，reAoMan5A和reAoMan5B上清液的酶活力分別為2.9、12.5 IU/mL；純化后它們的酶比活力分別為8.3、104.2 IU/mg，前者的最適溫度為35 ℃，而后者的最適溫度為50 ℃，pH值特性的測定結果表明這兩種酶均為酸性酶。硫酸-苯酚法測得reAoMan5A和reAoMan5B的糖含量分別為 25.4%和12.6%，表明這兩種重組酶均經過了糖基化修飾。本研究獲得了兩種新型的β-甘露聚糖酶，比較分析了它們的序列特征，并實現了它們的異源表達，為β-甘露聚糖酶的進一步研究及應用奠定了堅實的基礎，也為其他新型酶的基因挖掘提供了可資借鑒的經驗。

β-甘露聚糖酶；基因挖掘；生物信息學分析；米曲霉；蛋白表達

β-甘露聚糖酶是一類能夠水解甘露聚糖的酶的總稱，近年來研究較多的主要是β-1,4-內切甘露聚糖酶[1-2]。基于序列同源性及疏水簇分析，β-甘露聚糖酶可以被歸為糖苷水解酶（glycoside hydrolase，GH）第5、26和113家族，而報道最多、研究最廣的主要是GH5家族的β-甘露聚糖酶[3-4]。β-1,4-內切甘露聚糖酶在β-1,4-內切葡聚糖酶的協同作用下，可以高效地水解魔芋粉制備低聚甘露糖。迄今為止，盡管已有許多關于生物催化法制備低聚甘露糖的研究，但它的生產成本仍然居高不下。這主要歸因于生產所需關鍵酶的催化活性較低、生產和使用成本較高以及在高溫環境下的穩定性較差等[5]。如何獲得催化活性高、熱穩定性好的優良β-甘露聚糖酶，已成為企業和科研人員當前所面臨的巨大挑戰，也是降低生物催化法制備低聚甘露糖的生產成本所必須突破的瓶頸[6]。自然界中蘊藏著豐富的未被發掘的新型酶資源，如何去發掘這些未知的酶類并加以適當的改造以滿足工業化生產的需求，已漸漸吸引了廣大科研工作者的關注[7]。

迄今已有2 000多個微生物基因組信息被公開報道，而且這些數據仍在呈指數增長[8]，這些日益豐富的基因組信息為新酶的發掘提供了豐富的資源[9]。“基因挖掘（genome mining）”這一術語已被用于多種領域，主要是指開發基因組信息以發現一些新的過程、靶點和產物[10-11]。基因挖掘技術可以實現從基因組數據庫到真實酶數據庫的跨越，進一步豐富了可被利用或改造的酶資源[7,12]。近年來，已有許多利用基因挖掘技術發現新酶的報道。Zhu Dunming等[13]借助基因挖掘技術，先搜索到98 個預測的腈水解酶序列，然后結合保守序列比對和氨基酸長度控制等理性的設計，最后成功獲得了來源于慢生大豆根瘤菌（Bradyrhizobium japonicum）USDA110的扁桃腈水解酶。Barriuso等[14]利用保守模塊搜索、進化樹構建及序列同源比對生物信息學分析的手段，從聯合基因組研究所（Joint Genome Institute，JGI）公布的128 個真菌基因組中尋找到了6 個具有固醇酯酶或脂肪酶活性的假定蛋白。本研究試圖借助基因挖掘技術從已報道的基因組信息中挖掘新型、假定的GH5家族β-甘露聚糖酶基因，并對獲得的序列進行相應的生物信息學分析及表達鑒定，為后續的理性改造、高效表達及其應用奠定堅實的基礎。

1 材料與方法

1.1 材料

1.1.1 菌株與質粒

A. oryzae RIB40菌株購自中國工業微生物菌種保藏中心；E. coli JM109菌株昆蟲生物反應器河南省工程實驗室保藏；pMD19-T載體購自大連寶生物有限公司；pPIC9KM質粒和Pichia pastoris GS115菌株由江南大學醫學院鄔敏辰教授饋贈。

1.1.2 試劑

UNIQ-10柱式Trizol總RNA抽提試劑盒 生工生物工程（上海）股份有限公司；DNase I和RevertAid First Strand cDNA Synthesis Kit 美國賽默飛公司；Multi-Copy Pichia Expression Kit Invitrogen公司；Premix Ex Taq Hot Start Version、GXL高保真DNA聚合酶和DNA連接試劑盒 寶生物工程（大連）有限公司；限制性內切酶Xho I、EcoR I和Sal I New England Biolabs公司；角豆膠 美國Sigma公司；質粒小量提取和PCR產物純化試劑盒 美國Axygen公司；其他試劑均為國產或進口分析純。

1.1.3 常用培養基

液體種子培養基：魔芋粉5 g/L、玉米粉10 g/L、豆餅粉30 g/L、硫酸銨5 g/L、磷酸二氫鉀3 g/L、氯化鈣1 g/L、硫酸鎂1 g/L，自然pH值，121 ℃滅菌20 min。

液體誘導培養基：由于需要收集菌體提RNA，所以培養基里面盡量不能出現固形物，先將4 g麩皮和6 g豆餅粉加200 mL水煮30 min，紗布過濾后將汁液定容至200 mL；5 g/L魔芋粉、體積分數50%麩皮汁、5 g/L硫酸銨、3 g/L磷酸二氫鉀、1 g/L氯化鈣、1 g/L硫酸鎂，自然pH值（加水時預留出10%的接種量），121 ℃滅菌20 min。LB、YPD、MD、BMGY和BMMY培養基的配制參見Multi-Copy Pichia Expression Kit操作手冊。

1.1.4 常用網站及軟件

DNAMAN 6.0：簡單的序列比對及分析；BioEdit：測序彩圖的分析；Oligo 7：引物設計；Geneious 4.7.5：基因或蛋白質序列的存儲與管理；Modeller 9.9：蛋白質3-D結構的模擬；PyMOL和Discovery Studio 3.0 Client：蛋白質3-D結構的閱讀與分析；CBS Prediction Servers（http://www.cbs.dtu.dk/ services/）：信號肽、前導肽及糖基化位點的預測；美國國家生物信息中心（National Center of Biotechnology Information，NCBI）（http://www. ncbi.nlm. nih.gov/）和CAZy（http://www.cazy.org/）數據庫：蛋白質、基因序列及蛋白質3-D結構的搜索。

1.2 方法

1.2.1 新型β-甘露聚糖酶的基因挖掘

以研究比較透徹、催化活性較高的GH5家族β-甘露聚糖酶AoMan5A的蛋白序列為查詢序列進行BLAST分析，從查詢的結果中找出一系列基因組信息來源的且未經表達鑒定、假定的GH5家族β-甘露聚糖酶基因。對這些序列進行開放讀碼框的預測，并進行序列比對分析，以期在某一微生物基因組中找出2 個目的β-甘露聚糖酶序列，其中一個含有碳水化合物結合結構域（carbohydratebinding module，CBM），另一個不含CBM。本研究最終選定了2 個A. oryzae RIB40基因組中未經表達鑒定的GH5家族的β-甘露聚糖酶為研究對象，2 個基因分別命名為Aoman5A和Aoman5B，對應的酶命名為AoMan5A和AoMan5B。

1.2.2 新型β-甘露聚糖酶的基因克隆

基于上述基因挖掘的結果，分別設計兩對特異性引物，引物序列如表1所示。引物委托生工生物工程（上海）股份有限公司合成。采用UNIQ-10柱式Trizol總RNA抽提試劑盒提取A. oryzae RIB40的總RNA，總RNA經DNase I酶處理后用RevertAid First Strand cDNA Synthesis Kit進行cDNA第一條鏈的合成，然后分別用上述的特異性引物進行目的基因的反轉錄聚合酶鏈式反應（reverse transcription polymerase chain reaction，RT-PCR）擴增。擴增的目的片段經電泳純化回收后，連接到pMD19-T載體上，并轉化到宿主菌JM109。經藍白斑篩選及菌落聚合酶鏈式反應驗證后，陽性克隆子送往生工生物工程（上海）股份有限公司進行測序。克隆及測序的步驟均采用高保真的DNA聚合酶做了3 次平行實驗。

表1 新型GHH55 β-甘露聚糖酶基因克隆及表達所需的引物Table 1 Sequences of the primers used for cloning and expression of novel GGHH55 β-mannannaasseess

1.2.3 新型β-甘露聚糖酶序列的生物信息學分析

將上述獲得基因序列先利用DNAMAN 6.0軟件進行翻譯，獲得氨基酸序列。然后參照Tang Cunduo等[15]的方法分別對獲得的序列進行理論的理化性質、信號肽、前導肽、糖基化位點及三維結構等的預測和分析，為后續的異源表達及酶學特性分析奠定理論基礎。

1.2.4 β-甘露聚糖酶基因在畢赤酵母中的表達

基于上述信號肽和成熟肽預測的結果，分別設計表達AoMan5A和AoMan5B成熟肽的引物，引物序列如表1所示，并委托生工生物工程（上海）股份有限公司進行合成。重組畢赤酵母的構建、篩選、表達及產物的純化參見唐存多等[16]所發表的文獻，重組表達質粒的線性化用Sal I進行。

1.2.5 β-甘露聚糖酶酶活性及蛋白分析

采用改進的二硝基水楊酸（dinitrosalicylic acid，DNS）法測定樣品β-甘露聚糖酶活性[2]。2.4 mL 0.5 g/100 mL角豆膠溶液（pH 3.6）加入0.1 mL適當稀釋的酶液，40 ℃條件下反應10 min，加入2.5 mL DNS試劑，沸水浴中顯色7 min，測定OD540nm值。在上述反應條件下，每分鐘產生1 μmol還原糖（以甘露糖計）所需的酶量定義為1 個酶活力單位（IU）。采用Bradford法[17]測定蛋白的濃度，以牛血清白蛋白為參照標準。用12.5%的分離膠進行十二烷基硫酸鈉-聚丙烯酰胺凝膠電泳（sodium dodecyl sulfate-polyacrylamide gel electrophoresis，SDS-PAGE）分析[18]，并用Quantity One軟件計算目的蛋白的表觀分子質量。采用硫酸-苯酚法測定純化后重組酶的糖含量。

1.2.6 溫度對β-甘露聚糖酶活性的影響

分別在30～55 ℃條件下，按1.2.5節中的方法測定酶活性，以最高酶活力為100%計算相對酶活力，Topt表示酶的最適溫度。將酶分別在25～55 ℃條件下保溫1 h后，再在各自的Topt條件下測定其酶活力，以未處理的酶活力為100%計算殘留酶活力。

1.2.7 pH值對β-甘露聚糖酶活性的影響

分別在pH值為2.5～7.0的條件下，按1.2.5節中的方法在各自的Topt條件下測定其酶活力，以最高酶活力為100%計算相對酶活力。將酶分別與pH 2.5～7.0的緩沖液按體積比1∶1混合，在4 ℃條件下保溫1 h后，再在各自的Topt條件下測定其酶活力，以未處理的酶活力為100%計算殘留酶活力。

2 結果與分析

2.1 β-甘露聚糖酶的基因克隆

圖1 1 β-甘露聚糖酶基因的RT-PCR擴增PCRFig. 1 RT-PCR amplifi cation of β-mannanase genes

根據1.2.2節中的方法，分別以AoMan5A-F和AoMan5A-R為引物RT-PCR擴增出編碼AoMan5A的cDNA片段，以AoMan5B-F和AoMan5B-R為引物RT-PCR擴增出編碼AoMan5B的cDNA片段，PCR產物經1%瓊脂糖凝膠電泳檢測的結果如圖1所示。泳道1為AoMan5A產物的電泳圖譜，在1 400 bp左右的位置出現了明顯的特異性條帶，與預期的大小一致；而泳道2為AoMan5B產物的電泳圖譜，在1 200 bp左右的位置出現了明顯的特異性條帶，同樣也與預期的大小一致。由于PCR產物均較純，為了保證回收產物的濃度，因此直接進行了PCR產物純化回收。回收的產物連接至pMD19-T載體，經藍白斑篩選和菌落PCR鑒定后送生工生物工程（上海）股份有限公司進行測序。經生工生物工程（上海）股份有限公司測出的序列與基因組中推測的編碼序列基本一致，其中Aoman5A的CDS序列為1 392 個堿基，編碼463 個氨基酸殘基，與基因組數據庫中的序列完全一致；而Aoman5B的CDS序列為1 137 個堿基，編碼378 個氨基酸殘基，與基因組數據庫登錄的序列存在2 個堿基的差異，并呈現出1 個氨基酸的差異。

2.2 β-甘露聚糖酶序列的生物信息學分析

2.2.1 信號肽及糖基化位點的預測及分析

利用SignalP 4.1服務器[19]對推測出的AoMan5A氨基酸序列進行信號肽預測。結果顯示AoMan5A含有一段20 個氨基酸殘基的信號肽。利用ProP 1.0 Server預測AoMan5A的前導肽序列，結果顯示AoMan5A中無前導肽序列。利用NetNGlyc 1.0 Server對AoMan5A進行潛在的N-連接的糖基化位點預測，結果表明AoMan5A中存在1 個潛在的N-連接的糖基化位點Asn87-Lys88-Ser89。利用NetOGlyc 4.0 Server對AoMan5A進行潛在的O-連接的糖基化位點預測，結果表明AoMan5A中存在26 個潛在的O-連接的糖基化位點。采用同樣的方法對AoMan5B的序列也進行信號肽、前導肽及糖基化位點的預測分析。信號肽預測的結果顯示AoMan5B中有一段21 個氨基酸殘基的信號肽。此外，前導肽預測的結果也表明在AoMan5B中還存在一段12 個氨基酸殘基的前導肽。糖基化位點預測的結果顯示，AoMan5B中存在1 個潛在的N連接的糖基化位點Asn328-Thr329-Thr330和1 個潛在的O-連接的糖基化位點。

2.2.2 序列的同源比對及分析

利用DNAMAN 6.0軟件分別將Aoman5A和Aoman5B的堿基序列翻譯成了氨基酸序列，并分別命名為AoMan5A和AoMan5B。將AoMan5A的成熟肽序列進行BLAST分析，發現與其同源性較高的為1 株Aspergillus fumigatus Af293來源的GH5家族β-甘露聚糖酶序列，其同源性為68%；而與AoMan5B的同源性最高的為Aspergillus terreus NIH2624來源的GH5家族β-甘露聚糖酶序列，其同源性為79%。將這2 個序列與本研究得比較透徹的AoMan5A的序列一起進行多序列比對，可以找出它們7 個最為保守的氨基酸殘基，分別為R53、N167、E168、H241、Y243、E275和D312，其中E168和E275為2 個假定的Glu催化殘基。此外，在AoMan5A的N端存在1 個明顯的CBM和連接肽。對CBM作進一步的分析，發現它與CBM1家族的序列同源性較高，與Lu Haiqiang等[20]報道的結果一致。

2.2.3 理論理化性質的預測及分析

利用Protparam服務器分別對AoMan5A和AoMan5B成熟肽的理化性質進行了預測，結果顯示它們的理論分子質量分別為48 078.2 D和38 030.8 D，理論等電點pI值分別為5.05和4.64，分子式分別為C2135H3203N559O679S16和C1711H2507N437O536S8；蛋白的不穩定指數分別為25和14.96，均是較穩定的蛋白；另外，它們的脂溶性指數分別為61.26和68.43，總的平均疏水指數分別為－0.454和－0.354，均為親水蛋白。

2.2.4 高級結構的預測及分析

利用Predict Protein服務器分別預測了AoMan5A和AoMan5B成熟肽的二級結構，結果顯示兩者均由8 個α-螺旋、8 個β-折疊片和一些無規卷曲組成。以PDB號為3WH9、1QNO和3WFL的3 個3-D結構為模板，利用Modeller 9.9軟件[21]分別對AoMan5A和AoMan5B進行多模板的同源建模，并將獲得的2個3-D結構用Pymol軟件進行比較分析，結果如圖2所示。AoMan5A和AoMan5B的氨基酸序列盡管相差較大，但除去AoMan5A中的CBM序列以后，兩者的3-D結構非常相似，均為典型的（α/β）8-TIM桶狀結構，兩者推測的催化殘基在空間的位置也能重疊。此外，3-D結構的表面模型顯示，2個推測的催化殘基恰好位于凹槽的內側，符合典型的內切酶的特征[22]。這些特征也進一步證明了獲得的2個新型β-甘露聚糖酶為GH5家族和GH clan-A超家族的成員[23]。

圖2 AoMan5A與AoMan5B三維結構的比對Fig. 2 Alignment of 3-D structure between AoMan5A and AoMan5B

2.3 β-甘露聚糖酶基因在畢赤酵母中的表達

按照1.2.4節中的方法將AoMan5A和AoMan5B成熟肽的編碼基因整合入了P. pastoris GS115的基因組中，構建出了含有目的基因的重組畢赤酵母GS115/Aoman5A和GS115/Aoman5B。利用5’-AOX和3’-AOX通用引物對GS115、GS115/Aoman5A和GS115/Aoman5B進行菌落PCR鑒定的結果如圖3所示。泳道2和3為GS115/ Aoman5A菌落PCR產物的圖譜，除了有2 100 bp左右醇氧化酶基因片段外，分別還有一條1 700 bp左右的條帶；而泳道4和5為GS115/Aoman5B菌落PCR產物的圖譜，除了有2 100 bp左右醇氧化酶基因片段外，分別還有一條1 600 bp左右的條帶；這也表明目的基因均已成功整合入酵母基因組中。

圖3 畢赤酵母的菌落PCR鑒定Fig. 3 PCR identifi cation of individual bacterial colonies from Pichia pastoris

重組酵母GS115/Aoman5A和GS115/Aoman5B經體積分數1%甲醇誘導96 h，離心后測發酵上清液的酶活力，篩選出重組β-甘露聚糖酶reAoMan5A和reAoMan5B表達水平最高的重組子，篩選重組β-甘露聚糖酶reAoMan5A和reAoMan5B表達水平最高的克隆，其酶活力分別達到2.9 IU/mL和12.5 IU/mL。表達上清液經(NH4)2SO4沉淀、超濾除鹽、濃縮及Sephadex G-75凝膠過濾，獲得電泳純的reAoMan5A和reAoMan5B，如圖4所示。利用光密度掃描法估算得出純化后重組酶的純度大于95%，其表觀分子質量分別約為68 kD和41 kD，明顯大于它們的理論分子質量。reAoMan5A和reAoMan5B糖含量測定的結果分別為25.4%和12.6%，結合糖基化位點預測的結果，進一步說明這2 種重組酶均經過了糖基化修飾，可以初步確定表觀分子質量的偏大是由糖基化所致。在pH 3.6和40 ℃時測得reAoMan5A和reAoMan5B的酶比活力分別為8.3 IU/mg和104.2 IU/mg，在此條件下后者的酶比活力明顯高于前者。

2.4 溫度對重組酶活力的影響

reAoMan5A和reAoMan5B最適溫度（Topt）的測定結果如圖5A所示，前者的最適溫度為35 ℃，后者為50 ℃；它們熱穩定性的結果如圖5B所示，reAoMan5A的熱穩定性較差，40 ℃保溫1 h后殘留酶活力僅為10.6%；而reAoMan5B在45 ℃保溫1 h后殘留酶活力仍能維持在85%以上。

圖5 reAoMan5A和reAoMan5B的溫度特性分析Fig. 5 Temperature characteristic analysis of the expressed reAoMan5A and reAoMan5B

2.5 pH值對重組酶活力的影響

圖6 reAoMan5A和reAoMan5B的pH值特性分析Fig. 6 pH characteristic analysis of the expressed reAoMan5A and reAoMan5B

reAoMan5A和reAoMan5B最適pH值的測定結果如圖6A所示，兩者的最適pH值均偏酸性，屬于酸性β-甘露聚糖酶，前者的最適pH值為4.0，后者的最適pH值為3.5。它們pH穩定性的結果如圖6B所示，在pH 3.0～6.0之間均較穩定，殘留酶活力都可維持在85%以上。

3 討 論

隨著測序技術的不斷發展，微生物基因組測序的成本越來越低，已報道的微生物基因組序列也日趨增多，從海量的微生物基因組信息中挖掘新酶基因將會成為一種非常高效的獲取新酶基因的手段，迄今為止也出現了大量的利用基因挖掘技術獲得新酶基因的報道[12,24-25]。本研究利用基因挖掘技術從已報道的A. oryzae RIB40基因組序列中挖掘到了2 個GH5家族的β-甘露聚糖酶基因，序列比對的結果顯示它們與已報道的序列相似度最高的也分別僅為79%和68%，能夠定義為2 個新酶基因。將本課題組克隆出的序列與A. oryzae RIB40基因組中的序列進行了比較，Aoman5A的基因序列與基因組數據庫中的序列完全一致，而Aoman5B的基因序列與基因組數據庫中的序列存在2 個堿基的差異，并呈現出1 個氨基酸殘基的差異。由于本實驗過程中所有的逆轉錄和PCR均是采用高保真的酶，而且每一個克隆都是重復了3 次，因此，堿基的差異基本可以排除是由PCR引入的，而是克隆β-甘露聚糖酶基因所用的米曲霉可能與別人測定基因組的米曲霉的確存在一定的差異。此外，AoMan5A的N端存在一個天然的CBM結構，與Benech等[26]報道的序列結構相似，這對研究天然CBM對β-甘露聚糖酶特性的影響具有很大的幫助。

常用的pPIC9K和pPICZαA質粒由于受酶切位點的限制，均不能在畢赤酵母中實現帶有天然N端蛋白的表達[27]，因此利用它們表達出的重組酶不利于酶學特性的研究。本研究利用改造過的pPIC9KM質粒能夠實現AoMan5A和AoMan5B基因在畢赤酵母中的天然N端表達，研究酶學特性時能夠消除N端多余殘基對酶學特性的影響。AoMan5A基因在畢赤酵母中的表達量較高，但重組酶reAoMan5A的酶比活力非常低，僅有8.3 IU/mg，而且它的最適溫度很低、熱穩定性也較差，這可能與CBM的存在有一定關系。因為reAoMan5A中N端的CBM存在著大量的Ser和Gly，它們會使蛋白的柔性增強、熱穩定性降低[28]。在下一步的研究中可以考慮將CBM去除或者將它移接至AoMan5A催化域的C端，進一步研究CBM對β-甘露聚糖酶酶學特性的影響。此外，盡管reAoMan5B的酶比活力明顯高于reAoMan5A，但它在畢赤酵母中的表達量過低，因此在表達上清液中的酶活力也僅為12.5 IU/mL，明顯低于宇佐美曲霉和黑曲霉來源的β-甘露聚糖酶基因在畢赤酵母中的表達水平[2,29]，它的表達條件還有待進一步的優化。重組酶的表觀分子質量與理論分子質量存在明顯的差異，鑒于糖基化位點預測及糖含量測定的結果，可以初步確定分子質量的差異是由糖基化所致。

盡管本研究沒能獲得高活性和高熱穩定性的重組β-甘露聚糖酶，但獲得的結果仍能為后續的高效表達、理性改造及其應用奠定一些基礎。此外，本研究的成功開展進一步豐富了基因挖掘技術的成功應用的案例，可以為其他酶的基因挖掘提供可資借鑒的經驗。

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Gene Mining, Expression and Characterization of Novel GH5 Family β-Mannanases

TANG Cunduo1, SHI Hongling1, YU Xiaohua2, ZHANG Mei3, TANG Qinghai1, YUE Chao1, YAO Lunguang1, XIA Min2, KAN Yunchao1,*
(1. Henan Provincial Engineering Laboratory of Insect Bio-reactor, Nanyang Normal University, Nanyang 473061, China; 2. School of Life Science and Technology, Nanyang Normal University, Nanyang 473061, China; 3. Penglai Market Supervisory Authority, Penglai 265600, China)

In order to obtain novel β-mannanases with excellent performance, two putative novel GH5 family β-mannanase genes were excavated from the Aspergillus oryzae RIB40 genome by genome mining, named as Aoman5A and Aoman5B, respectively. The bioinformatic analysis of the two gene sequences was conducted using corresponding softwares or web server, and the genes encoding two mature peptides were expressed in Pichia pastoris GS115 with the aid of plasmid pPIC9KM, and then the expressed products were purifi ed and identifi ed. The results of bioinformatic analysis showed that AoMan5A contained a signal peptide with 20 amino acid residues, while AoMan5B contained a signal peptide with 21 amino acid residues and a propeptide with 12 amino acid residues. The results of sequence alignment displayed that the sequences of two enzymes had the highest similarity of 68% and 79% with the reported sequences, and the N-terminal of AoMan5A also carried a GH1 family CBM. The results of 3-D structure prediction showed that both of them were in accordance with the (α/β)8TIM-barrel structure. Under the same expression condition, the enzymes activities in supernatants from reAoMan5A and reAoMan5B were 2.9 and 12.5 IU/mL, respectively, with specific activity of 8.3 and 104.2 IU/mg, respectively, after purification. The optimum temperature for the former was 35 ℃, while that for the later was 50 ℃. It turned out that both of them were acidic enzymes. The carbohydrate contents of reAoMan5Aand reAoMan5B were determined to be 25.4% and 12.6% using the phenol sulfuric acid method indicating both to be glycosylated. This study will lay a solid foundation for further research and application of β-mannanases, and also provide a referential guidance for the gene mining of other novel enzymes.

β-mannanase; genome mining; bioinformatic analysis; Aspergillus oryzae; protein expression

10.7506/spkx1002-6630-201611016

Q814

A

1002-6630（2016）11-0090-07

唐存多, 史紅玲, 蔚曉華, 等. 新型GH5家族β-甘露聚糖酶的基因挖掘及表達鑒定[J]. 食品科學, 2016, 37(11): 90-96. DOI:10.7506/spkx1002-6630-201611016. http://www.spkx.net.cn TANG Cunduo, SHI Hongling, YU Xiaohua, et al. Gene mining, expression and characterization of novel GH5 family β-mannanases[J]. Food Science, 2016, 37(11): 90-96. (in Chinese with English abstract) DOI:10.7506/spkx1002-6630-201611016. http://www.spkx.net.cn

2015-08-11

國家自然科學基金青年科學基金項目（31401989）；河南省高等學校重點科研計劃項目（15A416008）

唐存多（1987—），男，講師，博士，主要從事工業酶與生物催化研究。E-mail：tcd530@nynu.edu.cn

*通信作者：闞云超（1974—），男，教授，博士，主要從事分子生物學研究。E-mail：kanyunchao@163.com