劉 超,郭 琦,鄭鵬遠,劉 霞,于 泳,唐芙愛,趙治國
1)鄭州大學第二附屬醫院消化內科 鄭州 450014 2)鄭州大學第二附屬醫院超聲科 鄭州 450014 3)鄭州大學第五附屬醫院消化內科 鄭州 450052
嬰兒雙歧桿菌對ConA誘導小鼠肝纖維化的影響*
劉 超1),郭 琦2),鄭鵬遠3)#,劉 霞1),于 泳3),唐芙愛1),趙治國1)
1)鄭州大學第二附屬醫院消化內科 鄭州 450014 2)鄭州大學第二附屬醫院超聲科 鄭州 450014 3)鄭州大學第五附屬醫院消化內科 鄭州 450052
#通信作者,男,1965年2月生,博士,教授,主任醫師,研究方向:胃腸道感染與免疫,E-mail:medp7123@126.com
嬰兒雙歧桿菌;小鼠;肝纖維化;刀豆蛋白
目的:研究嬰兒雙歧桿菌對刀豆蛋白A(ConA)誘導的小鼠肝纖維化的作用及其機制。方法:36只小鼠隨機分為正常組、模型組和嬰兒雙歧桿菌組,每組12只。正常組靜脈注射生理鹽水,模型組和嬰兒雙歧桿菌組靜脈注射12.5 mg/kg ConA溶液,每周1次。每日通過灌胃給予正常組和模型組蒸餾水,嬰兒雙歧桿菌組通過灌胃給予0.5 g/kg嬰兒雙歧桿菌溶液,持續7周。檢測小鼠肝臟質量指數,小鼠血清肝功能生化指標(ALT、AST、ALB),透明質酸(HA),Ⅲ型前膠原肽(PC Ⅲ)的水平,以及小鼠肝組織Ⅰ型膠原(ColⅠ)、Ⅲ型膠原(Col Ⅲ)、基質金屬蛋白酶抑制因子(TIMP)-1、基質蛋白金屬酶(MMP)-1、MMP-2、MMP-9、腫瘤壞死因子α(TNF-α)、IL-6、IL-10的含量。結果:嬰兒雙歧桿菌能顯著降低ConA誘導小鼠的肝臟質量指數(P<0.05),改善血清肝功能生化指標(P<0.05),降低血清HA、PC Ⅲ水平(P<0.05),降低肝組織中ColⅠ、Col Ⅲ、MMP-2、MMP-9、TIMP-1、TNF-α、IL-6含量(P<0.05),升高小鼠肝組織中MMP-1、IL-10含量(P<0.05)。結論:嬰兒雙歧桿菌具有明確的抗小鼠肝纖維化作用。
肝纖維化是各種病因導致的肝臟內結締組織的異常增生,肝纖維化的持續發展最終將導致肝硬化的發生。肝纖維化是一個可逆的過程,防止肝纖維化的發生發展是防治肝硬化的重要措施[1-2]。研究[3-6]表明,益生菌可通過免疫調節機制改善小鼠腸道狀況,也可治療實驗動物的肝炎、肝硬化等,提示益生菌可能通過免疫調節機制抑制免疫反應誘發的肝纖維化。嬰兒雙歧桿菌是一種重要的益生菌,具有調節腸道菌群、調節免疫反應、抗腫瘤、抗感染等生物學活性,可能通過調節機體特異性或非特異性免疫反應發揮抗肝纖維化作用[7]。該研究建立刀豆蛋白A(concanavalin A,ConA)誘導的免疫性小鼠肝纖維化模型,研究嬰兒雙歧桿菌抗小鼠肝纖維化的作用,初步明確其作用機制,為應用嬰兒雙歧桿菌治療肝纖維化提供可靠的實驗依據[8-9]。
1.1 實驗動物和主要試劑 4周齡雄性BALB/c小鼠36只,購于河南省實驗動物中心,合格證號 SCXK(豫)2010-0002。嬰兒雙歧桿菌粉(山東科興生物制品有限公司),ConA(美國Sigma公司),小鼠透明質酸(HA)、Ⅲ型前膠原肽(PC Ⅲ)、Ⅰ型膠原(ColⅠ)、Ⅲ型膠原(Col Ⅲ)、腫瘤壞死因子α(TNF-α)、IL-6、IL-10、基質金屬蛋白酶抑制因子(TIMP)-1、基質蛋白金屬酶(MMP)-1、MMP-2、MMP-9 ELISA檢測試劑盒(上海西唐生物科技有限公司)。
1.2 實驗分組與造模 小鼠適應性飼養1周后,按隨機數字表法分為:正常組、模型組、嬰兒雙歧桿菌組,每組12只。于造模首日,正常組靜脈注射生理鹽水,模型組和嬰兒雙歧桿菌組靜脈注射12.5 mg/kg ConA的溶液,此后每周注射1次,連續7周。于造模首日起,每日給予正常組和模型組蒸餾水灌胃,嬰兒雙歧桿菌組給予嬰兒雙歧桿菌溶液灌胃,劑量0.5 g/kg,每日1次,持續7周。末次給藥后,各組小鼠禁食不禁水12 h,稱重后摘眼球取血,將收集的全血放置于1.5 mL離心管靜置60 min,4 ℃3 500 r/m離心15 min,取血清保存于-20 ℃冰箱,用于血清指標檢測。取血完畢后脫頸椎處死小鼠,摘取小鼠肝臟組織,生理鹽水沖洗干凈后稱重。每只小鼠取3片肝組織,將其中一片置于體積分數10%甲醛溶液固定,經常規病理組織學檢查;另外兩片肝組織經液氮冷凍后于-80 ℃低溫冰箱中保存,用于指標檢測。
1.3 小鼠肝臟質量指數 電子天平稱量小鼠空腹體重及肝臟質量,計算肝臟質量與空腹體重比(mg/g),即肝臟質量指數。
1.4 小鼠血清ALT、AST和ALB水平檢測 取小鼠血清,全自動生化分析儀檢測血清ALT、AST、ALB水平。
1.5 小鼠肝纖維化因子及炎癥因子檢測 取小鼠血清,ELISA法檢測HA和PC Ⅲ的含量。取肝組織勻漿,ELISA法檢測ColⅠ、Col Ⅲ、TNF-α、IL-6、IL-10的含量。
1.6 小鼠肝組織細胞外基質相關因子檢測 取肝組織勻漿,ELISA法檢測TIMP-1、MMP-1、MMP-2、MMP-9的含量。
1.7 統計學處理 采用SPSS 18.0分析。3組小鼠各指標的比較采用單因素方差分析,組間兩兩比較采用LSD-t檢驗,檢驗水準α=0.05。
2.1 3組小鼠肝臟病理組織學表現 正常組小鼠肝組織內肝細胞排列整齊,肝小葉結構正常,未見炎性細胞浸潤及細胞變性壞死。模型組及嬰兒雙歧桿菌組小鼠肝組織內肝細胞排列紊亂,肝小葉結構破壞,匯管區結締組織增生,可見炎性細胞浸潤及細胞變性壞死。嬰兒雙歧桿菌組小鼠肝組織內纖維化程度較模型組減輕。見圖1。

A:正常組;B: 模型組;C:嬰兒雙歧桿菌組。圖1 3組小鼠肝組織HE染色結果(×200)
2.2 3組小鼠肝臟質量指數和血清ALT、AST、ALB水平的比較 結果見表1。與正常組相比,模型組小鼠肝臟質量指數顯著升高,血清ALT、AST水平顯著升高,ALB水平顯著降低。與模型組相比,嬰兒雙歧桿菌組小鼠上述指標明顯改善。
2.3 3組小鼠肝纖維化因子及炎癥因子水平的比較 結果見表2、3。與正常組相比,模型組小鼠血清HA、PC Ⅲ及肝組織ColⅠ、Col Ⅲ、TNF-α、IL-6含量升高,IL-10含量降低。與模型組相比,嬰兒雙歧桿菌組小鼠血清HA、PCⅢ濃度降低,肝組織中ColⅠ、Col Ⅲ和TNF-α、IL-6含量降低,IL-10含量升高。

表1 3組小鼠肝臟質量指數和血清ALT、AST和ALB水平的比較
*:與正常組相比,P<0.05;#:與模型組相比,P<0.05。

表2 3組小鼠肝纖維化因子HA、PC Ⅲ、ColⅠ和Col Ⅲ的比較
*:與正常組相比,P<0.05;#:與模型組相比,P<0.05。

表3 3組小鼠炎癥因子TNF-α、IL-6、IL-10的比較 mg/kg
*:與正常組相比,P<0.05;#:與模型組相比,P<0.05。
2.4 3組小鼠肝組織TIMP-1、MMP-2、MMP-9含量的比較 結果見表4。與正常組相比,模型組小鼠肝組織TIMP-1、MMP-2、MMP-9含量升高,MMP-1含量降低。與模型組相比,嬰兒雙歧桿菌組小鼠肝臟TIMP-1、MMP-2、MMP-9含量降低,MMP-1含量升高。

表4 3組小鼠肝臟組織TIMP-1、MMP-1、MMP-2、MMP-9含量的比較 mg/kg
*:與正常組相比,P<0.05;#:與模型組相比,P<0.05。
在肝纖維化發展過程中,多種信號轉導通路的平衡被打破,各種促肝纖維化因子的合成增加、活性發生變化,而抗肝纖維化因子的效應減弱或受到抑制,細胞外基質代謝失衡而發生過度沉積,最終導致肝硬化的發生。MMPs是一組可降解細胞外基質的重要酶類,而TIMPs則能夠結合MMPs以降低其表達,肝損傷發生后肝組織內MMPs減少,TIMPs增加[10]。PCⅢ、ColⅣ、層黏連蛋白、HA與肝纖維化的活動程度密切相關,均可反映肝纖維化因子合成狀況和炎癥活動程度。自身免疫反應引起的TNF-α和白介素家族的異常表達是免疫性肝纖維化形成的主要原因之一[11-12]。在免疫功能紊亂的情況下,TNF-α可引起細胞外基質合成和沉積,最終導致肝纖維化形成[13-14]。IL-6可促進肝成纖維細胞增生和膠原合成,并可影響肝臟組織內MMPs和TIMPs的合成和降解,從而發揮促肝纖維化作用[15]。IL-10可下調MMPs的表達和抑制TIMPs的合成,通過免疫調節機制發揮抗纖維化的作用[16]。李延玲等[4]研究發現,含雙歧桿菌、嗜酸乳桿菌、腸球菌三聯活菌的益生菌膠囊能抑制肝硬化大鼠肝細胞凋亡,具有肝臟保護作用。Zuo等[6]研究發現,嬰兒雙歧桿菌可調節T細胞亞型的生物學功能,通過干預細胞免疫而緩解結腸炎癥狀。
該研究選擇ConA作為誘導劑,建立小鼠自身免疫性肝纖維化動物模型,經病理證實模型組和嬰兒雙歧桿菌組小鼠肝纖維化存在。該研究結果顯示與正常組相比,模型組小鼠肝功能指標(肝臟質量指數、ALT、AST、ALB)和肝纖維化指標(HA、PC Ⅲ、ColⅠ、Col Ⅲ)含量明顯升高,炎癥因子及細胞外基質相關因子(TNF-α、IL-6、IL-10、TIMP-1、MMP-2、MMP-9、MMP-1)均明顯異常,而與模型組相比,嬰兒雙歧桿菌組小鼠以上指標均有顯著改善,說明嬰兒雙歧桿菌可能通過干預肝纖維化因子、炎癥因子及細胞外基質相關因子等指標而發揮抗肝纖維化的作用。
總之,該研究結果顯示給予肝纖維化小鼠嬰兒雙歧桿菌可能抑制肝纖維化,其作用機制可能與調節肝臟TNF-α,IL-6和 IL-10表達,進而調節小鼠肝纖維化過程中的免疫反應有關。
[1]MORMONE E,GEORGE J,NIETO N.Molecular pathogenesis of hepatic fibrosis and current therapeutic approaches[J].Chem Biol Interact,2011,193(3):225
[2]曾璐,周本杰.肝纖維化發病機制和治療方法的研究進展[J].廣東醫學,2014,35(24):3918
[3]王玉玉,張軍,鄭鵬遠,等.雙歧桿菌、酪酸梭菌及谷氨酰胺對慢性應激模型小鼠腸黏膜屏障的影響[J].鄭州大學學報(醫學版),2014,37(2):153
[4]李延玲,張懷宏,翟玉峰.益生菌對肝硬化大鼠肝細胞凋亡的干預作用[J].中國老年學雜志,2014,34(3):708
[5]謝基明,王玉珍,張威,等.益生菌L.Casei Zhang對大鼠急性肝損傷的保護作用及其對TLR-4-ERK-PPARγ通路的影響[J].中國免疫學雜志,2013,29(9):910
[6]ZUO L,YUAN T,YU L,et al.Bifidobacterium infantis attenuates colitis by regulating T cell subset responses[J].World J Gastroenterol,2014,20(48):18316
[7]劉思濛,鄭鵬遠,李付廣,等.嬰兒雙歧桿菌對腸易激綜合征小鼠腸道黏膜 CRF 受體表達及肥大細胞活化的影響[J].中華微生物學和免疫學雜志,2014,34(8):571
[8]吳麗,魏偉.肝纖維化的動物模型及治療藥物研究[J].中國藥理學通報,2004,20(5):481
[9]李鴻立,田聆,魏于全,等.刀豆素蛋白A誘導小鼠肝纖維化模型的建立[J].免疫學雜志,2004,20(5):390
[10]邵祥強,肖華勝.肝纖維化發病機制與臨床診斷的研究進展[J].世界華人消化雜志,2011,19(3):268
[11]宗蕾,陸倫根.免疫因素在肝纖維過程中的作用的研究進展[J].世界華人消化雜志,2007,15(3):205
[12]吳麗,鄭仕中,潘蘇華,等.免疫細胞對肝纖維化發展的影響[J].中國藥理學通報,2010,26(12):1557
[13]MIGITA K,MAEDA Y,ABIRU S,et al.Immunosuppressant FK506 inhibits matrix metalloproteinase-9 induction in TNF-alpha-stimulated human hepatic stellate cells[J].Life Sci,2006,78(21):2510
[14]KLIRONOMOS S,NOTAS G,SFAKIANAKI O,et al.Octreotide modulates the effects on fibrosis of TNF-α, TGF-β and PDGF in activated rat hepatic stellate cells[J].Regul Pept,2014,188(1):5
[15]BANSAL B,KOVALOVICH K,GUPTA R,et al.Interleukin-6 protects hepatocytes from CCl4-mediated necrosis and apoptosis in mice by reducing MMP-2 expression[J].J Hepatol,2005,42(4):548
[16]ZHENG WD,ZHANG LJ,SHI MN,et al.Expression of matrix metalloproteinase-2 and tissue inhibitor of metalloproteinase-1 in hepatic stellate cells during rat hepatic fibrosis and its intervention by IL-10[J].World J Gastroenterol,2005,11(12):1753
(2016-09-11收稿 責任編輯李沛寰)
Effect of infant bifidobacteria on liver fibrosis of mice induced by ConA
LIUChao1),GUOQi2),ZHENGPengyuan3),LIUXia1),YUYong3),TANGFu′ai1),ZHAOZhiguo1)
1)DepartmentofGastroenterology,theSecondAffiliatedHospital,ZhengzhouUniversity,Zhengzhou450014DepartmentofUltrasound,theSecondAffiliatedHospital,ZhengzhouUniversity,Zhengzhou450014DepartmentofGastroenterology,theFifthAffiliatedHospital,ZhengzhouUniversity,Zhengzhou450052
infant bifidobacteria;mouse;liver fibrosis;concanavalin
Aim: To research the preventive effects and mechanism of infant bifidobacteria on liver fibrosis of mice induced by concanavalin A(ConA). Methods: The mice were randomly allocated into three groups: normal group, model group and infant bifidobacteria-treated group,12 in each group. The ConA solution(12.5 mg/kg) was given by intravenous injection to the model group and infant bifidobacteria-treated group once a week, normal group and model group were given normal saline by gavage,and infant bifidobacteria-treated group was given infant bifidobacteria(0.5 g/kg) by gavage once a day. After 7 weeks, liver weight index, liver function, concentrations of HA and PCⅢ in serum, as well as collagen Ⅰ, collagen Ⅲ, MMP-1, MMP-2, MMR-9, TIMP-1,TNF-α, IL-6, IL-10 in liver tissue were determined. Results: Infant bifidobacteria could decrease liver weight index(P<0.05), improve the liver function(P<0.05), decrease the serum concentrations of HA and PC Ⅲ(P<0.05), decrease the contents of collagen Ⅰ, collagen Ⅲ, MMP-2, MMR-9, TIMP-1,TNF-α, IL-6(P<0.05) in mice liver tissue, and increase the contents of MMP-1 and IL-10 in mice liver tissue(P<0.05).Conclusion: Infant bifidobacteria could prevent liver fibrosis of mice induced by ConA.
10.13705/j.issn.1671-6825.2017.01.004
*國家自然科學基金資助項目 81370494;鄭州市科技領軍人才項目 131PLIRC656
R575