3種不同產(chǎn)地靈芝子實(shí)體粗多糖體外抗氧化活性比較研究

陳 杰,董 揚(yáng),魯吉珂,陳 強(qiáng),耿戰(zhàn)輝,張黎明,郝利民,*,賈士儒,*

(1.天津科技大學(xué),工業(yè)發(fā)酵微生物教育部重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,天津 300457;2.總后勤部軍需裝備研究所,北京 100010;3.鄭州大學(xué)生命科學(xué)學(xué)院,河南鄭州 450001)

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3種不同產(chǎn)地靈芝子實(shí)體粗多糖體外抗氧化活性比較研究

陳 杰1,董 揚(yáng)1,魯吉珂2,3,陳 強(qiáng)2,耿戰(zhàn)輝2,張黎明1,郝利民1,*,賈士儒1,*

(1.天津科技大學(xué),工業(yè)發(fā)酵微生物教育部重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,天津 300457;2.總后勤部軍需裝備研究所,北京 100010;3.鄭州大學(xué)生命科學(xué)學(xué)院,河南鄭州 450001)

采用2,2′-聯(lián)氮基雙(3-乙基苯并噻唑啉-6-磺酸)二銨鹽(ABTS)自由基清除法、1,1-二苯基-2-三硝基苯肼(DPPH)自由基清除法、羥基自由基清除法和鐵氰化鉀法4種方法,分別對3種不同產(chǎn)地(安徽金寨、吉林通化、吉林蛟河)靈芝子實(shí)體粗多糖的體外抗氧化活性進(jìn)行評價(jià)。結(jié)果表明,3種靈芝子實(shí)體粗多糖均具有抗氧化能力。安徽金寨靈芝子實(shí)體粗多糖對ABTS自由基、DPPH自由基的清除能力最強(qiáng),其對應(yīng)EC50值分別為1.50 mg/mL和2.09 mg/mL,同時(shí)也具有最強(qiáng)的總還原力;吉林通化靈芝子實(shí)體粗多糖對羥基自由基的清除能力最強(qiáng),其EC50值是2.13 mg/mL;吉林蛟河靈芝子實(shí)體粗多糖的體外抗氧化活性均最低。因此,不同產(chǎn)地靈芝子實(shí)體粗多糖的抗氧化活性不同。

靈芝子實(shí)體,粗多糖,抗氧化活性,自由基

靈芝(Ganodermalucidum)是擔(dān)子菌綱多孔菌科靈芝屬真菌,在中國古稱瑞草,也叫長生草,仙草、靈草等,是我國傳統(tǒng)的扶正固本、滋補(bǔ)強(qiáng)壯的名貴中藥[1]。靈芝的主要活性組份有多糖類、三萜類、多肽類和核苷類等。多糖是由至少10個(gè)以上的單糖結(jié)合組成的聚合糖高分子碳水化合物,是生命有機(jī)體的重要組成部分。靈芝多糖是靈芝的主要活性成份,具有抗腫瘤、抗炎[2]、抗氧化[3]、調(diào)節(jié)機(jī)體免疫[4]等多種生物活性。近年來,靈芝多糖的抗氧化活性已有廣泛的研究。游麗君等[5]比較了傳統(tǒng)熱水提取法、超聲波法、超聲波結(jié)合纖維素酶法和超聲波結(jié)合胰酶法四種方法提取的靈芝多糖的抗氧化活性差異,結(jié)果表明超聲波結(jié)合胰酶法提取的靈芝多糖具有較好的抗氧化活性。游育紅等[6]研究了靈芝多糖對人臍靜脈內(nèi)皮細(xì)胞株ECV304氧化損傷的保護(hù)作用,結(jié)果顯示靈芝多糖可減少氧自由基對細(xì)胞器的損傷,能很好地抑制細(xì)胞凋亡,證實(shí)了靈芝多糖具有保護(hù)細(xì)胞氧化損傷的作用。盡管已有研究表明靈芝多糖具有良好的抗氧化作用,但對不同產(chǎn)地靈芝子實(shí)體多糖體外抗氧化活性的比較研究相對較少。因此,從不同產(chǎn)地的靈芝子實(shí)體中提取多糖,并對其體外抗氧化活性進(jìn)行比較,可為不同產(chǎn)地靈芝多糖功能食品的進(jìn)一步開發(fā)提供參考。

1 材料與方法

1.1 材料與儀器

靈芝子實(shí)體 均為人工栽培的赤芝,分別采自安徽金寨靈芝種植基地、吉林通化靈芝種植基地、吉林蛟河靈芝種植基地。

葡萄糖、磷酸二氫鈉、磷酸氫二鈉、水楊酸 天津市北方天醫(yī)化學(xué)試劑廠;過硫酸鉀、30%H2O2、三氯乙酸、2,6-二叔丁基-4-甲基苯酚(BHT)、維生素C(VC) 國藥集團(tuán)化學(xué)試劑有限公司;無水乙醇 天津市四通化工廠;鐵氰化鉀 天津大茂化學(xué)試劑廠;氯化鐵 天津市雙船化學(xué)試劑廠;硫酸亞鐵 天津市新欣化工廠;苯酚 北京鼎國生物有限責(zé)任公司;2,2′-聯(lián)氮基雙(3-乙基苯并噻唑啉-6-磺酸)二銨鹽(ABTS)、1,1-二苯基-2-三硝基苯肼(DPPH) 美國Sigma-Aldirch公司。以上試劑均為分析純。

UVmini-1240型紫外可見分光光度計(jì) 島津國際貿(mào)易(上海)有限公司;JA12002型電子天平 上海精科天平儀器廠;RE-3000型旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)儀 上海亞榮生化儀器廠;QL-902型漩渦振蕩器 海門市其林貝爾儀器制造有限公司;TF-J型冷凍干燥機(jī) 北京諾比鄰電子信息技術(shù)有限公司;TDA-8002型恒溫水浴鍋 天津市中環(huán)實(shí)驗(yàn)電爐有限公司;SBS Z100型數(shù)控計(jì)滴自動部份收集器 上海滬西儀器總廠;SH-D(Ⅲ)型真空泵 河南予華儀器有限公司;WND-200型高速中藥粉碎機(jī) 浙江省蘭溪市偉能達(dá)電器有限公司;Rapid N CUBE型杜馬斯燃燒定氮儀 德國Elementar公司。

1.2 實(shí)驗(yàn)方法

1.2.1 標(biāo)準(zhǔn)曲線的繪制 以葡萄糖為標(biāo)準(zhǔn)品,采用苯酚硫酸法繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線[7]。

1.2.2 多糖得率的測定 采用付立忠[8]的方法提取靈芝子實(shí)體粗多糖:靈芝子實(shí)體在60 ℃下烘干至恒重,粉碎,過20目篩。準(zhǔn)確稱取0.5 g樣品,加入35 mL蒸餾水,沸水浴加熱3 h,冷卻至室溫后離心,收集上清液備用,殘?jiān)瓷鲜龇椒ㄟM(jìn)行二次提取。合并兩次上清液,準(zhǔn)確吸取5.0 mL置于50 mL離心管中,加入20 mL無水乙醇,混勻后在4 ℃下靜置約6 h。然后4000 r/min離心20 min,棄去上清液,取沉淀并用無水乙醇潤洗3次。再將沉淀用水充分溶解,定容到25 mL。吸取2.0 mL樣品,加入6%苯酚1.0 mL,混勻后加入5.0 mL濃硫酸,拌勻。室溫放置5 min,然后在沸水浴中保溫15 min,用自來水冷卻5 min,混勻后于波長490 nm處測定吸光度。根據(jù)苯酚硫酸法標(biāo)準(zhǔn)曲線,先計(jì)算出提取液中的多糖質(zhì)量濃度,然后按式(1)計(jì)算出靈芝子實(shí)體的多糖得率。

多糖得率(%)=多糖質(zhì)量濃度×體積×稀釋倍數(shù)/原料質(zhì)量×100

式(1)

1.2.3 粗多糖中總糖含量的測定 分別稱取3種靈芝子實(shí)體粗多糖0.005 g,加適量蒸餾水溶解,再定容到100 mL,搖勻,即得供試品溶液。吸取2.0 mL樣品,按照1.2.2的方法進(jìn)行苯酚硫酸法測定。根據(jù)標(biāo)準(zhǔn)曲線計(jì)算出溶液的多糖質(zhì)量濃度,然后由式(2)計(jì)算出粗多糖中的總糖含量。

總糖含量(%)=多糖質(zhì)量濃度×體積×稀釋倍數(shù)/粗多糖質(zhì)量×100

式(2)

1.2.4 粗多糖中蛋白質(zhì)含量的測定 采用杜馬斯燃燒法[9]測定靈芝子實(shí)體粗多糖中蛋白質(zhì)的含量,方法如下:分別稱取3種靈芝子實(shí)體粗多糖約0.25 g,用錫箔紙包好,制成錫箔藥片,置于自動進(jìn)樣盤里。將杜馬斯定氮儀設(shè)置成如下條件:一級燃燒管溫度為960 ℃;二級燃燒管溫度為800 ℃;還原管溫度為815 ℃。樣品進(jìn)入儀器中,先在純氧條件下充分燃燒生成氮氧化合物,然后氮氧化合物在還原管中被還原為氮?dú)?進(jìn)入TC檢測器中檢測。根據(jù)儀器檢測得出測試樣品的總氮含量,按式(3)計(jì)算出粗多糖中的蛋白質(zhì)含量。

蛋白質(zhì)含量(%)=總氮含量×6.25

式(3)

1.2.5 粗多糖中水分含量的測定 分別稱取3種靈芝子實(shí)體粗多糖約2.0 g,按照GB/T 5009.3-2010《食品中水分的測定》中的減壓干燥法測定[10]。

1.2.6 粗多糖體外抗氧化活性的測定 將提取的靈芝子實(shí)體粗多糖凍干樣品分別配制成1.0、2.0、3.0、4.0、5.0 mg/mL的水溶液。陽性對照VC和BHT作同樣處理。

1.2.6.1 ABTS自由基清除能力測定 ABTS經(jīng)過硫酸鉀氧化后會生成穩(wěn)定的藍(lán)綠色陽離子自由基ABTS+·,其在734 nm處有最大吸收。自由基清除劑與ABTS+·發(fā)生反應(yīng)使反應(yīng)體系褪色,可根據(jù)褪色程度判斷其抗氧化能力[11]。

步驟如下:將相同體積的7 mmol/L的ABTS和 2.45 mmol/L過硫酸鉀混合,避光反應(yīng) 12～16 h,得到ABTS+·溶液。用水稀釋該溶液使其在734 nm下的吸光度值在(0.70±0.02)。試管中加入 0.5 mL靈芝子實(shí)體粗多糖溶液,然后加ABTS+·溶液定容到10 mL,搖勻,在室溫下放置6 min,于734 nm處測吸光度。以VC和BHT作為陽性對照。按式(4)計(jì)算ABTS自由基清除率:

式(4)

式中:A0-空白對照吸光度(0.5mL水,加ABTS+·溶液定容到10mL);Ai-樣品組吸光度(0.5mL樣品,加ABTS+·溶液定容到10mL);Aj-樣品本底吸光度(0.5mL樣品,加水定容到10mL)。

1.2.6.2DPPH自由基清除能力測定DPPH自由基是一種穩(wěn)定的以氮為中心的質(zhì)子自由基,可用來測定抗氧化劑的抗氧化能力。DPPH自由基乙醇溶液呈紫色,在517nm處有強(qiáng)烈吸收。自由基清除劑能提高電子與DPPH的孤對電子配對,使其溶液褪色,其褪色程度與其接受的電子呈定量關(guān)系,可根據(jù)褪色程度判斷抗氧化能力[12]。

步驟如下:試管中加入1.0mL0.6mmol/L的DPPH自由基乙醇溶液和1.0mL靈芝子實(shí)體粗多糖溶液,再用60%乙醇定容至10mL,混勻后避光反應(yīng)30min,于517nm處測吸光度。以VC和BHT作為陽性對照。按式(5)計(jì)算DPPH自由基清除率:

式(5)

式中:A0-空白對照吸光度(60%乙醇代替樣品溶液);Ai-樣品組吸光度;Aj-樣品本底吸光度(無水乙醇代替DPPH自由基溶液)。

1.2.6.3 羥基自由基清除能力測定 Fe2+和H2O2混合后會發(fā)生Fenton反應(yīng),產(chǎn)生·OH。當(dāng)加入水楊酸后,能有效地捕捉·OH產(chǎn)生紫紅色產(chǎn)物。該產(chǎn)物在510 nm處有強(qiáng)吸收,自由基清除劑的加入會與水楊酸競爭,從而使有色產(chǎn)物的生成量減少,采用固定反應(yīng)時(shí)間法,在510 nm處測定反應(yīng)液吸光度,便能確定被測物對羥基自由基的清除率[13]。

表1 靈芝子實(shí)體的粗多糖得率及其粗多糖組成(%)Table 1 Extraction yield and the composition of crude polysaccharide of three Ganoderma lucidum(%)

步驟如下:試管中依次加入9.0 mmol/L水楊酸-乙醇溶液1.0 mL、9.0 mmol/L FeSO4溶液1.0 mL、靈芝子實(shí)體粗多糖溶液1.0 mL。之后再加8.8 mmol/L H2O2溶液1.0 mL啟動反應(yīng),37 ℃水浴反應(yīng)30 min,在510 nm處測吸光度。以VC和BHT作為陽性對照。按式(6)計(jì)算羥基自由基清除率:

式(6)

式中:A0-空白對照吸光度(蒸餾水代替樣品溶液);Ai-樣品組吸光度值;Aj-樣品本底吸光度值(蒸餾水代替H2O2)。

1.2.6.4 總還原力測定 赤血鹽(K3Fe(CN)6)先被還原劑還原為黃血鹽(K4Fe(CN)6),然后黃血鹽與Fe3+反應(yīng),生成普魯士藍(lán)。普魯士藍(lán)的生成量可以通過測定700 nm處吸光度來表征,吸光度越大,普魯士藍(lán)的生成量越多,表明還原劑的總還原力越大。抗氧化劑是通過給出電子發(fā)揮總還原力進(jìn)而達(dá)到清除自由基的目的,總還原力越強(qiáng),其抗氧化能力就越強(qiáng)。因此,可以通過測定總還原力來表征其抗氧化能力[14]。

步驟如下:試管中依次加入靈芝子實(shí)體粗多糖溶液2.5 mL、鐵氰化鉀溶液(1.0%,w/v)2.5 mL、0.2 mol/L磷酸鹽緩沖液(pH6.6)2.5 mL,混合均勻。然后將混合液50 ℃水浴反應(yīng)20 min,接著向混合液中加入2.5 mL的三氯乙酸溶液(10%,w/v),5000 r/min離心10 min后取5.0 mL上清液,再加入0.5 mL的三氯化鐵溶液(0.1%,w/v)在700 nm處測吸光度。以VC和BHT作為陽性對照。按式(7)計(jì)算總還原力:

總還原力=Ai-Aj

式(7)

式中:Ai-樣品組吸光度值;Aj-樣品本底吸光度值(蒸餾水代替三氯化鐵溶液)。

1.2.7 統(tǒng)計(jì)分析方法 實(shí)驗(yàn)重復(fù)3次,實(shí)驗(yàn)結(jié)果用X±SD表示,實(shí)驗(yàn)數(shù)據(jù)采用SPSS11.0統(tǒng)計(jì)軟件進(jìn)行統(tǒng)計(jì)分析。

2 結(jié)果與分析

2.1 標(biāo)準(zhǔn)曲線的繪制

以葡萄糖為標(biāo)準(zhǔn)品,繪制苯酚硫酸法標(biāo)準(zhǔn)曲線,得線性回歸方程:A=0.0102C-0.0044,r=0.9988。式中,A為吸光度,C為葡萄糖質(zhì)量濃度/(mg/mL),吸光度和葡萄糖質(zhì)量濃度在0～90 mg/mL范圍內(nèi)有良好的線性關(guān)系。

2.2 靈芝子實(shí)體的粗多糖得率及其組成

靈芝多糖是靈芝中的主要活性物質(zhì),也是靈芝產(chǎn)品質(zhì)量控制的重要指標(biāo)[15]。3種靈芝子實(shí)體的粗多糖得率及其組成結(jié)果見表1。由表1可知,在實(shí)驗(yàn)提取條件下,安徽金寨靈芝子實(shí)體的粗多糖得率(1.55%)高于另外兩種靈芝子實(shí)體,吉林通化靈芝子實(shí)體的粗多糖得率最低,為1.38%。3種靈芝子實(shí)體粗多糖的總糖含量比較接近,在80%左右。水提粗多糖中常含有部分游離蛋白質(zhì)和糖蛋白,蛋白質(zhì)含量也是粗多糖的一個(gè)重要檢測指標(biāo)[16]。由于本研究中沒有除蛋白步驟,3種靈芝子實(shí)體粗多糖中均含有一定的蛋白質(zhì),但含量均不高,在5%左右。此外,3種靈芝子實(shí)體粗多糖均含有一定的水分,其中吉林蛟河靈芝子實(shí)體粗多糖的水分含量最高(10.57%)。

2.3 靈芝子實(shí)體粗多糖體外抗氧化活性

2.3.1 ABTS自由基清除能力 不同濃度下靈芝子實(shí)體粗多糖對ABTS自由基的清除率如圖1所示。由圖1可知,3種靈芝子實(shí)體粗多糖對ABTS自由基都具有清除作用,且其清除能力呈現(xiàn)一定的劑量依賴性。在濃度為2 mg/mL時(shí),安徽金寨靈芝子實(shí)體粗多糖、吉林通化靈芝子實(shí)體粗多糖對ABTS自由基的清除率都達(dá)到50%以上,而吉林蛟河靈芝子實(shí)體粗多糖的清除率為29.14%。在濃度為5 mg/mL時(shí),安徽金寨靈芝子實(shí)體粗多糖、吉林通化靈芝子實(shí)體粗多糖對ABTS自由基的清除率都接近100%,而吉林蛟河靈芝子實(shí)體粗多糖的清除率為70.56%。在所測濃度范圍內(nèi),VC和BHT對ABTS自由基的清除率都接近100%,整體上高于3種靈芝子實(shí)體粗多糖。安徽金寨靈芝子實(shí)體粗多糖對ABTS自由基清除能力最強(qiáng),吉林蛟河靈芝子實(shí)體粗多糖最弱(圖1)。

圖1 靈芝子實(shí)體粗多糖對ABTS自由基的清除作用(n=3)Fig.1 ABTS radical scavenging activity of crude polysaccharides of three Ganoderma lucidum(n=3)

2.3.2 DPPH自由基清除能力 不同濃度下靈芝子實(shí)體粗多糖對DPPH自由基的清除率如圖2所示。由圖2可知,3種靈芝子實(shí)體粗多糖對DPPH自由基均具有清除作用,且其清除能力呈現(xiàn)一定的劑量依賴性。在濃度為1～3 mg/mL范圍內(nèi),3種靈芝子實(shí)體粗多糖的清除率接近;在濃度為5 mg/mL時(shí),吉林通化靈芝子實(shí)體粗多糖的清除能力高于另外兩種靈芝子實(shí)體粗多糖。在所測濃度范圍內(nèi),VC和BHT對DPPH自由基的清除率基本上保持不變,高于3種靈芝子實(shí)體粗多糖。

圖2 靈芝子實(shí)體粗多糖對DPPH自由基的清除作用(n=3)Fig.2 DPPH radical scavenging activity of crude polysaccharides of three Ganoderma lucidum(n=3)

2.3.3 羥基自由基清除能力 不同濃度下靈芝子實(shí)體粗多糖對羥基自由基的清除率如圖3所示。由圖3可知,在相同濃度下,對羥基自由基清除能力由強(qiáng)到弱的順序依次是吉林通化靈芝子實(shí)體粗多糖、安徽金寨靈芝子實(shí)體粗多糖、吉林蛟河靈芝子實(shí)體粗多糖。在所測濃度范圍內(nèi),VC對羥基自由基的清除率接近100%,而BHT對羥基自由基的清除率最低。

圖3 靈芝子實(shí)體粗多糖對羥基自由基的清除作用(n=3)Fig.3 Hydroxyl radical scavenging activity of crude polysaccharides of three Ganoderma lucidum(n=3)

2.3.4 總還原力 不同濃度下靈芝子實(shí)體粗多糖總還原力如圖4所示。由圖4可知,粗多糖濃度在1～4 mg/mL范圍內(nèi)時(shí),3種靈芝子實(shí)體粗多糖的總還原力隨濃度提高而增加;但當(dāng)粗多糖濃度高于4 mg/mL后,其隨濃度提高增速減緩。VC和BHT的總還原力相近,高于3種靈芝子實(shí)體粗多糖。在5 mg/mL時(shí),安徽金寨靈芝子實(shí)體粗多糖和吉林通化靈芝子實(shí)體粗多糖的總還原力與VC、BHT相近,分別為2.56和2.55,均高于吉林蛟河靈芝子實(shí)體粗多糖。在相同濃度下,3種粗多糖總還原力由高到低的順序依次是安徽金寨靈芝子實(shí)體粗多糖、吉林通化靈芝子實(shí)體粗多糖、吉林蛟河靈芝子實(shí)體粗多糖。

圖4 靈芝子實(shí)體粗多糖的總還原力(n=3)Fig.4 Total reducing power of crude polysaccharides of three Ganoderma lucidum(n=3)

2.3.5 三種抗氧化指標(biāo)的EC50值比較 將3種靈芝子實(shí)體粗多糖對ABTS自由基、DPPH自由基和羥基自由基3種自由基的抗氧化曲線分別進(jìn)行曲線擬合后得到各樣品各指標(biāo)的EC50值,結(jié)果見表2。

表2 靈芝子實(shí)體粗多糖抗氧化活性指標(biāo)的EC50值Table 2 EC50 index of antioxidant activities of crude polysaccharides of three Ganoderma lucidum

ABTS自由基清除能力比較:安徽金寨靈芝子實(shí)體粗多糖的EC50值最小,為1.50 mg/mL,對ABTS自由基的清除能力最強(qiáng),然后依次為吉林通化靈芝子實(shí)體粗多糖、吉林蛟河靈芝子實(shí)體粗多糖。

DPPH自由基清除能力比較:3種靈芝子實(shí)體粗多糖的EC50值分別為2.09 mg/mL(安徽金寨)、2.24 mg/mL(吉林通化)、2.54 mg/mL(吉林蛟河),說明3種靈芝子實(shí)體粗多糖對DPPH自由基的清除能力不同。真菌多糖清除DPPH自由基的研究結(jié)果顯示,田野蘑菇、羅馬尼斯蘑菇、白林地菇、林地蘑菇、雙孢蘑菇粗多糖清除DPPH自由基的EC50值分別為15.85、6.22、6.39、5.37、9.61 mg/mL[17],均遠(yuǎn)高于這3種靈芝子實(shí)體粗多糖的EC50值。因此靈芝子實(shí)體粗多糖對DPPH自由基的清除能力可能優(yōu)于上述幾種食用菌粗多糖。此外,3種靈芝子實(shí)體粗多糖對DPPH自由基清除能力還優(yōu)于松乳菇、灰褐紋口蘑提取物[17]。

羥基自由基清除能力比較:3種靈芝子實(shí)體粗多糖的EC50值依次為2.13 mg/mL(吉林通化)、2.55 mg/mL(安徽金寨)、3.05 mg/mL(吉林蛟河)。王峰等[18]測定了金頂側(cè)耳、大球蓋菇、姬菇、柳松菇四種食用菌粗多糖的羥基自由基清除率,其EC50值分別是2.36、3.71、2.60、3.95 mg/mL,這3種靈芝子實(shí)體粗多糖對羥基自由基的清除能力與上述幾種食用菌粗多糖接近。

3 結(jié)論

3種靈芝子實(shí)體粗多糖得率比較接近,其中安徽金寨靈芝子實(shí)體粗多糖得率為1.55%,略高于其它2種靈芝子實(shí)體。3種靈芝子實(shí)體粗多糖的總糖含量均在80%左右,蛋白質(zhì)的含量均在5%左右,水分含量均在10%左右。粗多糖中的主要成分是多糖,蛋白質(zhì)的含量較低。

另外,3種靈芝子實(shí)體粗多糖均具有抗氧化活性。安徽金寨靈芝子實(shí)體粗多糖清除ABTS自由基、DPPH自由基和總還原力優(yōu)于其他2種靈芝子實(shí)體粗多糖;吉林通化靈芝子實(shí)體粗多糖對羥基自由基的清除能力最強(qiáng);吉林蛟河靈芝子實(shí)體粗多糖的抗氧化活性均最低。綜合比較,安徽金寨靈芝子實(shí)體粗多糖的體外抗氧化活性最強(qiáng)。

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Study oninvitroantioxidant activities of crude polysaccharides of threeGanodermalucidumfrom different origins

CHEN Jie1,DONG Yang1,LU Ji-ke2,3,CHEN Qiang2,GENG Zhan-hui2,ZHANG Li-ming1,HAO Li-min1,2,*,JIA Shi-ru1,*

(1.Key Laboratory of Industrial Fermentation Microbiology,Ministry of education,Tianjin University of Science and Technology,Tianjin 300457,China;2.The Quartermaster Equipment Institute of General Logistics Department of People’s Liberation Army,Beijing 100010,China;3.School of Life Sciences,Zhengzhou University,Zhengzhou 450001,China)

Inordertocomparethein vitroantioxidantactivitiesofcrudepolysaccharidesofthreeGanoderma lucidumfromdifferentorigins,ABTSradicalscavengingactivities,DPPHradicalscavengingactivities,hydroxylradicalscavengingactivitiesandK3Fe(CN)6reductionmethodswereemployed.Theresultsshowedthatthethreedifferentcrudepolysaccharideshadcertainabilitiesofantioxidantactivities.ThecrudepolysaccharideextractedfromJinZhai(AnhuiProvince)showedthestrongestcapacityforscavengingABTSandDPPHradical(EC50of1.50mg/mLand2.09mg/mL)andtotalreducingactivity.ThecrudepolysaccharideobtainedfromTongHua(JilinProvince)showedthemostpotentcapacityforscavenginghydroxylradicalwithEC50valueof2.13mg/mL.TheantioxidantcapacityofthecrudepolysaccharidefromJiaoHe(JilinProvince)wasthelowestamongthreecrudepolysaccharides.Therefore,theantioxidantactivitiesofcrudepolysaccharidesofGanoderma lucidumfromdifferentoriginsweredifferent.

Ganoderma lucidum;crudepolysaccharides;antioxidantproperty;freeradical

2016-04-21

陳杰(1990-)，男，碩士研究生，研究方向:發(fā)酵工程原理,E-mail:chenjie19900326@126.com。

*通訊作者:郝利民(1969-)，男，博士，教授，高工，研究方向:軍用功能食品與食品生物技術(shù)，E-mail:hlm2005@163.com。 賈士儒(1954-)，男，博士，教授，研究方向:生物反應(yīng)工程,E-mail:jiashiru@tust.edu.cn。

TS201.2

A

1002-0306(2016)21-0100-05

10.13386/j.issn1002-0306.2016.21.011