999精品在线视频,手机成人午夜在线视频,久久不卡国产精品无码,中日无码在线观看,成人av手机在线观看,日韩精品亚洲一区中文字幕,亚洲av无码人妻,四虎国产在线观看 ?

蔬菜作物根結線蟲病害防治研究進展

2017-01-21 10:30:31鑫岳向國李斌尼秀媚李新建宋偉國
中國蔬菜 2017年10期

崔 鑫岳向國李 斌尼秀媚李新建宋偉國*

蔬菜作物根結線蟲病害防治研究進展

崔 鑫1岳向國1李 斌1尼秀媚2李新建1宋偉國1*

(1濰坊科技學院化工與環境學院,山東壽光 262700;2濰坊科技學院賈思勰農學院,山東壽光 262700)

根結線蟲(Meloidogyne spp.)是重要的蔬菜作物寄生線蟲,分布于世界各地而且寄主范圍廣泛。目前根結線蟲的危害程度已成為僅次于真菌的第二大植物病害。本文綜述了蔬菜作物生產過程中農業防治、作物育種、生物防治和化學防治4種防治根結線蟲的方法,探討了各種防治方法的優勢和局限性,并展望了現代有機綠色農業中根結線蟲科學防治的研究方向和趨勢。

根結線蟲;生物防治;化學防治;設施蔬菜;綜述

線蟲是動物界中最大的門類之一,大部分線蟲都是有益于自然生態系統的有機組成部分,而一些植物寄生線蟲由于在寄生的過程中對一些經濟作物、景觀植物的生長造成危害,給人類造成重大經濟損失。每年植物寄生線蟲對全球21種主要農作物造成的損失就高達1 000億美元,在這些植物寄生線蟲中,根結線蟲(Meloidogyne spp.)造成總損失的50%以上(Oka et al.,2000)。目前,國際上報道的根結線蟲有80多種,我國報道的根結線蟲有29種,其中16個種是在我國發現的新種(趙鴻等,2003)。在所有的根結線蟲中,爪哇根結線蟲(M.javanica)、花生根結線蟲(M. arenaria)、南方根結線蟲(M. incognita)和北方根結線蟲(M. hapla)這4種最為常見、危害最為嚴重。危害我國北方保護地設施蔬菜的主要是南方根結線蟲,而在南方則4種根結線蟲均有發生(賈美清和吳光紅,2011)。

在過去的幾十年里,為了提高蔬菜作物的產量和品牌效應,蔬菜種植的區域專一性和品種專一性越來越強。在大規模蔬菜種植區域中,復種、連作現象往往十分嚴重。根結線蟲在設施大棚適宜的溫度下可快速生長、并產生世代重疊現象,給農戶帶來嚴重的經濟損失。在傳統的根結線蟲防治方法中,高毒的農藥占有著重要的地位,并取得了良好效果。然而,隨著人類對環境安全和食品安全有了更高的要求,一些高毒、易殘留、破壞臭氧層的殺線蟲劑被相繼禁用,農戶在根結線蟲防治中可供選擇的農藥也明顯不足。同時,長期使用比較單一的農藥種類又使許多保護地土壤中的根結線蟲產生明顯的抗藥性,根結線蟲的防治工作更加艱難。

基于此,本文擬對國內外根結線蟲的防治工作進行綜述和討論,以期為根結線蟲的科學有效防治提供理論依據。

1 根結線蟲的致病機理及危害

根結線蟲生活史由卵、一齡幼蟲、二齡幼蟲、三齡幼蟲、四齡幼蟲和成蟲組成。幼蟲細小蠕蟲狀,成蟲雌雄異形,雄蟲線狀,雌蟲梨狀。二齡幼蟲為侵染態,可在土壤孔隙的水中遷移,通過頭部敏感的化感器尋找寄主植物的根,并從寄主根部伸長區刺破表皮侵入寄主植物,然后在細胞間隙穿行,向根尖移動,到達根的分生組織。二齡幼蟲到達根尖分生組織后,蟲體折回向維管束方向移動,到達木質部發育區。在這里,二齡幼蟲用口針刺穿寄主細胞,并注射食道腺分泌物到寄主根細胞。食道腺分泌物中含有的生長素和各種酶可誘導寄主細胞變異形成多細胞核、富含亞細胞器、代謝旺盛的“巨型細胞”,巨型細胞周圍的皮層細胞在巨型細胞的影響下增殖并過度生長和膨脹,形成了根表面典型的根瘤癥狀(Caillaud et al.,2008)。二齡幼蟲以巨型細胞作為取食點吸收營養和水分并不再移動。在適宜的條件下二齡幼蟲侵染24 h后就可以誘導寄主產生巨型細胞,在隨后的20 d內經過3次蛻皮發育成成蟲。之后雄蟲移動并離開根部,雌蟲保持靜止不動并繼續發育,約28 d開始產卵。當氣溫在10 ℃以上時,卵在根瘤內孵化,一齡幼蟲在卵內,二齡幼蟲鉆出卵,離開寄主到土壤中再次侵染(Abad et al.,2009)。

根結線蟲寄主極為廣泛,可寄生在蔬菜、糧食作物、經濟作物、果樹、觀賞植物以及雜草等3 000多種寄主上。受到根結線蟲危害的蔬菜根部首先形成大小不同的瘤狀根結,根結開始是乳白色,后期為淡褐色,相互連接成念珠狀。蔬菜感染根結線蟲后,地上部植株矮小、枝葉萎縮或黃化、生長發育不良、葉色較淡似缺水狀,病重植株生長衰弱,干旱時植株呈萎蔫狀,嚴重時整株枯死。此外,根結線蟲對作物造成的防御反應調控、抑制作用調節和組織機械損傷也方便了枯萎病菌、根腐病菌等土傳病原菌的侵入,從而形成復合病害,造成更大損失(Shahbaz et al.,2015)。

2 根結線蟲的防治

根結線蟲的防治方法概括起來可分為農業防治、作物育種、生物防治和化學防治等。在實際的生產過程中,單一的防治方法往往效果不佳,需要幾種防治方法聯合應用。

2.1 農業防治

農業防治主要包括作物輪作、土壤改良和土壤物理防治等方式。

2.1.1 作物輪作 一般在根結線蟲的防治中,和蔬菜作物輪作的主要為抗根結線蟲作物和陷阱作物。許多十字花科和菊科植物都是抗根結線蟲作物(Sikora et al.,2005),這些作物往往可以在土壤中分泌一些抑制根結線蟲的次生代謝產物。陷阱作物是生長期短、經濟價值低、易受根結線蟲侵染的作物,可利用它們“捕獲”根結線蟲,并在雌蟲成熟產卵之前收獲處理,達到防治根結線蟲的目的(Melakeberhan et al.,2006;Mashela et al.,2017)。2.1.2 土壤改良 土壤改良包括客土法和添加有機肥。對于一些根結線蟲發生極為嚴重的土壤,采用客土法移出染病土壤并移入清潔的土壤,方法簡單有效、成本也相對較低,但缺點在于客土往往肥力不足,且不適于大面積土壤的根結線蟲防治(李英梅 等,2012)。添加有機肥是改良土壤的常用方式,可以降低土壤中根結線蟲密度,還可改善土壤質地、增強持水能力、增加土壤有機質含量,并可促進對根結線蟲產生拮抗作用的放線菌、細菌、真菌和其他因子的生長。根結線蟲的防治機理不同,添加有機肥的方式也不同。例如,添加植物綠肥可以合成具有殺線蟲作用的次生代謝產物(Hussain et al.,2011);添加有機肥可以誘導降解幾丁質的微生物生長(Thoden et al.,2011;王曉云 等,2015),增加土壤碳氮比等。目前已發現有57個科的植物中富含具有殺線蟲能力的次生代謝產物,這些植物的綠肥都有潛力作為防治根結線蟲的土壤改良肥料(Akhtar &Malik,2000)。如曼陀羅屬植物可產生東莨菪堿等生物堿;一些十字花科植物可產生葡糖異硫氰酸鹽化合物;萬壽菊屬植物可產生三聯噻吩等。由于根結線蟲二齡幼蟲的外殼由幾丁質類物質組成,添加富含幾丁質類的有機肥可提高降解幾丁質類化合物的微生物的種群數量,這些微生物往往對根結線蟲有致死作用。此外,施用調節土壤碳氮比的有機肥,增加土壤含氮量,利用含氮物質在降解過程中釋放的氨,可對土壤中的根結線蟲產生熏蒸殺死作用。美國Igene Biotechnology公司生產的Clandosan 618?,主要原料是蟹和蝦等甲殼類動物的外殼并添加部分尿素,該產品可以增加土壤中降解甲殼類物質的微生物數量,同時增加土壤含氮量,熏蒸和生物防治協同作用達到根結線蟲治理的目的。

2.1.3 土壤物理防治 土壤物理防治包括日光曝曬法、淹水法等。這些方法除可殺死根結線蟲外,對土壤病原真菌、細菌、線蟲、嚙齒動物及雜草也有一定的殺滅作用。日光曝曬法是在光照充足的地區,利用透明聚乙烯膜覆蓋土壤,經強烈太陽光照射提高上層土壤溫度,從而達到根結線蟲致死或亞致死的技術。這種技術單獨使用效果往往并不顯著,日光照射的邊緣和深層土壤的根結線蟲不能得到有效控制。在實際應用中往往將日光照射和富氮堆肥等方法聯合使用,較高的土壤溫度增加了氨的蒸氣壓,可顯著提高根結線蟲的防治效果(Oka et al.,2007)。淹水法是利用大水漫灌的方法使土壤含水量飽和,降低土壤透氣性達到有效防治根結線蟲的目的,這種方法在日本有機農業生產中被廣泛使用。在淹水的過程中,可聯合添加麥麩或乙醇,然后覆蓋薄膜。在此過程中,麥麩氧化降解可釋放大量的熱,乙醇在高溫下蒸氣壓升高可產生熏蒸效果,結合飽和水產生的厭氧環境可高效降低根結線蟲的數量(Uematsu et al.,2007;Momma et al.,2013)。

2.2 抗根結線蟲作物育種

培育抗根結線蟲作物是一種安全、持續時間長、花費低的方式。第1個抗根結線蟲基因是從秘魯番茄(Solanum peruvianum)第6號染色體短臂上克隆獲得的Mi1.2基因,在20世紀40年代這個基因就被引入并用于番茄種苗的商業化生產,之后通過轉基因技術在煙草、馬鈴薯中表達,同樣也表現出對根結線蟲的抗性(Goggin et al.,2006)。然而,這種抗性并不穩定,在不同作物之間的抗性差別較大,而且Mi1.2基因對溫度敏感(Tzortzakakis et al.,2005;Devran et al.,2010)。除 Mi基因外,研究最多的抗根結線蟲基因是辣椒的顯性抗根結線蟲基因,其中N基因和Me基因已經被證實能有效控制根結線蟲。N基因是單顯性基因,對南方根結線蟲、爪哇根結線蟲和花生根結線蟲具有抗性。Me基因分為5個抗病顯性基因:Me1、Me2、Me3、Me4和Me5,其中Me3基因是熱穩定型,對南方根結線蟲、爪哇根結線蟲和花生根結線蟲均有較高的抗性。之后,Berthou等(2003)在PM217品系中發現抗奇氏根結線蟲的Mech2基因,Djian-Caporalino等(2007)在PM702中又發現了抗奇氏根結線蟲的Mech1基因和抗3種主要根結線蟲(南方根結線蟲、爪哇根結線蟲和花生根結線蟲)的Me7基因。

應用抗病品種是防治根結線蟲病害的有效措施,特別是防治那些專化性較強的根結線蟲效果明顯。但抗病品種在不同地區的抗性有較大差異,根結線蟲的變異也在不斷突破并不穩定的作物抗性(Starr et al.,2013)。研究者們在努力尋找更多的抗性基因,但收效甚微(Fourie et al.,2012;Steyn et al.,2013)。因此,采用優良砧木與作物進行嫁接是一種經濟、有效的方法。目前,國內外對于抗根結線蟲優良砧木的選育研究主要針對番茄、黃瓜、西瓜等根結線蟲易感作物,砧木也多是從商業化的高抗根結線蟲作物和野生的高抗根結線蟲植物中進行選育。例如,抗花生根結線蟲、南方根結線蟲和爪哇根結線蟲的薔薇科植物砧木、杏桃雜交砧木、櫻桃李砧木等。國內近幾年也有較多研究,例如野生櫻桃李高抗南方根結線蟲等主要根結線蟲,主要抗性機制包括抗侵入、抗發育和抗繁殖,是抗根結線蟲核果類果樹砧木種質資源樹種(王仙林 等,2011;李冬梅 等,2013)。而國外多是針對番茄、葡萄、西瓜等大面積種植的作物進行的研究(S á nchez-Solana et al.,2016;Smith et al.,2016)。

2.3 生物防治

可用于根結線蟲生物防治的有真菌、細菌、植物、少數放線菌和極少數動物等,主要包括食線蟲真菌、生防菌2個方面(Kerry,2000)。在食線蟲真菌中,研究和應用最多的是淡紫擬青 霉 菌(Purpureocillium lilacinus)(Luangsa-Ard et al.,2011)和厚垣孢普可尼亞菌(Pochonia chlamydosporia)(Siddiqui et al.,2009;Manzanilla-L ó pez et al.,2013)。它們均屬兼性食線蟲真菌,厚垣孢普可尼亞菌更適宜在熱帶土壤應用。條件適宜時,它們可寄生根結線蟲的卵、幼蟲和成蟲,最容易寄生的是未成熟的卵。寄生時通過菌絲或分生孢子直接穿刺侵入,或在線蟲表面產生特殊結構(附著胞)吸附侵染。在此過程中,真菌胞外分泌的幾丁質酶、蛋白酶等可將根結線蟲卵殼的幾丁質層和蛋白進行消解和降解,進而將線蟲體內物質完全破壞利用。研究表明,這2種菌均可有效減少根結線蟲的卵孵化,效率隨株系的不同而變化(Silva et al.,2017)。

相對于真菌,細菌生長快、易于培養,因此利用土壤中的根際生防細菌,在促進作物生長的同時抑制根結線蟲是一種防治根結線蟲的有效手段(Mendoza et al.,2008)。在已有的文獻記載中,能用于防治根結線蟲的芽孢桿菌就有12種(Xiang et al.,2017)。AgroGreen公司生產的 BioNem-WP/Biosafe?、Gustafson公司生產的 BioYield?等都是單個或多個芽孢桿菌的混合產品(Burkett-Cadena et al.,2008)。生防菌的防治機理和食線蟲真菌不同,它們通過分泌具有殺線能力的次生代謝產物達到防治的目的(Mendoza et al.,2008)。目前我國登記用于防治根結線蟲的生物菌劑有厚垣孢普可尼亞菌和淡紫擬青霉兩種食線蟲真菌,以及堅強芽孢桿菌和蠟質芽孢桿菌兩種生防菌。除了上述真菌和細菌外,叢枝菌根真菌和木霉屬真菌作為有益的作物共生和內生真菌,可為作物提供易于吸收的營養物質,有利于作物生長,并保護作物免受根結線蟲的侵染(Goh et al.,2013)。試驗結果表明,作物在接種球囊霉屬叢枝菌根真菌、哈茨木霉真菌后可顯著減少根結數量和土壤中蟲口數量(Hol & Cook,2005;Radwan et al.,2012;Mart í nez-Medina et al.,2017)。這些有益共生菌可能通過生成過氧化酶和酚氧化酶等物質來為作物提供對根結線蟲的抗性(Selim et al.,2014)。

2.4 化學防治

化學防治長期以來一直是蔬菜作物根結線蟲防治中最高效、最主要的措施(Hillocks,2012)。用于根結線蟲防治的化學物質稱為殺線劑,殺線劑根據來源可分為化學合成類殺線劑和天然殺線劑。

2.4.1 化學合成類殺線劑 傳統的殺線劑根據使用方法的不同可分為熏蒸劑和非熏蒸劑。熏蒸劑包括鹵代烴類和異硫氰酸酯類,非熏蒸劑包括有機磷類和氨基甲酸酯類。目前我國登記使用的殺線劑中,溴甲烷(屬臭氧消耗物質,正逐步被禁用)、氯化苦屬于鹵代烴類化合物,可抑制根結線蟲的蛋白合成和呼吸過程中的生化反應;威百畝和棉隆屬于異硫氰酸甲酯類熏蒸劑,它們在土壤中可降解釋放異硫氰酸甲酯和其他小分子化合物,異硫氰酸甲酯可進入根結線蟲體內并結合到載氧球蛋白上,從而抑制根結線蟲的呼吸達到致死作用。此外,硫酰氟和氰氨化鈣也作為熏蒸劑在國內登記用于根結線蟲的防治。還有一些未在國內登記的鹵代烴類熏蒸劑如1,3-二氯丙烯、碘甲烷等,在歐美一些國家登記作為溴甲烷的替代品使用(King & Taberna,2013;Li et al.,2014;Qiao et al.,2014)。

傳統非熏蒸劑包括有機磷類和氨基甲酸酯類。在我國登記的非熏蒸型殺線劑中,噻唑膦、滅線磷、辛硫磷和毒死蜱等屬于有機磷類,克百威、涕滅威和丁硫克百威屬于氨基甲酸酯類。非熏蒸型殺線劑通過結合到根結線蟲突觸內的乙酰膽堿酯酶,破壞根結線蟲的神經系統功能。它們通常并不殺死根結線蟲,只能使根結線蟲失去定位寄主和侵染的能力,因此常常被稱為“線蟲麻痹劑”(nematistats)(Opperman & Chang,1990)。傳統的非熏蒸型殺線劑都是高毒神經毒劑,其對于脊椎動物和節肢動物的作用機理和線蟲相同。因此,在環境和社會等因素的制約下,全球主要發達國家都減少或停止了有機磷類和氨基甲酸酯類殺線劑的研制,而轉向一些新型高效低毒殺蟲劑的開發。近年來,非氨基甲酸酯/有機磷類新型殺線劑中,獲得EPA登記的有螺蟲乙酯(2010年登記)、聯氟砜(2014年登記)和氟吡菌酰胺(2015年登記)。拜耳公司開發的螺蟲乙酯屬季酸酮類內吸性殺線劑,可通過抑制脂類合成高效抑制蚜蟲、粉虱、癭蚜等刺吸式昆蟲幼蟲的發育。研究顯示,螺蟲乙酯盡管不能有效防止二齡幼蟲對番茄根系的侵染并形成根癭,但經葉面噴施后可有效限制根結線蟲在根內發育成具有繁殖能力的雌蟲,從而大幅減少蟲口數量(Vang et al.,2016;Jones et al. 2017)。以色列馬克西姆公司開發的聯氟砜屬氟代烯烴硫醚類殺線蟲劑,其異于膽堿酯酶抑制劑的殺蟲機理目前正在研究中(Kearn et al.,2014)。聯氟砜是具有部分內吸性的接觸性殺線劑,Oka等(2012)研究表明,施用聯氟砜超過10 d可徹底殺死南方根結線蟲的二齡幼蟲。對辣椒作物葉面噴施3.0 g·L-1的聯氟砜,可減少80%的根結和73%~80%的蟲卵,對南方根結線蟲的防效遠高于同期施用的殺線威和噻唑膦。由于聯氟砜對不同作物表現出不同的毒性,其在不同作物中的施用方法還需進一步研究(Oka et al.,2009;Morris et al.,2016)。氟吡菌酰胺是吡啶乙基苯甲酰胺類化合物,是琥珀酸脫氫酶抑制劑型殺線劑。氟吡菌酰胺在美國被登記用作大豆的種子處理劑及馬鈴薯、棉花和花生等作物的根結線蟲防治。但研究顯示,氟吡菌酰胺可有效減少南方根結線蟲對番茄根系的侵染(Faske & Hurd,2015)。Jones等(2017)以利馬豆為載體,比較了聯氟砜、氟吡菌酰胺、螺蟲乙酯、丙線磷和殺線威對南方根結線蟲的防治效果,結果表明在溫室栽培中聯氟砜(Nimitz EC,787 g·hm-2)的防效最好,但是植物毒性較大;氟吡菌酰胺(Luna Privilege SC,110 g·hm-2)也可顯著減少根癭數量。

2.4.2 天然殺線劑 天然殺線劑主要是指微生物源殺線劑和植物源殺線劑。微生物源殺線劑中使用最為廣泛的是阿維菌素。阿維菌素是由日本北里大學的大村智和美國Merck公司首先開發的一類具有殺線蟲活性的十六元大環內酯化合物,由鏈霉菌中的阿維鏈霉菌(Streptomyces avermitilis)發酵產生(Burg et al.,1979)。和絕大部分非熏蒸型殺線劑的殺蟲機理不同,阿維菌素進入根結線蟲后,可表現出對γ-氨基丁酸(GABA)的激動作用并改變谷氨酸控制的氯離子通道開放模式(Shoop et al.,1995)。由于哺乳動物的外周神經傳導介質為乙酰膽堿,以GABA作傳導介質的神經僅存在于中樞神經系統,而在哺乳動物血腦屏障的作用下阿維菌素并不能進入中樞神經系統;此外,哺乳動物體內不存在受谷氨酸控制的氯離子通道,因此阿維菌素對哺乳動物的毒副作用較小。Cabrera等(2013)的研究結果表明,根結線蟲接觸到阿維菌素120 min后被徹底麻痹、不能恢復行動能力;此外阿維菌素還可抑制根結線蟲的卵孵化以及幼蟲對氧的利用。除了阿維菌素外,已經確定化合物結構的、可用于防治根結線蟲的抗生素并不多,多是對一些具有殺線蟲活性的微生物發酵液進行開發利用(么巧君 等,2014)。例如,美國Valent BioSciences公司生產的DiTera?,是疣孢漆斑菌(Myrothecium verrucaria)的發酵提取物和大蒜提取物的混合物。

除了微生物外,從植物尤其是本土植物中尋找活性物質來防治根結線蟲也是當下研究的熱點。植物源殺線劑具有價廉、易降解、無污染、無殘留、對植物和人體無毒等特點,糠醛就是這類殺線劑的代表。糠醛是一種在自然界廣泛存在的芳香醛,可在麩皮、稻草、甘蔗渣等農業廢棄物中提取。其殺線潛力正逐漸被了解(Luc & Crow,2013;Crow &Luc,2014;Fourie et al.,2014)。近年來以糠醛為主要成分的MultiGuard Protect?和CropGuard?兩個產品也已在南非使用,以葫蘆素(Cucrubitacin A和Cucrubitacin B)為主要成分的植物源殺線劑也在研究中(Mashela & Dube,2014;Shadung & Mashela,2016)。此外,從印度苦楝樹中提取的印楝素也是廣譜、高效、低毒、易降解、無殘留的植物源殺蟲劑。Lynn等(2010)研究發現,用10 mg·kg-1印楝素水溶液處理南方根結線蟲1 d后,有36.3%的根結線蟲被麻痹,而以印楝素為主要成分的商品Neema-plus?處理效果則顯著高于印楝素純品,這說明殺線蟲植物提取物中或許還有其他物質也能起到殺線蟲作用,或者和印楝素起到殺線蟲的協同作用。除糠醛和印楝素外,植物源的殺根結線蟲藥物多是以殺線蟲植物的提取物或提取液的形式出現。比如說美國Poulenger公司生產的Dragonfire-CPP?和澳大利亞Barmac公司生產的Ontrol Neo-trol?,它們都是從野生芝麻中提取的精油,含有大量醛類、酮類和亞麻酸,由于造價較高,多用于高爾夫球場草皮等的根結線蟲防治。近年來國內研究者發現蓖麻和山萘提取液也對根結線蟲具有良好的防治作用(鄧樂曄 等,2011;高倩圓 等,2011)。

3 展望

根結線蟲分布于世界各地,而且寄主范圍廣泛,其危害程度已超過細菌、病毒成為第二大植物病害,僅次于真菌。因此,研究根結線蟲的防治具有重要的經濟意義。農業防治和生物防治具有環保、安全、成本低、可操作性強等特點,但是單獨使用效果往往并不顯著。采用抗病作物育種和基因工程的方法培育轉基因作物對于絕大多數蔬菜作物來說,僅僅處于實驗室階段,這類方法的廣泛應用需要進一步研究根結線蟲和抗病植物之間的致病抗病機理。化學防治在所有的防治方法中效果最為明顯,但也存在許多不足。熏蒸型殺線蟲劑作用效果明顯,但毒性強、操作不當易污染環境、使用時往往需要專業的人員和設備;非熏蒸型殺線蟲劑易于操作使用,但隨著傳統的有機磷/氨基甲酸酯農藥的禁用或限用,市場上可供選擇的農藥品種十分單一,根結線蟲的抗藥性和土壤微生物的農藥降解等因素不容忽視,市場急需高效新型的綠色農藥。綜合來說,綠色、環保的根結線蟲防治方法符合社會的發展需要、是目前世界各國研究的目標。通過研究開發生物源殺線蟲劑,結合作物育種、農業防治和生物防治等方法,達到高效、環境友好和可持續的綜合治理是現代化農業的追求方向。

鄧樂曄,翁群芳,張天柱,胡美英,朱富偉.2011.山萘對南方根結線蟲生長發育的影響.西北農林科技大學學報:自然科學版,39(12):134-138.

高倩圓,胡飛龍,祝紅紅,劉滿強,李輝信,胡峰.2011.蓖麻提取物對南方根結線蟲的防治作用.應用生態學報,22(11):3033-3038.

賈美清,吳光紅.2011.黃瓜根結線蟲病的研究概況.中國植保導刊,31(6):21-24.

李冬梅,王仙林,朱立新,吳靜利,邵珊珊,宗鵬鵬,賈克功.2013.野生櫻桃李對北方根結線蟲和花生根結線蟲的抗性.中國農業大學學報,18(1):108-112.

李英梅,洪波,許燁,張淑蓮,張峰,陳志杰.2012.移土法防治根結線蟲效果及對土壤養分和黃瓜生長的效應.西北農業學報,21(7):44-48.

么巧君,魯旭鵬,朱曉峰,王媛媛,陳立杰,段玉璽.2014.青霉菌Snef1216發酵液誘導番茄抗南方根結線蟲研究.植物病理學報,44(6):693-699.

王仙林,朱立新,吳靜利,李冬梅,邵珊珊,賈克功.2011.野生櫻桃李對南方根結線蟲的抗性.中國農業大學學報,16(6):94-98.

王曉云,王秀峰,魏珉,史慶華,楊鳳娟.2015.土元糞及浸提液對番茄根結線蟲的防治作用.應用生態學報,26(8):2511-2517.

趙鴻,彭德良,朱建蘭.2003.根結線蟲的研究現狀.植物保護,29(6):6-9.

Abad P,Castagnone-Sereno P,Rosso M N,Engler J A,Favery B.2009.Invasion,feeding and development//Perry R N,Moens M,Starr J L.Root-Knot Nematodes.Wallingford:CAB International:163-171.

Akhtar M,Malik A.2000.Roles of organic soil amendments and soil organisms in the biological control of plant-parasitic nematodes:a review.Bioresource Technology,74(1):35-47.

Berthou F,Palloix A,Mugni é ry D.2003.Characterisation of virulence in populations of Meloidogyne chitwoodi and evidence for a resistance gene in pepper Capsicum annuum L.line PM 217.Nematology,5(3):383-390.

Burg R W,Miller B M,Baker E E,Birnbaum J,Currie S A,Hartman R,Kong Y L,Monaghan R L,Olson G,Putter I,Tunac J B,Wallick H,Stapley E O,Oiwa R,Omura S.1979.Avermectins,new family of potent anthelmintic agents:producing organism and fermentation.Antimicrobial Agents and Chemotherapy,15(3):361-367.

Burkett-Cadena M,Kokalis-Burelle N,Lawrence K S,van Santen E,Kloepper J W.2008.Suppressiveness of root-knot nematodes mediated by rhizobacteria.Biological Control,47:55-59.

Cabrera J A,Menjivar R D,Dababat A F A,Sikora R A.2013.Properties and nematicide performance of avermectins.Journal of Phytopathology,161(2):65-69.

Caillaud M C,Lecomte P,Jammes F,Quentin M,Pagnotta S,Andrio E,Engler J A,Marfaing N,Gounon P,Abad P,Favery B.2008.MAP65-3 microtubule-associated protein is essential for nematodeinduced giant cell ontogenesis in Arabidopsis.The Plant Cell,20(2):423-437.

Crow W T,Luc J E.2014.Field efficacy of furfural as a nematicide on turf.Journal of Nematology,46(1):8-11.

Devran Z,Sogut M A,Mutlu N.2010.Response of tomato rootstocks with the Mi resistance gene to Meloidogyne incognita race 2 at different soil temperatures.Phytopathologia Mediterranea,49(1):11-17.

Djian-Caporalino C,Fazari A,Arguel M J,Vernie T,Vandecasteele C,Faure I,Brunoud G,Pijarowski L,Palloix A,Lefebvre V,Abad P.2007.Root-knot nematode(Meloidogyne spp.)Me resistance genes in pepper(Capsicum annuum L.)are clustered on the P9 chromosome.Theoretical and Applied Genetics,114(3):473-486.

Faske T R,Hurd K.2015.Sensitivity of Meloidogyne incognita and Rotylenchulus reniformis to Fluopyram.Journal of Nematology,47(4):316-321.

Fourie H,Mothata T,Ntidi K N,Mc Donald A H,de Waele D G M A.2012.Indications of variation in host suitability to root knot nematode populations in commercial tomato varieties.African Journal of Agricultural Research,7(7):2344-2352.

Fourie H,van Aardt W J,Venter C,Tiedt L R.2014.The effects of CropGuard?on the motility,ultrastructure,and respiration of two Meloidogyne species.Nematropica,44(1):85-92.

Goggin F L,Jia L,Shah G,Hebert S,Williamson V M,Ullman D E.2006.Heterologous expression of the Mi-1.2 gene from tomato confers resistance against nematodes but not aphids in eggplant.Molecular Plant-Microbe Interactions,19(4):383-388.

Goh C,Vallejos D F,Nicotra A B,Mathesius U.2013.The impact of beneficial plant-associated microbes on plant phenotypic plasticity.Journal of Chemical Ecology,39(7):826-839.

Hillocks R J.2012.Farming with fewer pesticides:EU pesticide review and resulting challenges for UK agriculture.Crop Protection,31(1):85-93.

Hol W G,Cook R.2005.An overview of arbuscular mycorrhizal funginematode interactions.Basic and Applied Ecology,6(6):489-503.

Hussain M A,Mukhtar T,Kayani M Z.2011.Efficacy evaluation of Azadirachta indica,Calotropis procera,Datura stramonium and Tagetes erecta against root-knot nematodes Meloidogyne incognita.Pakistan Journal of Botany,43(1):197-204.

Jones J G,Kleczewski N M,Desaeger J,Meyer S L F.2017.Evaluation of nematicides for southern root-knot nematode management in lima bean.Crop Protection,96:151-157.

Kearn J,Ludlow E,Dillon J,Connor V O,Holden-Dye L.2014.Fluensulfone is a nematicide with a mode of action distinct from anticholinesterases and macrocyclic lactones.Pesticide Biochemistry and Physiology,109:44-57.

Kerry R B.2000.Rhizosphere interactions and the exploitation of microbial agents for the biological control of plant-parasitic nematodes.Annual Reviews of Phytopathology,38:423-441.

King B A,Taberna J J P.2013.Site-specific management of Meloidogyne chitwoodi in Idaho potatoes using 1,3-dichloropropene:approach,experiences,and economics.Journal of Nematology,45(3):202-213.

Li Y,Chi L,Mao L,Yan D,Wu Z,Ma T.2014.Control of soilborne pathogens of zingiber officinale by methyl iodide and chloropicrin in China.Plant Disease,98(3):384-388.

Luangsa-Ard J,Houbraken J,van D T,Hong S B,Borman A M,Hywel-Jones N L,Samson R A.2011.Purpureocillium,a new genus for the medically important Paecilomyces lilacinus.FEMS Microbiology Letters,321(2):141-149.

Luc J E,Crow W T.2013.Factors affecting furfural as a nematicide on turf.Journal of Nematology,45(4):260-264.

Lynn O M,Song W G,Shim J K,Kim J E,Lee K Y.2010.Effects of azadirachtin and neem-based formulations for the control of sweetpotato whitefly and root-knot nematode.Journal of the Korean Society for Applied Biological Chemistry,53(5):598-604.

Manzanilla-L ó pez R H,Esteves I,Finetti-Sialer M M,Hirsch P R,Ward E,Devonshire J,Hidalgo-D í az L.2013.Pochonia chlamydosporia:advances and challenges to improve its performance as a biological control agent of sedentary endo-parasitic nematodes.Journal of Nematology,45(1):1-7.

Mart í nez-Medina A,Fernandez I,Lok G B,Pozo M J,Pieterse C M,van Wees S C.2017.Shifting from priming of salicylic acid- to jasmonic acid-regulated defences by trichoderma protects tomato against the root knot nematode Meloidogyne incognita.New Phytologist,213(3):1363-1377.

Mashela P W,Dube Z P.2014.Soil allelochemical residue effects of nemafric-BL and nemarioc-AL phytonematicides on soil health,growth of sweet sorghum and Meloidogyne species.Acta Agriculturae Scandinavica,Section B-Soil & Plant Science,64(1):79-84.

Mashela P W,DeWaele D,Dube Z,Khosa M C,Pofu K M,Tefu G,Fourie H.2017.Alternative nematode management strategies//FourieH,Spaull V W,Jones R K,Daneel M S,Waele D D.Nematology in South Africa:a view from the 21st century.Switzerland:Springer International Publishing:151-181.

Melakeberhan H,Xu A,Kravchenko A,Mennan S,Riga E.2006.Potential use of arugula(Eruca sativa L.)as a trap crop for Meloidogyne hapla.Nematology,8(5):793-799.

Mendoza A R,Kiewnick S,Sikora R A.2008.In vitro activity of Bacillus firmus against the burrowing nematode Radopholus similis,the root-knot nematode Meloidogyne incognita and the stem nematode Ditylenchus dipsaci.Biocontrol Science and Technology,18(4):377-389.

Momma N,Kobara Y,Uematsu S,Kita N,Shinmura A.2013.Development of biological soil disinfestations in Japan.Applied Microbiology and Biotechnology,97(9):3801-3809.

Morris K A,Langston D B,Davis R F,Noe J P,Dickson D W,Timper P.2016.Efficacy of various application methods of fluensulfone for managing root-knot nematodes in vegetables.Journal of Nematology,48(2):65-71.

Oka Y,Koltai H,Bar-Eyal M,Mor M,Sharon E,Chet I,Spiegel Y.2000.New strategies for the control of plant-parasitic nematodes.Pest Management Science,56(11):983-988.

Oka Y,Shapira N,Fine P.2007.Control of root-knot nematodes in organic farming systems by organic amendments and soil solarization.Crop Protection,26(10):1556-1565.

Oka Y,Shuker S,Tkachi N.2009.Nematicidal efficacy of MCW-2,a new nematicide of the fluoroalkenyl group,against the root-knot nematode Meloidogyne javanica.Pest Management Science,65(10):1082-1089.

Oka Y,Shuker S,Tkachi N.2012.Systemic nematicidal activity of fluensulfone against the root-knot nematode Meloidogyne incognita on pepper.Pest Management Science,68(2):268-275.

Opperman C H,Chang S.1990.Plant-parasitic nematode acetylcholinesterase inhibition by carbamate and organophosphate nematicides.Journal of Nematology,22(4):481-488.

Qiao K,Duan H M,Wang H Y,Wang Y,Wang K Y,Wei M.2014.The efficacy of the reduced rates of 1,3-D + abamectin for control of Meloidogyne incognita in tomato production in China.Scientia Horticulturae,178(12):248-252.

Radwan M A,Farrag S A,Abuelamayem M M,Ahmed N S.2012.Biological control of the root-knot nematode,Meloidogyne incognita on tomato using bioproducts of microbial origin.AppliedSoil Ecology,56(1):58-62.

S á nchez-Solana F,Ros C,Guerrero M M,Lacasa C M,S á nchez-L ó pez E,Lacasa A.2016.New pepper accessions proved to be suitable as a genetic resource for use in breeding nematode-resistant rootstocks.Plant Genetic Resources,14(1):28-34.

Selim M,Mahdy M M,Sorial M E,Dababat A A,Sikora R A.2014.Biological and chemical dependent systemic resistance and their significance for the control of root-knot nematodes.Nematology,16(8):917-927.

Shadung K G,Mashela P W.2016.Suitable organ(s)in wild Cucumis africanus for the production of nemafric-BL phytonematicide.Acta Agriculturae Scandinavica,Section B-Soil & Plant Science,66(5):381-383.

Shahbaz M U,Mukhtar T,Irfanulhaque M,Begum N.2015.Biochemical and serological characterization of ralstonia solanacearum associated with chilli seeds from pakistan.International Journal of Agriculture & Biology,17(1):31-40.

Shoop W L,Mrozik H,Fisher M H.1995.Structure and activity of avermectins and milbemycins in animal health.Veterinary Parasitology,59(2):139-156.

Siddiqui I A,Atkins S D,Kerry B R.2009.Relationship between saprotrophic growth in soil of different biotypes of pochonia chlamydosporia and the infection of nematode eggs.Annals of Applied Biology,155(1):131-141.

Sikora R A,Bridge J,Starr J L,Luc M,Sikora R A,Bridge J.2005.Management practices:an overview of integrated nematode management technologies//Luc M,Sikora R A,Bridge J.Plant parasistic nematodes in subtropical and tropical agriculture.Wallingford:CAB International:793-825.

Silva S D,Carneiro R M,Faria M,Souza D A,Monnerat R G,Lopes R B.2017.Evaluation of Pochonia chlamydosporia and Purpureocillium lilacinum for suppression of Meloidogyne enterolobii on tomato and banana.Journal of Nematology,49(1):77-85.

Smith B P,Morales N B,Thomas M R,Smith H M,Clingeleffer P R.2016.Grapevine rootstocks resistant to the root-knot nematode Meloidogyne javanica.Australian Journal of Grape and Wine Research,23:125-131.

Starr J L,Mc Donald A H,Claudius-Cole A O.2013.Nematode resistance in crops// Perry R N,Moens M.Plant nematology.Wallingford:CAB International:411-436.

Steyn W P,Daneel M S,Slabbert M M.2013.Evaluation of amaranthus species for their host suitability to the root-knot nematodes,Meloidogyne incognita race 2 and Meloidogyne Javanica in South Africa.Acta Horticulturae,1007:403-407.

Thoden T C,Korthals G W,Termorshuizen A J.2011.Organic amendments and their influences on plant-parasitic and free-living nematodes:a promising method for nematode management? Nematology,13(2):133-153.

Tzortzakakis E A,Adam M A,Blok V C,Paraskevopoulos C,Bourtzis K.2005.Occurrence of resistance-breaking populations of rootknot nematodes on tomato in Greece.European Journal of Plant Pathology,113(1):101-105.

Uematsu S,Tanaka-Miwa C,Sato R,Kobara Y,Sato M.2007.Ethyl alcohol as a promising material of reductive soil disinfestation for controlling root knot nematode and soilborne plant diseases.San Diego:In Proceedings of 2007 Annual International Research Conference on Methyl Bromide Alternatives and Emissions Reductions.

Vang L E,Opperman C H,Schwarz M R,Davis E L.2016.Spirotetramat causes an arrest of nematode juvenile development.Nematology,18(2):121-131.

Xiang N,Lawrence K S,Kloepper J W,Donald P A,McInroy J A,Lawrence G W.2017.Biological control of Meloidogyne incognita by spore-forming plant growth-promoting rhizobacteria on cotton.Plant Disease,101:77-84.

Abstract:The root-knot nematode(Meloidogyne spp.)is an important vegetable crops parasitic nematode widely distributed all over the world and has a very extensive range of hosts. At present,the damages caused by root-knot nematode disease ranking the second plant disease,only next to fungal disease. This paper evaluated 4 modes for controlling root-knot nematodes,including agricultural control,crop breeding,biological control and chemical control. The advantages and limitations of each control modes were discussed. The paper also looked forward to the research orientation and trend for scientific control of root-knot nematode in modern organic agriculture development.

Key words:Root-knot nematode;Biological control;Chemical control;Greenhouse vegetables;Review

Research Progress on Controlling Root-knot Nematode in Vegetable Crops

CUI Xin1,YUE Xiang-guo1,LI Bin1,NI Xiu-mei2,LI Xin-jian1,SONG Wei-guo1*
(1Chemical Engineering and Environment Institute,Weifang College of Science and Technology,Shouguang 262700,Shandong,China;2JIASIXIE Agriculture Institute,Weifang College of Science and Technology,Shouguang 262700,Shandong,China)

崔鑫,副教授,專業方向:藥物合成,E-mail:15153621177@126.com*通訊作者(Corresponding author):宋偉國,教授,碩士生導師,專業方向:農藥研發、藥物合成,E-mail:songwg@139.com

2017-03-28;接受日期:2017-06-09

壽光市科技發展計劃項目(2016JH09),濰坊科技學院博士基金項目(2017BS12)

主站蜘蛛池模板: 毛片网站观看| 免费在线国产一区二区三区精品| 青青草原国产免费av观看| 91九色最新地址| 国产香蕉在线视频| 久久久精品国产亚洲AV日韩| 中文字幕日韩视频欧美一区| 欧美福利在线观看| 九九热精品免费视频| 久久这里只有精品免费| 黄色不卡视频| 亚洲欧洲日韩国产综合在线二区| 亚洲精品大秀视频| 亚洲国产亚综合在线区| 国产SUV精品一区二区| 国产精品人人做人人爽人人添| 国产精品第一区在线观看| 亚洲天堂成人在线观看| 五月天综合婷婷| 国产精品9| 国产麻豆aⅴ精品无码| 深夜福利视频一区二区| 国产精品永久免费嫩草研究院| 九九久久精品免费观看| 无码'专区第一页| 亚洲日韩精品无码专区97| 无码精油按摩潮喷在线播放 | 国产一级视频久久| 一本色道久久88亚洲综合| 蜜桃臀无码内射一区二区三区| 蜜桃视频一区二区三区| 欧美日韩国产高清一区二区三区| 国产精品55夜色66夜色| 国产肉感大码AV无码| 99草精品视频| 精品人妻一区二区三区蜜桃AⅤ| 免费中文字幕在在线不卡| 日本午夜精品一本在线观看 | 欧美自拍另类欧美综合图区| 国产第八页| 91国内在线观看| 动漫精品啪啪一区二区三区| 亚洲国产成熟视频在线多多| 色吊丝av中文字幕| 国产区福利小视频在线观看尤物| 91精品国产自产91精品资源| 国产美女在线免费观看| 欧美另类图片视频无弹跳第一页| 免费不卡视频| 欧美a级完整在线观看| 国产九九精品视频| 精品一区二区三区波多野结衣 | 国产欧美日韩一区二区视频在线| 无码'专区第一页| 99久久婷婷国产综合精| 国模在线视频一区二区三区| 国产欧美在线视频免费| 亚洲欧美另类中文字幕| 精品一区二区无码av| 久久精品国产国语对白| 亚洲第一精品福利| 夜夜操天天摸| 粗大猛烈进出高潮视频无码| 波多野结衣在线se| 亚洲精品777| 亚洲视频免费在线看| 无码 在线 在线| 日本在线亚洲| 亚洲一级毛片在线观| 老汉色老汉首页a亚洲| 久久综合伊人 六十路| 亚洲国产欧洲精品路线久久| 中文字幕乱妇无码AV在线| 精品久久久久成人码免费动漫| 日本www在线视频| 久久国语对白| 欧美自拍另类欧美综合图区| 亚洲乱亚洲乱妇24p| 91精品国产自产在线观看| 欧美日韩北条麻妃一区二区| 亚洲高清在线天堂精品| 一级做a爰片久久免费|