唐為安,徐興祥,楊俊俊
(1中南大學湘雅二醫院,長沙 410075;2江蘇省蘇北人民醫院)
·綜述·
微環境中不同因素對肺癌干細胞影響的研究進展
唐為安1,徐興祥2,楊俊俊2
(1中南大學湘雅二醫院,長沙 410075;2江蘇省蘇北人民醫院)
肺癌干細胞(LCSC)是一小群具有不斷自我更新和分化能力的腫瘤細胞,微環境是指其鄰近的細胞及其分泌的細胞因子。微環境和LCSC作用機制十分復雜,二者相互促進又相互拮抗,微環境中炎性因子、低氧、新生血管、細胞外基質等因素能夠促進或抑制LCSC的干細胞性。
肺癌;干細胞;微環境;炎性因子;低氧;新生血管;細胞外基質
肺癌干細胞(LCSC)是一小群具有不斷自我更新和分化能力的腫瘤細胞,以往研究多集中于LCSC本身,隨著研究的深入,發現微環境是維持LCSC狀態和功能的重要條件。LCSC微環境是指其鄰近的細胞及其分泌的細胞因子。正常干細胞由微環境“干細胞龕”維持干細胞狀態,LCSC也需要一個特殊的微環境進行調控。微環境和LCSC作用機制十分復雜,二者相互促進又相互拮抗。許多研究表明,微環境中炎性因子、低氧、新生血管、細胞外基質等因素影響LCSC,它們不僅可以直接促進普通腫瘤細胞向LCSC轉變,還能使非腫瘤干細胞向LCSC轉變。研究微環境中不同因素影響LCSC的機制,就能在抑制肺癌生長和轉移方面提高效率[1]。現就微環境中不同因素對LCSC影響的研究進展進行綜述。
許多臨床實驗研究已證實炎癥是腫瘤發生的有利條件,而炎癥對LCSC的作用機制則是目前腫瘤研究的新領域。在LCSC微環境中存在各種類型的免疫細胞,這些免疫細胞經過LCSC誘導達到微環境后,分泌大量的細胞炎性因子如IL-6、IL-8、TGF-α等,影響LCSC增殖和分化,維持LCSC不斷自我更新的能力。
1.1 腫瘤相關巨噬細胞(TAM) 在腫瘤發展的早期,TAM是最主要的炎癥細胞,包括經典活化M1型和替代活化M2型。M1型具有分泌多種炎性因子的功能,M2型功能與M1型相反,具有抗炎的作用。Jinushi等[2]發現,M1型TAM能夠釋放乳脂肪球表皮生長因子Ⅷ9(MFG-E8)調節LCSC的活性,MFG-E8能通過激活LCSC中STAT-3和Sonic Hedgehog通路提升LCSC的致瘤性和藥物抵抗,且MFG-E8在炎性因子IL-6的存在下能夠進一步提升LCSC耐藥性。M2型TAM在LCSC的形成中具有獨特的作用。Huang等[3]發現,M2型TAM可通過黏蛋白1(MUC1)誘導LCSC形成并維持其干細胞性。
1.2 IL-6 IL-6是一種多效性前炎癥細胞因子,由多種免疫細胞分泌,并且在多種炎癥反應中高表達。IL-6過表達可以誘導肺間充質干細胞轉化為LCSC[4]。IL-6對LCSC生長與增殖也起啟動作用。Lee等[5]從A549、H157、H1299非小細胞肺癌(NSCLC)細胞系分離出CD133+和CD133-細胞亞群,分析IL-6對細胞生長轉移能力和上皮-間質轉化(EMT)的影響,發現敲除IL-6的CD133-細胞并沒產生明顯改變,但是敲除IL-6的CD133+細胞自我更新能力明顯低于對照CD133+細胞,可見IL-6對于CD133+細胞生長具有啟動子作用,敲除IL-6導致LCSC細胞生長遲緩。IL-6的表達伴隨著一些特殊蛋白的升高,有研究顯示在慢性炎癥中IL-6的表達伴隨著CXCR4的表達上升。CXCR4是一個7次跨膜的G蛋白偶聯受體,可通過上調CYP1B1來提升非小細胞肺癌患者的化療抵抗性。Tu等[6]發現非小細胞肺癌轉移的患者中IL-6和CXCR4水平較無轉移的患者顯著升高。
1.3 活性氧(ROS) 活化的免疫細胞能夠不斷產生ROS,ROS可直接作用于DNA導致損傷,導致肺部正常干細胞發生基因突變形成LCSC。細胞內的ROS能夠激活對氧化還原反應敏感的轉錄因子,促進腫瘤的形成[7]。目前很多研究發現,ROS促進LCSC侵襲和轉移,但持續高強度的ROS有助于殺傷LCSC。ROS誘導的半胱氨酸S-谷胱甘肽化是控制細胞內許多蛋白質翻譯后修飾活性的重要產物,ROS可以通過S-谷胱甘肽化調節LCSC的形成。Wang等[8]通過LBL21消耗A549細胞內谷胱甘肽(GSH),導致線粒體呼吸和跨膜電位降低,線粒體功能障礙和ROS積累,結果A549細胞表現出細胞中側群細胞比例降低和干細胞標志物Oct-4、SOX-2、CD133表達下降,可見通過高表達ROS能夠抑制A549細胞內干細胞的生成。
腫瘤細胞增殖需要消耗大量的氧,低氧環境是腫瘤組織普遍存在的現象。低氧是LCSC微環境的重要特點[9]。在缺氧條件下,腫瘤細胞為了緩解大量增殖的壓力,不斷改變自身表型并向遠處轉移,容易導致基因突變和LCSC的形成。
2.1 轉錄因子Oct-4 LCSC多位于缺氧區域,細胞可能通過去分化來逃避缺氧持續存在時的壓力,獲得干細胞性。傳統研究表明,Oct-4在肺部正常細胞中不表達,說明肺組織發育成熟,但是缺氧促進Oct-4在腫瘤細胞中表達,在缺氧刺激下Oct-4激活并重新編程肺癌細胞,促進肺癌細胞的去分化。缺氧條件下的肺癌細胞中Oct-4高度表達,誘導了細胞不規則分裂和細胞周期停滯。在肺腺癌細胞中過表達Oct-4能夠誘導LCSC的形成,可見由缺氧引起的去分化過程很可能是LCSC形成的關鍵[10]。Oct-4還可以誘導肺癌細胞的EMT,促進腫瘤細胞的轉移和干細胞性的形成。Oct-4的陽性表達與E-cad異常表達有關,而E-cad被認為是腫瘤抑制因子,Oct-4激活導致的E-cad下調或缺乏可誘導EMT,導致腫瘤細胞的侵襲和轉移,影響LCSC的形成。除了物理上的低氧處理,化學低氧處理的方法也能夠提高普通細胞的干細胞性。Wang等[11]發現,低氧模擬劑氯化鈷可以提升A549細胞的腫瘤干細胞性。可見Oct-4作為缺氧刺激因子促進肺癌細胞去分化過程,并誘導LCSC的形成。
2.2 低氧誘導因子(HIF) HIF是一種具有轉錄活性的核蛋白,是由120 kD的HIF-1α和91~94 kD的HIF-1β兩個亞單位組成的異源二聚體,對于LCSC的功能具有調控作用。在缺氧條件下缺氧誘導因子HIF-1α與HIF-2α激活并維持LCSC的干細胞性,HIF上調SOX-2和Oct-4等干細胞基因獲得多能性[12]。HIF激活下游基因促進腫瘤細胞的未分化狀態,如HIF-2α所激活的原癌基因(c-Myc)是保證腫瘤干細胞始終處于未分化狀態所必須的[13]。Sun等[14]發現,LCSC的形成常伴有HIF的升高,通過無血清培養篩選出具有干細胞性質的CD133+的A549細胞,其HIF-2α的表達水平明顯高于CD133-細胞,HIF抑制劑FM19G11能夠明顯抑制LCSC干細胞標記物的上調和LCSC的成球能力。低氧加速了腫瘤的惡性轉變,HIF的激活有利于維持LCSC干細胞活性,導致腫瘤組織耐藥性的增強。Zhang等[15]發現,HIF在化療誘導的LCSC中大量上調,并且與IL-6密切相關;其機制可能是IL-6通過轉錄控制HIF并且抑制HIF降解,增強LCSC的耐藥能力。高表達HIF-2α的患者往往在臨床上具有更差的臨床分期和預后,HIF-2α的表達導致癌胚抗原在放療后上升更快,患者的生存期更短。低氧是促進LCSC生成和分化的獨立因素,可誘導出癌細胞的干細胞性,提升其藥物抵抗,并且可導致更差的預后[16]。低氧作為腫瘤發展的必經之路,能夠篩選有更強存活能力的LCSC,促進LCSC分泌更多的血管生成因子促進腫瘤的增殖和轉移。
腫瘤組織新生血管在腫瘤生長、轉移和干細胞性維持等過程中起重要作用,血管不僅為腫瘤的生長提供營養,并且可為腫瘤轉移提供許多有利條件[17]。在腫瘤生長初期,腫瘤組織無血管生成能力,主要通過炎癥激活核因子NF-κB信號通路促進腫瘤血管生成,腫瘤巨噬細胞通過激活TGF-β、PDGF等細胞因子促進新生血管的形成。
3.1 內皮細胞 血管內皮細胞是血管組成的基本成分,盡管大多數構成血管的細胞來源于內皮細胞,但是一小部分構成血管的細胞可以由LCSC直接分化,從而促進腫瘤新生血管的形成。LCSC通過模擬腫瘤血管,分化為血管內皮細胞,或者直接作用于內皮細胞,誘導新生血管內皮細胞的形成[18]。血管內皮細胞表面存在特定的一組生長因子稱為血管分泌因子,可以通過旁分泌方式促進LCSC的不斷更新和分化,參與誘導維持體內平衡和代謝,因此LCSC常處于內皮細胞覆蓋的成熟血管附近。Wang等[19]通過肺內皮細胞與腸道細胞共培養發現,肺內皮細胞能夠刺激正常細胞中干細胞數量的比例,提高細胞中Nanog和Oct-4等干細胞標記蛋白的表達。另有研究發現,內皮細胞通過Oct-4促進腫瘤血管的新生。Gu等[20]研究發現,多能轉錄因子Oct-4的過表達足以誘導小鼠祖細胞的轉化,這些轉化的細胞不僅具有腫瘤發生和耐藥潛能,還顯著表達一些促血管生成因子,參與腫瘤血管生成。內皮細胞促進正常細胞轉化為LCSC的機制很可能與胚胎干細胞基因Nanogp8的表達有關,內皮細胞通過旁分泌AKT誘導Nanogp8表達和干細胞球形成,調節細胞的表型和藥物抵抗作用。可見LCSC能夠分化為血管內皮細胞,而血管內皮細胞又能夠促進LCSC的形成。
3.2 Dickkopf-1(DKK1) 血清DKK1是Dickkopfs家族成員之一,通過競爭性地結合Wnt蛋白的共同受體而阻斷Wnt/β-catenin途徑,是Wnt信號通路抑制劑。有多重分化和自我更新能力的間充質干細胞(MSCs)常常表達DKK1,使得LCSC周圍血管新生,并致使LCSC細胞產生免疫豁免,避免免疫細胞對LCSC的攻擊。DKK1不僅促進腫瘤周圍血管的新生,還可以提升腫瘤細胞的干細胞性。Yao等[21]通過對28例具有新生血管的非小細胞肺癌患者檢測發現,其LCSC相關蛋白CD44的表達升高,且與分泌型蛋白DKK1密切相關。DKK1促進了LCSC周圍血管的新生,并且提升了普通腫瘤細胞的干細胞活性,通過下調LCSC中的DKKI,能夠明顯抑制腫瘤新生血管的生成以及LCSC標記物的表達。
雖然目前抗腫瘤血管藥是LCSC治療新方向,但如今抗腫瘤新生血管藥物并不是十分完善。抗腫瘤血管生成藥內皮他丁可以拮抗腫瘤新生血管的形成,但通過在移植瘤小鼠模型中使用內皮他丁,發現ALDH1+細胞在實體瘤中的比例增高。內皮他丁導致腫瘤組織缺氧,激活低氧基因如HIF-1α等,并吸引TAM、骨髓來源的抑制性細胞(MDSCs)、T細胞等免疫細胞產生大量的炎癥介質,最終導致腫瘤組織中LCSC的形成[22]。腫瘤新生血管對于LCSC的作用日益受到重視,研究LCSC新生血管的機制有助于我們了解腫瘤轉移、浸潤等機制,為以后抗腫瘤藥物的治療和早期診斷提供指導。
細胞外基質是由細胞分泌于細胞表面的大分子物質,主要由基底膜和細胞間基質組成。細胞外基質將細胞連為一個整體,決定細胞的形狀,控制LCSC的分化與自我更新,并參與LCSC的增殖和侵襲。基質金屬蛋白酶是最重要的一種細胞外基質降解酶,膠原蛋白是基質的重要成分,二者都參與LCSC的發病。
4.1 基質金屬蛋白酶10(MMP-10) MMP-10是基質金屬蛋白酶家族的成員,通過降解細胞外基質幫助腫瘤侵襲和轉移。研究發現,MMP-10不僅與LCSC的干細胞性密切相關,并且對于LCSC的增殖能力必不可少。Justilien等[23]發現,MMP-10在人肺部腫瘤中大量表達,并且其高表達與人類肺癌的干細胞性和腫瘤轉移特征相關,通過敲除小鼠LCSC的MMP-10導致LCSC干細胞標記基因表達、轉移能力和自我更新能力下降,而加入外源性的MMP-10能夠增強MMP-10敲除的LCSC細胞自我更新能力。MMP-10促進腫瘤組織的形成,維持LCSC高致瘤性和干細胞性。MMP-10的表達調控機制目前不清楚,有研究顯示,MMP-10的激活與癌基因Kras基因相關。Regala等[24]研究發現,在肺腺癌小鼠模型中激活癌基因Kras導致MMP-10大量表達,而敲除小鼠體內的MMP-10后再次激活癌基因Kras則發現腫瘤數量和大小顯著降低,表明Kras對于MMP-10誘導的LCSC形成中具有重要作用。
4.2 膠原蛋白 膠原蛋白是結締組織的一種常見蛋白,大多由成纖維細胞分泌,分為Ⅰ、Ⅱ、Ⅲ、Ⅳ型,是細胞基質的重要成分。膠原蛋白可以促進LCSC的干細胞性。Xu等[25]用3D膠原蛋白支架對肺癌細胞進行培養,在此培養系統中的肺癌細胞其LCSC相關基因如ALDH1、Oct-4、CD133表達水平增高,細胞轉移能力和致瘤性增強,并且具有更強的耐藥性。膠原蛋白不僅可以維持和提升普通腫瘤細胞的干細胞性,而且能夠促進LCSC的轉移和侵襲能力。Moilanen等[26]發現,LCSC中各種黏附分子表達增加,在這些分子中膠原蛋白(Col XVⅡ)被證明是維持LCSC中EMT和轉移能力所必需的,Col ⅩⅤⅡ不僅促進細胞的惡性變化,臨床研究還發現過表達Col ⅩⅤⅡ和層黏連蛋白-5的肺癌手術切除患者具有所有表達類型中最差的預后,通過阻斷Col ⅩⅤⅡ/層黏連蛋白-5途徑可降低LCSC體外EMT和轉移能力。Col ⅩⅤⅡ和穩定的層黏連蛋白-5激活FAK/AKT/GSK3β抑制細胞內泛素化降解,其功能主要取決于ADAM9和ADAM10的脫落。細胞黏附是LCSC遷移的重要條件,一些細胞外基質成分能夠維持LCSC干細胞性,改變LCSC表面的細胞外基質對于LCSC的診斷和治療都具有積極作用。膠原蛋白作為干細胞的一個細胞外屏障,可以增強其耐藥性,并且可以和很多細胞因子如TGF-β、VEGF、BMP等結合,調節LCSC的活性[27]。
微環境影響著LCSC的功能,對LCSC遷移、增殖以及耐藥性都具有不可忽視的作用。近年來關于LCSC微環境的研究越來越受到重視,雖然人們對LCSC微環境的形成、發展和調控都做了進一步的探索,但目前人們對于LCSC微環境的認識不夠全面。微環境對于LCSC的調控是一個復雜又動態的過程,了解微環境各種因素的功能有助于人們更清楚地認識肺癌,控制微環境因素可以為肺癌未來的診斷治療提供新方向和手段。
[1] Fuchs E, Tumbar T, Guasch G. Socializing with the neighbors: stem cells and their niche[J]. Cell, 2004,116(6):769-778.
[2] Jinushi M, Chiba S, Yoshiyama H, et al. Tumor-associated macrophages regulate tumorigenicity and anticancer drug responses of cancer stem/initiating cells[J]. Proc Natl Acad Sci U S A, 2011,108(30):12425-12430.
[3] Huang WC, Chan ML, Chen MJ, et al. Modulation of macrophage polarization and lung cancer cell stemness by MUC1 and development of a related small-molecule inhibitor pterostilbene[J]. Oncotarget, 2016,7(26):39363-39375.
[4] Iliopoulos D, Hirsch HA, Wang G, et al. Inducible formation of breast cancer stem cells and their dynamic equilibrium with non-stem cancer cells via IL6 secretion[J]. Proc Natl Acad Sci U S A, 2011,108(4):1397-1402.
[5] Lee SO, Yang X, Duan S, et al. IL-6 promotes growth and epithelial-mesenchymal transition of CD133+cells of non-small cell lung cancer[J]. Oncotarget, 2016,7(6):6626-6638.
[6] Tu Z, Xie S, Xiong M, et al. CXCR4 is involved in CD133-induced EMT in non-small cell lung cancer[J]. Int J Oncol, 2017,50(2):505-514.
[7] Hussain SP, Harris CC. Inflammation and cancer: an ancient link with novel potentials[J]. Int J Cancer, 2007,121(11):2373-2380.
[8] Wang J, Luo B, Li X, et al. Inhibition of cancer growth in vitro and in vivo by a novel ROS-modulating agent with ability to eliminate stem-like cancer cells[J]. Cell Death Dis, 2017,8(6):e2887.
[9] Zhang CC, Sadek HA. Hypoxia and metabolic properties of hematopoietic stem cells[J]. Antioxid Redox Signal, 2014,20(12):1891-1901.
[10] Wang P, Wan WW, Xiong SL, et al. Cancer stem-like cells can be induced through dedifferentiation under hypoxic conditions in glioma, hepatoma and lung cancer[J]. Cell Death Discov, 2017,3:16105.
[11] Wang Y, Jiang M, Li Z, et al. Hypoxia and TGF-beta1 lead to endostatin resistance by cooperatively increasing cancer stem cells in A549 transplantation tumors[J]. Cell Biosci, 2015,5:72.
[12] Seidel S, Garvalov BK, Wirta V, et al. A hypoxic niche regulates glioblastoma stem cells through hypoxia inducible factor 2 alpha[J]. Brain, 2010,133(Pt 4):983-995.
[13] Civenni G, Malek A, Albino D, et al. RNAi-mediated silencing of Myc transcription inhibits stem-like cell maintenance and tumorigenicity in prostate cancer[J]. Cancer Res, 2013,73(22):6816-6827.
[14] Sun JC, He F, Yi W, et al. High expression of HIF-2alpha and its anti-radiotherapy effect in lung cancer stem cells[J]. Genet Mol Res, 2015,14(4):18110-18120.
[15] Zhang F, Duan S, Tsai Y, et al. Cisplatin treatment increases stemness through upregulation of hypoxia-inducible factors by interleukin-6 in non-small cell lung cancer[J]. Cancer Sci, 2016,107(6):746-754.
[16] Zhao M, Zhang Y, Zhang H, et al. Hypoxia-induced cell stemness leads to drug resistance and poor prognosis in lung adenocarcinoma[J]. Lung Cancer, 2015,87(2):98-106.
[17] Kerbel RS. Tumor angiogenesis[J]. N Engl J Med, 2008,358(19):2039-2049.
[18] Matsui T, Kinugasa Y, Tahara H, et al. Possible role of mural cell-covered mature blood vessels in inducing drug resistance in cancer-initiating cells[J]. Am J Pathol, 2013,182(5):1790-1799.
[19] Wang R, Bhattacharya R, Ye X, et al. Endothelial cells activate the cancer stem cell-associated NANOGP8 pathway in colorectal cancer cells in a paracrine fashion[J]. Mol Oncol, 2017,11(8):1023-1034.
[20] Gu SY, Ho CC, Huang YK, et al. Acquisition of tumorigenic potential and enhancement of angiogenesis in pulmonary stem/progenitor cells through Oct-4 hyperexpression[J]. Oncotarget, 2016,7(12):13917-13931.
[21] Yao L, Zhang D, Zhao X, et al. Dickkopf-1-promoted vasculogenic mimicry in non-small cell lung cancer is associated with EMT and development of a cancer stem-like cell phenotype[J]. J Cell Mol Med, 2016,20(9):1673-1685.
[22] Yu Y, Wang YY, Wang YQ, et al. Antiangiogenic therapy using endostatin increases the number of ALDH+lung cancer stem cells by generating intratumor hypoxia[J]. Sci Rep, 2016,6:34239.
[23] Justilien V, Regala RP, Tseng IC, et al. Matrix metalloproteinase-10 is required for lung cancer stem cell maintenance, tumor initiation and metastatic potential[J]. PLoS One, 2012,7(4):e35040.
[24] Regala RP, Justilien V, Walsh MP, et al. Matrix metalloproteinase-10 promotes Kras-mediated bronchio-alveolar stem cell expansion and lung cancer formation[J]. PLoS One, 2011,6(10):e26439.
[25] Xu XX, Liu C, Liu Y, et al. Enrichment of cancer stem cell-like cells by culture in alginate gel beads[J]. J Biotechnol, 2014,177:1-12.
[26] Moilanen JM, Loffek S, Kokkonen N, et al. Significant Role of Collagen ⅩⅤⅡ And Integrin beta4 in Migration and Invasion of The Less Aggressive Squamous Cell Carcinoma Cells[J]. Sci Rep, 2017,7:45057.
[27] Li L, Cole J, Margolin DA. Cancer stem cell and stromal microenvironment[J]. Ochsner J, 2013,13(1):109-118.
10.3969/j.issn.1002-266X.2017.38.033
R734.2
A
1002-266X(2017)38-0099-04
國家衛生和計劃生育委員會行業專項(w2014GJ18)。
徐興祥(E-mail: xuxx63@sina.com)
2017-06-27)