水藥金耳環(huán)多糖對實驗性2型糖尿病模型大鼠糖脂代謝、腎功能及氧化應(yīng)激的影響Δ

周多強，李溥，羅良琦，楊再波，王其麗（.貴州省黔南布依族苗族自治州中醫(yī)醫(yī)院內(nèi)分泌科，貴州都勻558000；.黔南民族師范學院/貴州省高校民族藥用植物資源開發(fā)工程研究中心，貴州都勻558000）

水藥金耳環(huán)多糖對實驗性2型糖尿病模型大鼠糖脂代謝、腎功能及氧化應(yīng)激的影響Δ

周多強1＊，李溥1，羅良琦1，楊再波2，王其麗1（1.貴州省黔南布依族苗族自治州中醫(yī)醫(yī)院內(nèi)分泌科，貴州都勻558000；2.黔南民族師范學院/貴州省高校民族藥用植物資源開發(fā)工程研究中心，貴州都勻558000）

目的：研究水藥金耳環(huán)多糖對實驗性2型糖尿病模型大鼠糖脂代謝、腎功能及氧化應(yīng)激的影響，為金耳環(huán)多糖的開發(fā)利用提供參考。方法：將60只SD大鼠隨機分為正常對照組、模型對照組、陽性對照組（厄貝沙坦片，0.02 g/kg）和金耳環(huán)多糖低、中、高劑量組（以生藥計分別為2、4、8 g/kg），每組10只。除正常對照組外，其余各組大鼠均ip鏈脲佐菌素75 mg/（kg·d）復制糖尿病大鼠模型。成模后，各給藥組大鼠ig相應(yīng)藥物，正常對照組和模型對照組大鼠ig等體積5%羧甲基纖維素鈉溶液，每天2次，連續(xù)42 d。給藥結(jié)束后，采用紫外分光光度計檢測肝組織中肝糖原含量；采用全自動生化分析儀檢測大鼠24 h尿量、24 h尿蛋白含量，血清中三酰甘油（TG）、膽固醇（TC）、低密度脂蛋白膽固醇（LDL-C）、高密度脂蛋白膽固醇（HDL-C）、肌酐（Cr）、尿素氮（BUN）水平，以及腎組織中超氧化物歧化酶（SOD）、谷胱甘肽過氧化物酶（GSH-Px）、過氧化氫酶（CAT）、超氧化物歧化酶（ROS）、丙二醛（MDA）水平。結(jié)果：與正常對照組比較，模型對照組大鼠肝組織中肝糖原含量減少（P＜0.05）；24 h尿量、24 h尿蛋白量增加（P＜0.05）；血清中TG、TC、LDL-C水平升高（P＜0.05），HDL-C水平降低（P＜0.05）；腎組織中SOD、CAT、GSH-Px水平降低（P＜0.05），ROS、MDA水平升高（P＜0.05）。與模型組比較，除肝組織中肝糖原含量、血清中HDL-C水平以及金耳環(huán)多糖低劑量組大鼠24 h尿量改善不顯著外，其余各給藥組大鼠上述指標均得到明顯改善（P＜0.05）。結(jié)論：金耳環(huán)多糖可調(diào)節(jié)實驗性2型糖尿病模型大鼠的血脂代謝紊亂、改善大鼠腎功能和提高腎抗氧化能力。

水藥；金耳環(huán)多糖；2型糖尿病；血糖；血脂；腎損傷；氧化應(yīng)激；大鼠

糖尿病是一種由于胰島素分泌缺陷或胰島素作用障礙所致的以高血糖為特征的代謝性疾病，在血糖升高的同時，胰島素抵抗造成的糖脂代謝紊亂可引起胰島β細胞的氧化應(yīng)激損傷[1]。長期高血糖的環(huán)境下易產(chǎn)生大量的活性氧簇（ROS），ROS激活可引起糖尿病腎病晚期糖基化終末產(chǎn)物（AGEs）形成[2]。AGEs使清除自由基的各種抗氧化酶的活性下降，引起機體自由基增多，進而導致腎組織損傷[3]。改善糖尿病患者的氧化應(yīng)激狀態(tài)，能有效緩解糖尿病患者病程進展，對其并發(fā)癥的防治有積極的作用。

金耳環(huán)是貴州省水族民間常用藥材，為馬兜鈴科植物金耳環(huán)（Asarum insigne Diels）的全草，水藥記載名為“罵廣瓦”，具有溫經(jīng)散寒、散瘀止痛的功效，主要用于風寒痹痛、跌打損傷、糖尿病、急性腸胃炎、風寒感冒、慢性支氣管炎等病癥的治療[4-5]。據(jù)報道，金耳環(huán)多糖具有鎮(zhèn)痛、抗炎的作用[6]，能明顯延長濃氨水、二氧化硫誘發(fā)的小鼠咳嗽潛伏期，減少小鼠3 min內(nèi)的咳嗽次數(shù)，有明顯的止咳、祛痰作用[7]。目前，國內(nèi)尚未見有關(guān)金耳環(huán)多糖降血糖、降血脂、抗氧化等方面的實驗研究報道。故本研究擬建立2型糖尿病模型，觀察金耳環(huán)多糖對模型大鼠血糖、血脂、抗氧化指標及尿蛋白的影響，為金耳環(huán)多糖后期開發(fā)研究提供實驗依據(jù)。

1 材料

1.1 儀器

AL204電子天平（上臺鈺電子有限公司）；AODPHS25精密pH計（北京愛歐德儀器設(shè)備有限公司）；TGL-24MC高速冷凍離心機（長沙湘銳離心機有限公司）；GTR16-2低溫離心機（北京時代北利離心機有限公司）；GT-1640血糖儀（日本愛科來株式會社）；752Pro紫外-可見光分光光度計（上海棱光技術(shù)有限公司）；LC 20AB液相色譜儀（日本島津公司）；AU-2700全自動生化分析儀（日本奧林巴斯公司）。

1.2 藥材、藥品與試劑

金耳環(huán)藥材采自貴州省三都水族自治縣九阡鎮(zhèn)，經(jīng)貴陽中醫(yī)學院生藥學教研室李江教授鑒定為真品；厄貝沙坦片（揚子江藥業(yè)集團北京海燕藥業(yè)有限公司，批號：161019，規(guī)格：75 mg/片）；鏈脲佐菌素（STZ，美國Sigma公司）；空腹血糖（FBG）、三酰甘油（TG）、膽固醇（TC）、低密度脂蛋白膽固醇（LDL-C）、高密度脂蛋白膽固醇（HDL-C）、肌酐（Cr）、尿素氮（BUN）、超氧化物歧化酶（SOD）、谷胱甘肽過氧化物酶（GSH-Px）、過氧化氫酶（CAT）、丙二醛（MDA）、ROS、肝糖原和考馬斯亮藍蛋白測定試劑盒（南京建成生物工程研究所，批號：20160721、20160827、20160827、20160827、20160827、20160925、20160925、20160918、20160920、20160928、20161017、20161122、20161022、20161127）；其余試劑均為分析純。

1.3 動物

SPF級SD大鼠60只，♂，體質(zhì)量為（200±20）g，購自原第三軍醫(yī)大學實驗動物中心[動物生產(chǎn)許可證號：SCXK（渝）2012-008]。所購大鼠于溫度為（20±2）℃、濕度為（50±15）%、12 h/12 h明暗循環(huán)的環(huán)境下飼養(yǎng)7 d后開始實驗，飼養(yǎng)期間予以標準飲食。

2 方法

2.1 金耳環(huán)多糖的制備

取金耳環(huán)藥材100 g，洗凈，放入消毒鍋內(nèi)121℃加熱30 min滅酶，60℃烘干，粉碎后過80目篩得干粉。將干粉用80%乙醇充分浸漬，回流提取2次，每次1 h，合并濾液并濃縮，加入無水乙醇使含醇量至80%，靜置24 h。傾去上清液，沉淀用去離子水溶解，反復凍融除雜至無沉淀，Sevage法除蛋白質(zhì)至無游離蛋白（多糖溶液在280 nm波長處無紫外吸收）。15%H2O2脫色，過濾，加入無水乙醇使含醇量至80%，靜置24 h，傾去上清液，沉淀依次用無水乙醇、丙酮、無水乙醚多次洗滌，除去其脂溶性成分。于60℃減壓干燥，制得灰白色的粉末，即為金耳環(huán)粗多糖（苯酚-濃硫酸法測得金耳環(huán)多糖的含量為43.57%，按葡萄糖含量計）[8-9]。將金耳環(huán)粗多糖粉末用5%羧甲基纖維素鈉溶液制備成質(zhì)量濃度為1 g/mL的濃縮液，備用。

2.2 分組、造模與給藥

2.2.1 分組將60只大鼠隨機分成6組，分別為正常對照組、模型對照組、陽性對照組（厄貝沙坦片，0.02 g/kg，以成人臨床劑量的20倍換算）和金耳環(huán)多糖低、中、高劑量組（以生藥計分別為2、4、8 g/kg，分別以成人臨床劑量的20、40、80倍換算），每組10只。以每組大鼠體質(zhì)量、體溫為基礎(chǔ)值，采用SAS 9.4統(tǒng)計軟件進行LSD檢驗分組均衡性。

2.2.2 造模確認分組均衡后，除正常對照組外，其余各組大鼠均復制糖尿病模型。造模前稱體大鼠質(zhì)量，禁食不禁水12 h后ip STZ 75 mg/（kg·d）（以1%檸檬酸-檸檬酸納緩沖液為溶劑），連續(xù)注射2 d。注射后大鼠自由飲食，7 d后稱大鼠體質(zhì)量。然后，大鼠在自由飲水的情況下禁食5 h，取尾血，分離血清，采用血糖儀試紙法測FBG值，F(xiàn)BG值＜16.7 mmol/L的大鼠再注射2 d。7 d后所有實驗大鼠再次測定FBG值，以FBG＞16.7 mmol/L為成模標準[10-11]。正常對照組大鼠注射1%檸檬酸-檸檬酸納緩沖液（75 mg/kg）作安慰劑。

2.2.3 給藥造模成功后，各給藥組大鼠分別按“2.2.1”項下劑量ig相應(yīng)藥物，正常對照組和模型對照組大鼠ig 5%羧甲基纖維素鈉溶液，每天2次，連續(xù)42 d。觀察大鼠一般情況。

2.3 標本采集

（1）尿液：實驗第42天，采用代謝鼠籠收集各組大鼠24 h尿液量。（2）血清：斷頭取血5 mL，以1 435×g離心10 min，吸取血清2.0 mL于EP管中，置于－80℃條件下保存，待測。（3）肝組織：取大鼠新鮮肝組織，置于－80℃條件下保存，待用。（4）腎組織勻漿液：取出大鼠腎組織后，按照1∶10的比例（g∶mL）加入4℃、pH 7.2的磷酸緩沖液（PBS），置于冰塊中，XHF-D高速分散器勻漿（7 500 r/min，0.6 s），連續(xù)3次。勻漿液用1.5 mL離心管分裝后，再在4℃條件下以730×g離心10 min，吸取上清液，待測。

2.4 指標檢測

2.4.1 肝糖原含量測定取新鮮肝組織適量，洗凈稱質(zhì)量后，加堿液沸水浴20 min，濃硫酸-蒽醌法顯色，紫外-可見光分光光度計檢測吸光度[12]，按試劑盒說明書計算肝糖原含量。

2.4.2 生化指標測定大鼠血清中TG、TC、LDL-C、HDL-C、Cr、BUN水平和腎組織中MDA、SOD、CAT、GSH-Px、ROS水平以及24 h尿蛋白量均采用全自動生化分析儀進行測定，具體操作嚴格按照試劑盒說明書進行。

2.5 統(tǒng)計學方法

3 結(jié)果

3.1 金耳環(huán)多糖對大鼠一般情況的影響

造模后給藥前，與正常對照組比較，模型對照組、陽性對照組和金耳環(huán)多糖低、中、高劑量組大鼠體質(zhì)量均顯著下降（P＜0.05），外觀呈毛發(fā)松散、精神較萎靡狀態(tài)，同時出現(xiàn)了多飲、多食、多尿等典型的糖尿病癥狀。給藥42 d后，正常對照組大鼠體質(zhì)量較給藥前顯著增加（P＜0.05）；模型對照組大鼠體質(zhì)量較正常對照組顯著下降（P＜0.05），但其給藥前、后體質(zhì)量下降不明顯（P＞0.05），一般狀態(tài)未有明顯改善；與模型對照組比較，陽性對照組和金耳環(huán)多糖低、中、高劑量組大鼠多飲、多尿等癥狀及精神狀態(tài)均有一定程度的改善。

3.2 金耳環(huán)多糖對大鼠FBG的影響

造模后給藥前，與正常對照組比較，其余各組大鼠FBG均顯著升高（P＜0.05）。給藥42 d后，與模型對照組比較，金耳環(huán)多糖各劑量組大鼠FBG均顯著降低（P＜0.05），且呈劑量依賴性，結(jié)果見表1。

3.3 金耳環(huán)多糖對大鼠肝組織中肝糖原含量的影響

與正常對照組比較，模型對照組大鼠肝組織中肝糖原含量明顯減少（P＜0.05）。與模型對照組比較，各給藥組大鼠肝組織中肝糖原含量無明顯改變（P＞0.05）；正常對照組、模型對照組、陽性對照組和金耳環(huán)多糖低、中、高劑量組大鼠肝組中肝糖原含量分別為（4.98±0.95）、（4.31±0.23）、（4.34±0.99）、（4.31±0.36）、（4.35±0.45）、（4.39±0.38）mg/g（n＝10）。

表1 各組大鼠FBG的測定結(jié)果（±s，n＝10）Tab1 Determination results of rats’FBG in each group（±s，n＝10）

表1 各組大鼠FBG的測定結(jié)果（±s，n＝10）Tab1 Determination results of rats’FBG in each group（±s，n＝10）

注：與正常對照組比較，＊P＜0.05；與模型對照組比較，#P＜0.05Note：vs.normal control group，＊P＜0.05；vs.model control group，#P＜0.05

FBG，mmol/L給藥42 d后7.38±1.32 29.65±2.67＊28.25±4.22 24.58±4.05#21.63±4.42#16.67±5.48#組別正常對照組模型對照組陽性對照組金耳環(huán)多糖低劑量組金耳環(huán)多糖中劑量組金耳環(huán)多糖高劑量組造模后給藥前6.38±1.25 21.42±2.57＊21.35±3.44＊21.87±2.27＊20.37±5.23＊20.99±5.45＊

3.4 金耳環(huán)多糖對大鼠血脂的影響

與正常對照組比較，模型對照組大鼠血清中TG、TC和LDL-C水平顯著升高（P＜0.05），HDL-C水平顯著降低（P＜0.05）。與模型對照組比較，各給藥組大鼠血清中HDL-C水平無明顯改變（P＞0.05），TG、TC和LDL-C水平顯著降低（P＜0.05），結(jié)果見表2。

表2 各組大鼠血脂相關(guān)指標測定結(jié)果（±s，n＝10，mmol/L）Tab2 Determination results of blood lipid-related inde-xes of rats in each group（±s，n＝10，mmol/L）

表2 各組大鼠血脂相關(guān)指標測定結(jié)果（±s，n＝10，mmol/L）Tab2 Determination results of blood lipid-related inde-xes of rats in each group（±s，n＝10，mmol/L）

注：與正常對照組比較，＊P＜0.05；與模型對照組比較，#P＜0.05Note：vs.normal control group，＊P＜0.05；vs.model control group，#P＜0.05

LDL-C 0.68±0.07 1.13±0.22＊0.81±0.15#0.63±0.16#0.58±0.22#0.51±0.37#組別正常對照組模型對照組陽性對照組金耳環(huán)多糖低劑量組金耳環(huán)多糖中劑量組金耳環(huán)多糖高劑量組TG 0.75±0.21 1.59±0.46＊0.84±0.19#1.14±0.34#1.09±0.43#0.98±0.64#TC 1.98±0.21 3.08±0.19＊2.57±0.28#2.35±0.52#2.24±0.67#2.15±0.52#HDL-C 1.67±0.35 0.61±0.18＊0.66±0.09 0.48±0.19 0.52±0.32 0.59±0.41

3.5 金耳環(huán)多糖對大鼠腎功能相關(guān)指標的影響

與正常對照組比較，模型對照組大鼠血清中BUN和Cr水平、24 h尿量、24 h尿蛋白量顯著升高（P＜0.05）。與模型對照組比較，各給藥組大鼠血清中BUN和Cr水平、24 h尿量、24 h尿蛋白量均顯著降低（P＜0.05），結(jié)果見表3。

3.6 金耳環(huán)多糖對大鼠腎氧化應(yīng)激相關(guān)指標的影響

與正常對照組比較，模型對照組大鼠腎組織中SOD、CAT、GSH-Px水平顯著降低（P＜0.05），而ROS、MDA水平顯著升高（P＜0.05）。與模型對照組比較，各給藥組大鼠腎組織中SOD、CAT、GSH-Px水平均顯著升高（P＜0.05），而ROS、MDA水平均顯著降低（P＜0.05），結(jié)果見表4。

表3 各組大鼠腎功能相關(guān)指標的測定結(jié)果（±s，n＝10）Tab3 Determination results of renal function-related indexes of rats in each group（±s，n＝10）

表3 各組大鼠腎功能相關(guān)指標的測定結(jié)果（±s，n＝10）Tab3 Determination results of renal function-related indexes of rats in each group（±s，n＝10）

注：與正常對照組比較，＊P＜0.05；與模型對照組比較，#P＜0.05Note：vs.normal control group，＊P＜0.05；vs.model control group，#P＜0.05

24 h尿蛋白，mg/dL 2.63±0.19 6.99±0.57＊4.82±0.34#5.69±0.29#5.35±0.41#4.61±0.27#組別正常對照組模型對照組陽性對照組金耳環(huán)多糖低劑量組金耳環(huán)多糖中劑量組金耳環(huán)多糖高劑量組BUN，mg/dL 17.25±1.74 27.56±2.28＊20.14±2.34#24.51±2.35#23.72±3.59#22.16±3.47#Cr，mg/dL 0.43±0.067 0.56±0.065＊0.44±0.041#0.49±0.057#0.44±0.072#0.41±0.059#24 h尿量，mL 0.68±0.05 2.76±0.38＊1.45±0.65#2.51±0.52 2.09±0.33#1.56±0.24#

表4 各組大鼠腎氧化應(yīng)激相關(guān)指標的測定結(jié)果（±s，n＝10）Tab4 Determination results of renal oxidative stress-related indexes of rats in each group（±s，n＝10）

表4 各組大鼠腎氧化應(yīng)激相關(guān)指標的測定結(jié)果（±s，n＝10）Tab4 Determination results of renal oxidative stress-related indexes of rats in each group（±s，n＝10）

注：與正常對照組比較，＊P＜0.05；與模型對照組比較，#P＜0.05Note：vs.normal control group，＊P＜0.05；vs.model control group，#P＜0.05

MDA，mmol/g 6.84±1.21 15.97±3.15＊8.64±3.63#12.34±4.02#10.52±2.73#9.02±4.17#組別正常對照組模型對照組陽性對照組金耳環(huán)多糖低劑量組金耳環(huán)多糖中劑量組金耳環(huán)多糖高劑量組SOD，U/g 318.52±23.57 190.75±14.53＊279.65±31.24#208.33±30.82#219.68±25.48#263.22±28.51#CAT，U/g prog 11.39±1.62 6.25±1.43＊13.21±2.95#8.65±1.97#10.95±2.01#13.05±2.48#GSH-Px，U/g 673.65±115.34 487.42±101.82＊628.31±124.37#509.71±99.54#549.83±125.76#619.75±122.57#ROS，U/L 208.89±31.54 398.72±35.41＊251.31±32.87#390.52±22.72#337.76±25.62#285.65±29.37#

4 討論

金耳環(huán)為貴州三都水族自治縣及都勻市水族地區(qū)廣泛應(yīng)用的民族藥材，文獻報道大多是關(guān)于金耳環(huán)多糖提取工藝優(yōu)選和含量測定方面的研究[8-9，13]，但沒有考察其對血糖、血脂、抗氧化指標及尿蛋白的影響。本研究中，筆者以常用的2型糖尿病大鼠模型考察金耳環(huán)多糖對糖尿病大鼠血糖、肝糖原、血脂、腎功能的影響及抗氧化應(yīng)激作用，通過觀察糖尿病大鼠FBG及血清中TG、TC、LDL-C、HDL-C、Cr、BUN水平，肝組織中肝糖原含量，腎組織中SOD、GSH-Px、CAT、MDA、ROS水平以及24 h尿蛋白量等指標的變化，證實了金耳環(huán)多糖對糖尿病大鼠有降血糖、降血脂、改善腎功能及抗氧化應(yīng)激作用。并且為了客觀地評價金耳環(huán)多糖的作用效果，筆者選用了目前臨床治療糖尿病腎病應(yīng)用廣泛的血管緊張素Ⅱ受體阻滯劑厄貝沙坦片為陽性對照。

糖尿病由于胰島素的生物調(diào)節(jié)作用發(fā)生障礙，在血糖升高的同時，常伴有脂質(zhì)代謝異常，患者出現(xiàn)嚴重的代謝紊亂易導致并發(fā)癥發(fā)生，與機體的氧化應(yīng)激反應(yīng)密切相關(guān)[14-16]。另一方面，糖尿病患者在高糖狀態(tài)下，可使細胞內(nèi)還原型輔酶1（NADH）/NAD+比例增加和ROS產(chǎn)生增加[17]，導致抗氧化酶活性下降、清除氧自由基能力下降，使體內(nèi)ROS的積聚增多，最終導致腎小球基底膜損傷[18]。SOD、GSH-Px、過氧化氫酶（CAT）共同組成體內(nèi)的抗氧化酶促系統(tǒng)，整體水平是代表機體對自由基的清除能力和機體健康情況，其中MDA可反映機體脂質(zhì)過氧化程度，間接反映出細胞膜氧化的嚴重程度[14]。本研究結(jié)果顯示，低、中、高劑量的金耳環(huán)多糖均可降低大鼠血清FBG、TG、TC、LDL-C、Cr、BUN水平和尿蛋白含量，升高腎組織中抗氧化酶SOD、GSH-Px的活性，以及降低腎組織中ROS、MDA含量，這提示金耳環(huán)多糖有明顯的降血糖、調(diào)節(jié)血脂代謝紊亂、改善腎功能及減輕氧化應(yīng)激對腎組織的損傷等作用。

綜上所述，金耳環(huán)多糖對實驗性2型糖尿病模型大鼠有降低血糖作用，對血脂代謝紊亂有一定的調(diào)節(jié)作用，能降低血清中Cr、BUN的水平，升高腎組織中抗氧化因子SOD、GSH-Px活性及CAT的含量，降低腎組織中MDA、ROS含量及促進尿蛋白的排出，緩解氧化應(yīng)激對腎組織所造成的損傷，從而發(fā)揮對糖尿病模型大鼠腎損傷的防治作用。但金耳環(huán)多糖具體的降血糖、降血脂及保護腎臟的作用機制靶點有待于進一步的研究。

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Effect of Shui Medicine Asarum insigne Polysaccharide on Glycolipid Metabolis，Renal Function and Oxidative Stress in Model Rats with Experimental Type 2 Diabetes

ZHOU Duoqiang1，LI Pu1，LUO Liangqi1，YANG Zaibo2，WANG Qili1（1.Dept.of Endocrine，Guizhou Qiannan Buyi and Miao Autonomous Prefecture Hospital of TCM，Guizhou Duyun 558000，China；2.Qiannan Normal College for Nationalities/Guizhou Province College Research Centre of Ethnical Medicinal Plant Resources Exploitation Engineering，Guizhou Duyun 558000，China）

OBJECTIVE：To study the effect of Shui medicine Asarum insigne polysaccharide on glycolipid metabolism，renal function and oxidative stress in rats with experimental type 2 diabetes，and provide reference for its development and use.METHODS：60 SD rats were randomly divided into normal control group，model control group，positive control group（Irbesartan tablets，0.02 g/kg）and A.insigne polysaccharide low-dose，medium-dose，high-dose groups（calculated by crude drug as 2，4，8g/kg），10 in each group.Except for normal control group，rats in other groups were intraperitoneally injected streptozotocin 75mg/（kg·d）to induce model with diabetes.After modeling，rats in each administration group were intraperitoneally injected relevant medicines，and rats in normal control group and model control group were intragastrically administrated 5%carboxymet hylcellulose sodium solution，twice a day，for 42 d.After administration，UV spectrophotometer was used to detect the glycogen content in liver tissue.Automatic biochemical analyzer was used to detect 24 h urine output，24 h urinary protein content of rats，levels of triglyceride（TG），cholesterol（TC），low-density lipoprotein cholesterol（LDL-C），high-density lipoprotein cholesterol（HDL-C），creatinine（Cr），urea nitrogen（BUN）in serum，and levels of superoxide dismutase（SOD），glutathione peroxidase（GSH-Px），catalase（CAT），superoxide dismutase（ROS），malondialdehyde（MDA）in kidney tissue.RESULTS：Compared with normal control group，glycogen content in liver tissue of rats in model control group was decreased（P＜0.05）；24 h urine output and 24 h urinary protein content were increased（P＜0.05）；levels of TG，TC，LDL-C in serum were increased（P＜0.05），and HDL-C level was decreased（P＜0.05）；levels of SOD，CAT，GSH-Px in kidney tissue were decreased（P＜0.05），and levels of ROS，MDA were increased（P＜0.05）.Compared with model group，except that there were no significant differences in the improvement of urinary protein content，HDL-C level in serum，24 h urine output in A.insigne polysaccharide low-dose group，above-mentioned indexes in each administration group were obviously improved（P＜0.05）.CONCLUSIONS：A.insigne polysaccharide can regulate lipid metabolic disorders，and improve renal function andantioxidant capacity of rats.

Shui medicine；Asarum insigne polysaccharide；Type 2 diabetes；Blood glucose；Blood lipid；Renal injury；Oxidative stress；Rats

R285

A

1001-0408（2017）31-4415-05

DOI 10.6039/j.issn.1001-0408.2017.31.25

貴州省黔南州科技局資助項目（No.黔南科合社字〔2016〕19號）

＊副主任醫(yī)師，碩士。研究方向：糖尿病的基礎(chǔ)與臨床治療。電話：0854-8253432。E-mail：dyzhouduoqiang7788@163.com

2017-05-22

2017-08-25）

（編輯：林靜）