王莉,韓永紅,曾娟,李軍
(華中科技大學同濟醫學院附屬武漢中心醫院 腫瘤科,湖北 武漢 430014)
非小細胞肺癌惡性胸水中癌細胞EML4-ALK重排檢測及其臨床意義
王莉,韓永紅,曾娟,李軍
(華中科技大學同濟醫學院附屬武漢中心醫院 腫瘤科,湖北 武漢 430014)
目的探討非小細胞肺癌(NSCLC)患者惡性胸水(MPE)中癌細胞EML4-ALK基因重排的可行性及與其病理特征之間的關系。方法選取138例伴有MPE的NSCLC患者,用瑞氏染色法鑒定MPE中的癌細胞,用免疫組織化學法鑒定腫瘤組織中EML4-ALK基因重排,運用微流控芯片技術檢測NSCLC患者MPE中癌細胞,采用熒光染色法確定癌細胞,采用實時熒光定量聚合酶鏈反應(qRT-PCR)檢測ALK基因重排狀態。結果在138例NSCLC患者中,腫瘤組織免疫組織化學(IHC)染色有10例EML4-ALK基因陽性,qRT-PCR檢測到10例EML4-ALK融合基因重排。IHC和qRT-PCR的一致性為100%,兩者敏感性和特異性均為100%。ALK基因重排狀況與患者EGFR突變等差異有統計學意義(P<0.05),而與病理分型、原發部位、臨床分期及淋巴結轉移等差異無統計學意義(P>0.05)。結論qRT-PCR檢測NSCLC患者MPE中癌細胞EML4-ALK融合基因是篩選ALK基因重排方法的一種補充,值得在臨床中推廣。
非小細胞肺癌;惡性胸水;棘皮動物微管相關類蛋白4和間變性淋巴瘤激酶
肺癌每年新發病例約150萬,其中,約85%為非小細胞肺癌(non small cell lung cancer,NSCLC),肺癌是全世界癌癥相關性死亡的首要原因。化療是治療惡性腫瘤最重要的手段之一,然而腫瘤細胞對化療藥物產生耐藥使得效果不盡人意。靶向藥物在腫瘤臨床中應用越來越廣泛,棘皮動物微管相關類蛋白4(echinoderm microtubule-associated protein-like4,EML4)基因和間變性淋巴瘤激酶(anaplastic lymphoma kinase,ALK)融合基因,被證實為NSCLC的一個重要致癌驅動因子,也是克唑替尼的主要治療靶基因[1]。惡性胸水(malignant pleural effusions,MPE)是中晚期NSCLC的一種常見的嚴重并發癥,約15%的肺癌患者在診斷時就出現MPE,而且50%的NSCLC患者MPE為細胞學檢查陽性。臨床上獲得MPE具有微創、反復多次及易于操作等特點,使得MPE可能替代腫瘤組織用于基因檢測,但是MPE中癌細胞數量較少,還混有炎癥細胞、間皮細胞等,MPE中癌細胞純度較低。筆者用微流控芯片技術提取MPE中的癌細胞,然后用實時熒光定量聚合酶鏈反應(quantitative real time polymerase chain reaction,qRT-PCR)檢測EML4-ALK重排,探討檢測MPE中癌細胞EML4-ALK重排能否作為一種非組織來源的替代方法。
選取2012年4月-2014年4月在本院入住的患者138例經組織病理學證實Ⅲ-Ⅳ期的NSCLC。其中,男性98例,女性40例。詳細記錄患者的病理分型、原發部位、臨床分期、淋巴結轉移及表皮生長因子受體(epidermal growth factor receptor,EGFR)突變等資料。本研究經醫院倫理委員會的批準和受試對象知情同意。
取50 ml惡性胸水行常規的瑞氏染色,紫色為癌細胞,由2位有經驗的病理醫師在熒光顯微鏡下獨立觀察細胞染色情況,有分歧時由第3人協助判定。
術中取得的腫瘤組織或者纖維支氣管鏡活檢取得的組織,采用EnVision二部法。所用一抗克隆號為D5F3,一抗和二抗(購自瑞士羅氏公司),操作采用全自動免疫組織化學(免疫組化)染色機進行。
在診斷性或治療性排放惡性胸水時取最后一管惡性胸水50 ml,以3 000 r/min離心10 min,取沉淀物再懸浮于1 ml磷酸鹽緩沖溶液(phosphate buffer saline,PBS)中備用。微流控納米芯片的制作和修飾過程請參見文獻[2],每個芯片加上250 μl的Streptavidin(濃度為 250 μg/ml),置于 4℃冰箱過夜;組裝芯片,并用0.5ml的PBS沖洗1次,流速為0.5ml/h;用注射器加入500 μl濃度為200 μg/ml的上皮細胞黏附分子,在常溫下孵育45 min,再用0.5 ml的PBS沖洗1次;將1 ml的惡性胸水以0.5 ml/h的速度流過芯片,最后用并用0.5 ml的PBS沖洗1次,流速為0.5 ml/h,卸載芯片并保存在4℃冰箱中。
將捕獲癌細胞的芯片用4%的甲醛溶液固定15 min,然后用200 μl的PBS沖洗。對樣品進行免疫組化染色,其中先用異硫氰酸熒光素標記的細胞角蛋白抗體(200 μg/ml)200 μl在常溫下孵育45 min,然后用200 μl的PBS輕輕沖洗芯片;再用花氰染料5熒光染料標記的白細胞共同抗原CD45抗體(200 μg/ml)在常溫下孵育45 min,然后用200 μl的PBS輕輕沖洗芯片;最后用4',6-二脒基-2-苯基吲哚(10μg/ml)200μl在常溫下孵育10min,然后用200 μl的PBS輕輕沖洗芯片。對固定在納米芯片上特異性捕獲的癌細胞和非特異性捕獲的白細胞,用熒光顯微鏡進行鑒別確認。
將捕獲在納米芯片上的癌細胞用胰酶處理后,可釋放出高純度的癌細胞。然后提取癌細胞的總核糖核酸(ribonucleic acid,RNA),每例樣品提起 30~300 ng的RNA在42℃孵育1 h和95℃孵育5 min后逆轉錄為互補脫氧核糖核酸,然后置于冰中冷卻。qRT-PCR依據試劑公司操作說明書進行操作。在每個樣本的qRT-PCR進行以下4個反應[3]。所有的4個實驗在Mx3000P qRT-PCR設備執行(美國安捷倫科技公司)。qRT-PCR程序進行如下:初始在95℃下變性5 min,隨后95℃保持25 s,在64℃保持20 s,72℃保持 20 s,循環 15 次;93℃保持 25s,60℃保持35 s,72℃保持20 s,循環31次。定量判斷根據融合熒光信號強度。測定得Ct值≤30周期被認定癌細胞中檢測到EML4-ALK基因重排。用看家基因確保RNA的完整性。陽性對照和陰性對照確保試驗效率。
數據分析采用SPSS 17.0與GraphPad Prism 5.0統計軟件,計數資料以率(%)表示,采用χ2檢驗,P<0.05為差異有統計學意義。
不同病理分型、不同原發部位、不同臨床分期以及淋巴結轉移有無間的EML4-ALK融合基因重排陽性率的比較,經χ2檢驗,差異均無統計學意義;EGFR突變有無間EML4-ALK融合基因重排陽性率的比較,經χ2檢驗,差異有統計學意義(χ2=5.132,P=0.023)。見附表。
對惡性胸水中癌細胞經瑞氏染色后,通過熒光顯微鏡觀察拍照,癌細胞為紫色且細胞直徑范圍為10~40 μm,見圖 1。
對捕獲的癌細胞行免疫組化染色,通過熒光顯微鏡觀察拍照,可以明確鑒別出癌細胞(DAPI+/FITC+/Cy5-)和惡性胸水中的白細胞(DAPI+/FITC-/Cy5+)。見圖2。

附表 NSCLC患者不同臨床病理特征EML4-ALK融合基因重排陽性率的比較

圖1 惡性胸水中癌細胞 (瑞氏染色×400)

圖2 惡性胸水中的癌細胞和白細胞
在138例NSCLC中,對癌組織行免疫組化染色,陽性表達的判定標準:腫瘤細胞胞質內出現強染色顆粒,發現有10例EML4-ALK基因重排陽性7.25%(10/138),陽性染色。見圖 3。
惡性胸水中癌細胞用qRT-PCR檢測EML4-ALK基因重排,其中,有10例為陽性,剩余為陰性,陽性率為7.25%(10/138),陰性和陽性結果見圖4。

圖3 NSCLC癌組織中EML4-ALK基因免疫組化染色結果

圖4 惡性胸水中癌細胞qRT-PCR檢測EML4-ALK基因重排
EML4-ALK融合基因由第2號染色體短臂插入形成,其嵌合產物可導致ALK酪氨酸激酶持續高表達,從而激活下游PI3K/AKT、MAPK等信號通路,導致腫瘤的發生和轉移[4]。在臨床上應用ALK抑制劑克唑替尼已對ALK融合基因陽性的NSCLC的患者產生獲益[5-7],克唑替尼治療ALK陽性的NSCLC患者客觀有效率高達60%[7]。而NSCLC中EML4-ALK陽性率為3%~8%[8]。因此,篩選NSCLC中EML4-ALK重排陽性率高的目標人群進行靶向治療具有重要的臨床意義。
免疫組化檢測EML4-ALK基因重排具有價廉和省時的特點,已被廣泛應用于臨床。WANG等[9]研究發現,通過IHC法和FISH法檢測MPE中EML4-ALK基因重排的結果是完全一致的。JIANG等[10]在腫瘤組織中兩種方法檢測結果也一致。在本研究中,用免疫組化檢測腫瘤組織中EML4-ALK重排陽性率為7.25%(10/138),用qRT-PCR檢測MPE中癌細胞的EML4-ALK重排陽性率為7.25%(10/138)。免疫組織化學和qRT-PCR兩種檢測方法一致率為100%,敏感性為100%(10/10),特異性也為100%(128/128)。本研究結果表明,用qRT-PCR檢測MPE中癌細胞EML4-ALK重排是一種非組織來源的EML4-ALK檢測替代方法。
獲取腫瘤組織常代表某個時間點[11],有時甚至無有效組織可用,因此用IHC法對腫瘤組織的染色檢測EML4-ALK重排存在一定的局限性。與組織樣品的檢測相比,MPE的獲得具有微創、反復多次及易于操作等特點[12-15],用qRT-PCR檢測MPE中癌細胞EML4-ALK重排可以實時動態反映患者的狀況,可以用于靶向治療藥物療效監測等。本研究中采用微流控芯片技術獲得MPE中癌細胞純度高,qRT-PCR也是一個敏感高效的方法,因此用qRT-PCR檢測MPE中癌細胞EML4-ALK重排在臨床實踐中具有極大的推廣應用價值。
綜上所述,筆者的研究結果表明,基于MPE中癌細胞的EML4-ALK檢測與基于腫瘤組織的EML4-ALK檢測具有高度的一致性,證實利用MPE中癌細胞檢測EML4-ALK重排是一種可行和可靠的非組織來源的替代方法。在腫瘤臨床中獲得MPE具有微創、反復多次及易于操作等優點,檢測MPE中癌細胞的EML4-ALK重排不但可以指導NSCLC的靶向治療,而且可以用于動態監測藥物的反應和疾病的進展情況,值得在臨床工作中進一步推廣。
[1]CHOI Y L,TAKEUCHI K,SODA M,et al.Identification of novel isoforms of the EML4-ALK transforming gene in non-small cell lung cancer[J].Cancer Res,2008,68(13):4971-4976.
[2]SHEN Q,PENG C,ZHAN Y,et al.Aptamer-polymer functionalized silicon nanosubstrates for enhanced recovered circulating tumor cell viability and in vitro chemosensitivity testing[J].Int J Nanomedicine,2016,2016(11):2133-2146.
[3]ZHONG J,LI X,BAI H,et al.Malignant pleural effusion cell blocks are substitutes for tissue in EML4-ALK rearrangement detection in patients with advanced non-small-cell lung cancer[J].Cytopathology,2016,27(6):433-443.
[4]FU S,WANG F,SHAO Q,er al.Detection of EML4-ALK fusion gene in Chinese non-small cell lung cancer by using a sensitive quantitative real-time reverse transcriptase PCR technique[J].Appl Immunohistochem Mol Morphol,2015,23(4):245-254.
[5]CHIARI R,DURANTI S,LUDOVINI V,et al.Long-term response to gefitinib and crizotinib in lung adenocarcinoma harbor ing both epidermal growth factor receptor mutation and EML4-ALK fusion gene[J].J Clin Oncol,2014,32(9):e30-32.
[6]FONTANA D,CECCON M,GAMBACORTI-PASSERINI C,et al.Activity of second-generation ALK inhibitors against crizotinib-resistantmutantsin an NPM-ALK modelcompared to EML4-ALK[J].Cancer Med,2015,4(7):953-965.
[7]TAMIYA A,OKAMOTO I,MIYAZAKI M,et al.Severe acute interstitial lung disease after crizotinib therapy in a patient with EML4-ALK-positive non-small-cell lung cancer[J].J Clin Oncol,2013,31(1):e15-17.
[8]GOVINDAN R.Hope without hype:EML4-ALK inhibition for treatment of lung cancer[J].Lancet Oncol,2011,12(11):983-984.
[9]WANG W,TANG Y,LI J,et al.Detection of ALK rearrangements in malignant pleural effusion cell blocks from patients with advanced non-small cell lung cancer:a comparison of Ventana immunohistochemistry and fluorescence in situ hybridization[J].Cancer Cytopathol,2014,123(2):117-122.
[10]JIANG L,YANG H,HE P,et al.Improving selection criteria for ALK inhibitor therapy in non-small cell lung cancer:a pooled-data analysis on diagnostic operating characteristics of immunohistochemistry[J].Am J Surg Pathol,2016,40(5):697-703.
[11]MARTELLI M P,SOZZI G,HERNANDEZ L,et al.EML4-ALK rearrangement in non-small cell lung cancer and non-tumor lung tissues[J].Am J Pathol,2009,174(2):661-670.
[12]TAMIYA M,TAMIYA A,YASUE T,et al.Vascular endothelial growth factor in plasma and pleural effusion is a biomarker for outcome after bevacizumab plus carboplatin-paclitaxel treatment for non-small cell lung cancer with malignant pleural effusion[J].Anticancer Res,2016,36(6):2939-2944.
[13]MATIKAS A,KENTEPOZIDIS N,GEORGOULIAS V,et al.Management of resistance to crizotinib in anaplastic lymphoma kinase-positive non-small-cell lung cancer[J].Clin Lung Cancer,2016,17(6):474-482.
[14]CHEN Y L,LEE C T,LU C C,et al.Epidermal growth factor receptor mutation and anaplastic lymphoma kinase gene fusion:detection in malignant pleural effusion by RNA or PNA analysis[J].PLoS One,2016,11(6):e0158125.
[15]AKAMATSU H,KOH Y,KENMOTSU H,et al.Multiplexed molecular profiling of lung cancer using pleural effusion[J].J Thorac Oncol,2014,9(7):1048-1052.
Detection ofEML4-ALKgene rearrangement in NSCLC cells and its clinical significance
Li Wang,Yong-hong Han,Juan Zeng,Jun Li
(Department of Oncology,The Central Hospital of Wuhan,Tongji Medical College,Huazhong University of Science and Technology,Wuhan,Hubei 430014,China)
ObjectiveToinvestigatetheapplication ofdetecting echinoderm microtubule-associated protein-like 4-anaplastic lymphoma kinase (EML4-ALK)gene rearrangement by qRT-PCR in non-small cell lung cancer cells (NSCLC),and to evaluate the relationship betweenEML4-ALKgene rearrangement and clinical relevance.MethodsA total of 138 patients confirmed with NSCLC in malignant pleural effusion(MPE)were recruited in this study.Cancer cells in MPE were identified by Wright's staining and microfluidic chip technology.EML4-ALKgene rearrangement in cancer cells was determined by Immunohistochemistry(IHC),and quantitative real time polymerase chain reaction (qRT-PCR).ResultsTen out of 138 (7.25%)patients were identified with EML4-iat d protein-lik by IHC,who were also verified by qRT-PCR.Sensitivity and specificity of IHC and qRT-PCR were 100%.TheEML4-ALK gene rearrangement was correlated with EGFR mutation (P<0.05),while no relation between theEML4-ALKgene rearrangement and tumor characters including histological type,site of primary onset,clinical stage and lymphatic metastasis(P>0.05).ConclusionsqRT-PCR is a reliable method for detection ofEML4-ALKrearrangement detection in NSCLC.
non-small-cell lung cancer;malignant pleural effusions;echinoderm microtubule-associated protein-like4-anaplastic lymphoma kinase
R730.43
A
10.3969/j.issn.1005-8982.2017.24.007
1005-8982(2017)24-0034-05
2017-03-29
(王榮兵 編輯)