付瑜華,賀爾奇,雷石富,李向勇,張正學,盧加舉
(貴州省亞熱帶作物研究所,貴州 興義 562400)
2種甘蔗病害脅迫果蔗NBS類抗病基因同源序列的表達分析
付瑜華,賀爾奇,雷石富,李向勇,張正學,盧加舉
(貴州省亞熱帶作物研究所,貴州 興義 562400)
在眼斑病和輪斑病病原菌侵染下,分析果蔗NBS類抗病基因同源序列在侵染初期的表達情況,為后續克隆關鍵抗病基因、研究抗病機理提供理論依據。已克隆的7條果蔗RGAs可視為來源不同的3個基因片段。將2種病原菌分別針刺接種到感病基因型黔糖3號和抗病基因型黔糖5號葉片后,3條果蔗RGAs在2種病害侵染初期均受到不同程度的上調,RGA12478對兩種病害的響應最為迅速,RGA5的表達量最高,尤其在輪斑病菌的脅迫下,RGA5在脅迫后12 h的表達量大約分別是同時間點RGA12478和RGA36表達量的16倍和6倍。因此,RGA5可認為是果蔗在抵御輪斑病和眼斑病侵染初期發揮主要作用的抗病基因片段,后續應結合RACE技術獲得基因全長,作為關鍵抗病候選基因研究其功能和在外源信號因子作用下的表達情況,全面了解該抗病基因的抗病機理。
果蔗;眼斑病;輪斑病;抗病基因同源序列;表達分析
抗病基因使植物在被動防衛病原菌侵害的同時,能夠產生分子水平的防御反應,使植物表現出局部或系統的抗性,減少病原菌對其的傷害。NBS-LRR類抗病基因含有核苷酸結合位點(NBS)和富亮氨酸重復(LRR)結構域是最大的抗病基因家族。科學家最初通過轉座子標簽技術和圖位克隆的方法獲得了一批植物抗病基因[1-3],但此方法并不適合基因組復雜的作物。通過抗病基因保守序列結構特征設計簡并引物,對感興趣植物材料的DNA或cDNA進行擴增,可獲得該植物材料的抗病基因同源序列(RGA),這種方法簡單有效,已經在多種作物中成功分離到了許多抗病基因同源片段[4-7],再利用RACE技術,即可獲得完整的抗病候選基因[8-9],或與分子標記技術相結合,借助其遺傳連鎖圖譜可將克隆到的RGAs定位在染色體上,再逐步找到抗病基因[10-12]。隨著越來越多植物的全基因組序列被公布,已經在玉米、高粱、水稻、馬鈴薯和小果野蕉等多種植物中開展了基于全基因組的NBS類抗病基因的發掘和比較研究[13-15]。甘蔗基因組龐大,遺傳背景復雜,闕友雄等最先利用同源克隆技術從甘蔗高抗黑穗病品種NCo376中獲得了11條抗病基因同源序列,并對其中一條RGA進行了基因全長克隆,分析了該基因在黑穗病菌、過氧化氫和水楊酸脅迫下的表達特點及其在甘蔗不同組織部位的表達情況[9,16],同時,對甘蔗近緣植物斑茅的基因組DNA和cDNA分別進行了RGAs的發掘[17-18]。
我國大陸蔗區已發現的甘蔗病害約50種[19],其中眼斑病和輪斑病是蔗區常見的兩種葉部真菌型病害,在我國臺灣省、福建、廣西和貴州等省均有發生[20-23],尤其在廣東和云南蔗區較為嚴重[24-26],影響了甘蔗的產量和品質,在一定程度上限制了當地甘蔗產業的可持續發展。果蔗是人們可直接食用的水果型甘蔗,在生產過程中對農藥的使用要求更為嚴格。李瑞美等對發展果蔗的無公害生產進行了研究[27]。利用現有果蔗資源,尋找抗病遺傳基礎,培育抗病果蔗品種,是實現果蔗無公害生產的基礎。與果蔗黔糖3號相比,黔糖5號在大田表現出對多種甘蔗病害不同的抗性,癥狀診斷、病原菌形態特征觀察和人工接種技術綜合鑒定評價表明黔糖5號高抗甘蔗眼斑病[28]。李向勇等通過對果蔗病害重災區多年的病害調查,將輪斑病在黔糖3號的發病情況分為6個病害級別[29]。本研究在前期研究的基礎上[30],對已獲得的7條果蔗NBS-LRR類抗病基因同源片段進行甘蔗眼斑病和輪斑病病原菌脅迫下的表達分析,以期獲得響應這2種甘蔗病害的果蔗RGAs候選片段,為后續cDNA全長克隆及果蔗抗眼斑病、輪斑病的分子生物學研究提供依據。
1.1 試驗材料
黔糖3號和黔糖5號種莖經熱水脫毒處理后,種植于貴州省亞熱帶作物研究所溫室大棚。7條果蔗NBS-LRR類抗病基因同源序列來源于賀爾奇等發表的文章[28]。熒光定量PCR檢測儀為BIO-RAD CFX Connect?,RevertAid First Strand cDNA Synthesis Kit和DNase I購于THERMO SCIENTIFIC公司,Power SYBR? Green PCR Master Mix購于Applied Biosystems公司,引物合成委托生工生物工程有限公司完成。
1.2 試驗方法
1.2.1 2種甘蔗病害病原菌的分離及接種 收集大田中感染輪斑病和眼斑病的甘蔗葉片到實驗室,將葉片感病部位病原菌接種于PDA培養基中,分離單克隆,經光學顯微鏡觀察判斷后,試管斜面劃線保存于冰箱。對植物葉片分別進行2種病原菌的針刺接種、棉球接種和菌餅接種,選擇致病力最強、最快的接種方式,確定為本實驗的接種方法。
待果蔗黔糖3號和黔糖5號生長至7~10葉片時,對兩個果蔗品種葉片進行病原菌接種,并在接種后0、6、12、18、24 h分別對2個果蔗品種接種部位葉片進行取樣,液氮速凍后保存于-80℃。
1.2.2 cDNA的獲得 采用Trizol法提取果蔗葉片RNA,并根據試劑盒RevertAid First Strand cDNA Synthesis Kit和 DNase I的說明書進行反轉錄,獲得2個果蔗品種在3種病原菌脅迫不同時間點的葉片cDNA。
1.2.3 序列分析及特異引物設計 利用Clustal X軟件對已知7條果蔗NBS-LRR抗病基因同源序列進行多序列比對,根據序列比對結果,用Primer 5軟件設計引物。
1.2.4 表達分析 以甘蔗GAPDH基因為內參基因(登陸號:CA254672)。qPCR反應體系為:cDNA 1 μL,Primer F(10 μmol/L) 0.5μL,Primer R(10 μmol/L) 0.5μL,ddH2O 8μL,Power SYBR? Green PCR Master Mix 10 μL。反應程序為:95 ℃ 3 min;95 ℃ 10 s,55 ℃ 20 s,72 ℃20 s,40個循環;在反應結束后添加60~95℃的溶解曲線以分析擴增片段的特異性。采用相對定量分析方法對表達數據進行分析。

表 1 引物序列
2.1 輪斑病和眼斑病接種果蔗感病試驗
對保存的眼斑病和輪斑病病原菌進行活化,以果蔗感病基因型黔糖3號為對象,隨機選取3株長勢良好植株上的健康葉片進行針刺接種、棉球接種和菌餅接種,在接種病原菌后3 d 和6 d,觀察并記錄葉片發病情況,結果見表2,對于輪斑病病原菌來說,針刺接種和菌餅接種兩種方法均可使黔糖3號葉片產生可見病斑,而對于眼斑病來說,則是針刺接種和棉球接種兩種方法可使黔糖3號葉片產生可見病斑。根據3株黔糖3號葉片的發病情況,針刺接種的致病率明顯優于其它兩種方法,因此,本研究選用針刺接種法對黔糖3號和黔糖5號葉片進行眼斑病和輪斑病病原菌接種,以檢測在病原菌侵染初期果蔗抗病基因同源序列的表達情況。

表 2 3種接種方法在黔糖3號葉片的發病情況
2.2 果蔗NBS-LRR類抗病基因同源序列表達分析
對賀爾奇等克隆得到的7條果蔗RGAs序列進行核苷酸序列比對,發現7條序列核苷酸的一致性為78.91%,其中4條RGAs(RGA1、RGA2、RGA4和RGA7)的核苷酸序列相似性高達98.95%,彼此間僅有13個位點的差異(圖1,封二)。通過在NCBInr數據庫中檢索分析,RGA1、RGA2、RGA4和RGA7與基因AY849870.1的匹配度均為99%,推測它們可能為來源同一基因的不同等位基因片段,命名為RGA1247。RGA3和RGA6則與基因AY849888.1的匹配度分別為99%和98%,因此,也將RGA3和RGA6視為來自同一條基因的片段,命名為RGA36。RGA5與基因AY849871.1的匹配度為99%,為單獨的一條基因片段。
在輪斑病病原菌侵染的最初18 h內,3條基因片段在抗病基因型果蔗黔糖5號中的表達水平整體呈“升-降-升”的趨勢(圖2),在感病基因型黔糖3號中的表達水平表現不一致,RGA1247基因片段為“降-升-降”,RGA36基因片段為“升-降-升”,RGA5基因片段表達量在侵染后的6~18 h之間基本無變化。總體上看,除RGA5基因片段在病原菌侵染的6 h和18 h兩個時間點在黔糖5號葉片中的表達量略低于黔糖3號外,3條基因片段在抗病基因型黔糖5號中的表達量均高于感病基因型黔糖3號。RGA1247基因片段在6 h表達量最高,12 h時略微降低,RGA36和RGA5基因片段均在12 h時表達量最高,且RGA5的表達量遠遠大于RGA1247和RGA36基因片段。

圖 2 3條果蔗RGAs在輪斑病菌脅迫下的表達情況
在眼斑病病原菌侵染的最初24 h內,3條基因片段在兩種果蔗基因型中的表達量如圖3所示。在抗病基因型黔糖5號中,RGA1247和RGA5均表現為“升-降-升”,RGA36表現為“降-升-降-升”;在感病基因型黔糖3號中,RGA1247表現為“降-升”,RGA36和RGA5則表現為“升-降”。在病原菌脅迫的不同時間點上,RGA1247抗病基因片段在黔糖5號中的表達量基本均高于黔糖3號,RGA5基因片段除侵染后6 h時間點未檢測到表達量外,其余時間點的表達量也是在黔糖5號中高,但在侵染的6、12、18 h時間點,RGA36基因片段表現為在感病基因型黔糖3號中的表達量高。RGA1247在0~6 h時間段表達量迅速上升,且在5 h表達量最高,其次為12 h;RGA36 在24 h時間點表達量最高;RGA5在12 h表達量最高。

圖3 3條果蔗RGAs在眼斑病菌脅迫下的表達情況
多種植物基于全基因組序列信息挖掘抗病基因的研究表明,NBS類抗病基因在植物基因組中廣泛存在且數量龐大,如擬南芥中有150個、水稻623個、玉米129個和高粱345個,雖然不同作物之間NBS類基因數量存在差異,但其差異與基因組的大小并無必然聯系[13]。面對突然涌現出的這么多抗病基因,如何快速確定各抗病基因在抵御不同病害脅迫中的功能是目前新的挑戰。劉建成利用RT-PCR檢測草莓NBS-LRR基因表達時發現一個在草莓莖尖和葉片中表達較高的NBS基因片段,對其進行RACE實驗獲得基因全長,并分析該基因對外源水楊酸、脫落酸和茉莉酸甲酯的響應[31]。宋霄等從蘋果基因組中鑒定出的NBS類基因中選取代表性的基因序列,通過軟件預測編碼區并結合RACE技術,克隆一個NBS-LRR基因,再進行RT-PCR分析表明該基因的表達可受到蘋果輪紋病病原菌侵染而上調[32]。本研究通過對目前已獲得的7條果蔗NBS-LRR類同源序列的分析,將其視為來源不同的3條RGAs片段,在眼斑病和輪斑病病原菌的脅迫下,這3條RGAs在果蔗抗病基因型和感病基因型中均表現為不同程度的上調,說明這3條RGAs確實與眼斑病和輪斑病抗病性相關。其中,RGA1247對兩種病害的響應最為迅速,均在脅迫6 h后表達量上調至最大,RGA5在兩種病害脅迫后12 h表達量最高,且其表達量遠高于RGA1247和RGA36,尤其對于輪斑病來說,RGA5在脅迫12 h的表達量大約分別是同時間點RGA1247和RGA36表達量的16倍和6倍,因此,RGA5可認為是果蔗在抵御輪斑病和眼斑病侵染初期發揮主要作用的抗病基因片段,后續應結合RACE技術獲得基因全長,做為關鍵抗病候選基因研究其功能和在外源信號因子作用下的表達情況,全面了解該抗病基因的抗病機理。
[1]Whitham S,Dinesh-Kumar S P,Choi D,et al. The product of the tobacco mosaic virus resistance gene N:similarity to toll and the interleukin-1 receptor[J]. Cell,1994,78(6):11101-1115.
[2]Lawrence G J,Finnegan E J,Ayliffe M A,et al. The L6 gene for flax rust resistance is related to the Arabidopsis bacterial resistance gene RPS2 and the tobacco viral resistance gene N[J]. Plant Cell,1995,7:1195-1206.
[3]Bent A F,Kunkel B N,Dahlbeck D,et al. RPS2 of Arabidopsis thaliana:aleucine-rich repeat class of plant disease resistance genes[J]. Science,1994,265:1865-1870.
[4]Yu Y G,Buss G R,Maroof M A. Isolation of a superfamily of candidate disease-resistance genes in soybean based on a conserved nucleotide-binding site[J]. Proceedings of the National Academy of Sciences,1996,93(21):11751-11756.
[5]Leister D,Ballvora A,Salamini F,et al. A PCR based approach for isolating pathogen resistance genes from potato with potential for wide application in plants[J]. Nature Genetics,1996,14(4):421-429.
[6]王石平,劉克德. 用同源序列的染色體定位尋找水稻抗病基因DNA片段[J]. 植物學報,1998,40(1):42-50.
[7]賀超英,張志永. 大豆中NBS類抗病基因同原序列的分離與鑒定[J]. 科學通報,2001,46 (12):1017-1021.
[8]張楠,王海燕,劉大群. 小麥NBS類抗病基因同源cDNA序列的克隆與特征分析[J]. 植物遺傳資源學報,2010,11(5):605-610.
[9]闕友熊,許麗萍,張木清,等. 甘蔗中一個NBSLRR類基因的全長克隆與表達分析[J]. 作物學報,2009,35(6):1161-1166.
[10]Chen X M,Line R F,Leung H. Genome scanning for resistance gene analogs in rice,barley and wheat by high-resolution electropheresis[J]. Theoretical and Applied Genetics,2011,97:345-355.
[11]Qi L L,Hulke B S,Vick B A,et al. Molecular mapping of the rust resistance gene R4 to alarge NBS-LRR cluster on linkage group 13 of sunflower[J]. Theoretical and Applied Genetics,2011,123:351-358.
[12]Kumar P,Pathania S,Katoch P. Genetic and phsical mapping of blast resistance gene Pi-42 (t) on the short arm of rice chromosome 12[J]. Molecular Breeding. 2010,25:217-228.
[13]羅莎. 植物NBS類抗病基因的進化[J]. 遺傳,2014,36(12):1219-1225.
[14]劉夢雅,李偉明,吳偉,等. 小果野蕉(Musa acuminata)全基因組NBS抗病基因的鑒定與分析[J]. 熱帶亞熱帶植物學報,2014,22(5):486-494.
[15]汪結明,江海洋,趙陽,等. 玉米自交系B73全基因組NBS類型抗病基因分析[J]. 作物學報,2009,35(3):566-570.
[16]闕友雄,許麗萍,林劍偉,等. 甘蔗NBS-LRR類抗病基因同源序列的分離與鑒定[J]. 作物學報,2009b,35(4):631-639.
[17]闕友雄,許麗萍,林劍偉,等. 斑茅NBS-LRR類抗病基因同源序列的克隆與分析[J]. 熱帶作物學報,2009,30(2):192-197.
[18]Que Y,Xu L,Lin J,et al. Isolation and Characterization of disease resistance gene analogs from Erianthus arundinaceus cDNA [J]. Acta Agronomica Sinica,2009,35(11):2022-2028.
[19]暴怡雪,張木清. 中國甘蔗主要真菌性病害研究進展[J]. 中國糖料,2016,38(5):63-65.
[20]劉云龍,張中義. 甘蔗品種對眼斑病抗病性遺傳分析[J]. 云南農業大學學報,1990,5(3):144-149.
[21]龍友華,劉洋洋,吳小毛,等. 貴州甘蔗真菌病害初步調查及褐斑病防治藥劑篩選[J]. 植物保護,2015,41(4):186-190.
[22]周玉飛,張正學,盧加舉,等. 貴州蔗區主要病蟲害初步調查及防治對策[J]. 甘蔗糖業,2014 (4):58-62.
[23]韋金菊,鄧展云,黃誠華,等. 廣西甘蔗主要真菌病害調查初報[J]. 南方農業學報,2012,43 (9):1316-1319.
[24]夏紅明,范源洪,王麗萍,等. 甘蔗種質資源抗眼斑病抗性遺傳分析[J]. 甘蔗糖業,1996 (3):15-18.
[25]馮奕璽. 甘蔗眼斑病與梢腐病的發生及防治[J]. 中國糖料,2001(1):20-22.
[26]Huang S L. Progress of sugarcane disease research in China:recent development[J]. Sugar Tech,2004,6(4):261-265.
[27]李瑞美,林一心,潘世明,等. 淺析果蔗無公害生產、保鮮及深加工技術[J]. 甘蔗,2004,11 (3):34-36.
[28]付瑜華,雷石富,盧加舉,等. 甘蔗新品種黔糖5號抗病性分子鑒定與綜合評價[J]. 分子植物育種,2014,12(6):1243-1250.
[29]李向勇,易代勇. 黔糖3號輪斑病防控試驗初報[J]. 貴州農業科學,2008,36(5):87-88.
[30]賀爾奇,李向勇,彭仕榮,等. 果蔗NBS類抗病基因同源序列的克隆與分析[J]. 分子植物育種,2016,14(2):352-358.
[31]劉建成. 草莓NBS-LRR家族基因的克隆和表達分析與白粉病抗性相關分子標記的研究[D].銀川:寧夏大學,2011.
[32]宋霄,柏素花,戴洪義. 蘋果NBS-LRR1基因的鑒定與表達分析[J]. 園藝學報,2013,40 (7):1233-1243.
(責任編輯 楊賢智)
Expression analysis of NBS resistance gene analogs from chewing cane under two sugarcane diseases stress
FU Yu-hua,HE Er-oi,LEI Shi-fu,LI Xiang-yong,ZHANG Zheng-xue,LU Jia-ju
(Guizhou Institute of Subtropical Crops,Xingyi 562400,China)
Expression analysis of NBS resistance gene anologs (RGA) from chewing cane under infection of Drechslera sacchari (Butler) Subram. and Jain and Leptosphaeria sacchari Breda de Haan,respectively,were performed in order to provide theoretical basis for cloning disease resistance genes and studying disease resistance mechanism. seven cloned chewing cane RGAs were considered as 3 gene fragments. The 2 pathogenic bacteria were inoculated into leaves of the susceptible genotype QT 3 and the disease resistant genotype QT 5 using needle puncturing method respectively,all 3 chewing cane RGAs were up-regulated in the initial infection. The response of RGA12478 to the two diseases was the most rapid while the expression of RGA5 was the highest. Especially under the infection of L. sacchari,the expression of RGA12478 at 12h was about 16 and 6 times of RGA5 and RGA36 expression at the same time point respectively. Therefore,RGA5 was considered to be a key disease resistance gene fragment from chewing cane playing a major role in resisting the infection of D. sacchari and L. sacchari in the initial infection stage respectively. To study the overall disease resistance mechanism of RGA5,follow-up research should includ cloning the full-length gene using RACE technology,analysis of gene function and expression level under exogenous signal factor treatments.
chewing cane;Drechslera sacchari (Butler) Subram. and Jain;Leptosphaeria sacchari Breda de Haan;resistance gene anologs;expression analysis
S432.2+3
A
1004-874X(2017)02-0118-06
2016-12-04
貴州省科技廳聯合基金(黔科合J字LKN[2013]03號);貴州省亞熱帶作物科技創新人才基地建設經費(黔人領發[2016]22號)
付瑜華(1980-),女,博士,副研究員,E-mail:fufu6699@aliyun.com
付瑜華,賀爾奇,雷石富,等. 2種甘蔗病害脅迫果蔗NBS類抗病基因同源序列的表達分析[J].廣東農業科學,2017,44(2):118-123.