FERMT2在肝癌組織中的表達及其對肝癌細胞生長的調控*

林 潔， 陳小巖， 李潔羽， 王麗萍， 陳惠玉， 林萬松△

(1福建省立醫院病理科， 福建醫科大學省立臨床醫學院， 福建 福州 350001； 2福建省腫瘤醫院腫瘤免疫學研究室， 福建醫科大學附屬腫瘤醫院， 3福建省轉化醫學重點實驗室， 福建 福州 350014)

FERMT2在肝癌組織中的表達及其對肝癌細胞生長的調控*

林 潔1， 陳小巖1， 李潔羽2, 3， 王麗萍1， 陳惠玉1， 林萬松2, 3△

(1福建省立醫院病理科， 福建醫科大學省立臨床醫學院， 福建 福州 350001；2福建省腫瘤醫院腫瘤免疫學研究室， 福建醫科大學附屬腫瘤醫院，3福建省轉化醫學重點實驗室， 福建 福州 350014)

目的觀察fermitin家族同源蛋白2(FERMT2)在肝細胞癌(HCC)組織中的表達，并以體外實驗分析FERMT2基因敲除對肝癌細胞生長及相關調控分子表達的影響。方法采用real-time PCR及免疫組化實驗檢測FERMT2在HCC及癌旁正常肝組織中的表達情況；采用CRISPR/Cas9技術構建FERMT2基因敲除的穩定MHCC97H細胞系，通過WST-1法和流式細胞術比較其與野生型MHCC97H細胞活力、細胞周期和凋亡狀態的改變，并采用Western blot檢測相關調控蛋白的表達變化。結果FERMT2在HCC組織中的mRNA和蛋白表達水平均顯著高于癌旁組織，且FERMT2蛋白的高表達與HCC患者術后復發有關(P<0.05)；成功構建了FERMT2基因敲除的穩定MHCC97H細胞系；與野生型細胞相比，FERMT2基因敲除后細胞活力明顯減弱，S期細胞數量明顯減少，細胞凋亡增加，且細胞內增殖細胞核抗原、細胞周期蛋白及細胞周期蛋白依賴性激酶2的表達均顯著降低(P<0.05)；細胞凋亡抑制因子survivin及Bcl2的表達也明顯下降(P<0.05)，并可檢測到cleaved caspase-3。結論FERMT2在肝癌組織中呈高表達，它可能通過調控細胞周期調節蛋白及抗凋亡蛋白的表達影響肝癌細胞的活力、細胞周期及凋亡，進而在肝癌形成及發展過程中發揮促癌作用。

肝細胞癌； CRISPR/Cas9技術； Fermitin家族同源蛋白2； 細胞增殖； 細胞周期； 細胞凋亡

Fermitin家族同源蛋白2(fermitin family homolog 2，FERMT2)，又稱Kindlin-2，屬于細胞質中fermitin家族成員，由位于人染色體14q22.1的FERMT2基因所編碼。FERMT2與整合素(integrin)相互作用，參與早期肌形成和胚胎發育等重要生理過程[1-2]。研究發現，FERMT2在胃癌、食管癌和膠質瘤等多種惡性腫瘤中表達上調[3-8]，可通過多種信號途徑調控腫瘤細胞增殖與凋亡[5-6， 9-10]。有研究報道FERMT2可能是肝細胞癌(hepatocellular carcinoma，HCC)患者預后不良的一個指標[11]，但其在HCC發生發展中的具體作用及相關分子機制還不明確。本研究采用real-time PCR及免疫組織化學(immunohistochemistry，IHC)技術檢測FERMT2在HCC及癌旁正常肝組織中的表達情況，并分析其與HCC患者術后復發的關系，采用CRISPR/Cas9技術構建FERMT2基因敲除的穩定肝癌細胞系MHCC97H，并比較其與野生型MHCC97H細胞活力、細胞周期和凋亡狀態的變化以及相關調控蛋白的表達情況，初步探討FERMT2對HCC發生發展的作用。

材 料 和 方 法

1 病理組織標本及材料

收集福建省立醫院肝膽外科2015年1月～2015年6月期間手術切除的HCC組織及相應的癌旁正常肝組織標本30例，其中男性25例，女性5例，患者年齡35～77歲，中位年齡59歲。所有患者術前均未行放療、化療、肝動脈栓塞或生物治療。標本離體取材后分為2份，1份在液氮中速凍后，轉入-80 ℃冰箱保存，留待提取組織mRNA；另1份立即固定于10%中性福爾馬林溶液，常規脫水、石蠟包埋、HE染色，于顯微鏡下觀察證實為原發性HCC。癌旁肝組織距離腫瘤2 cm以上，且顯微鏡下證實無癌細胞。對患者隨訪至2017年6月，獲得完整復發情況資料30例，其中術后2年內復發病例23例。復發定義為臨床影像學和/或病理學證實原發部位再次出現腫瘤或遠隔部位出現腫瘤。

人HCC細胞系MHCC97H購于復旦大學肝癌研究所；293T細胞及stbl3感受態細胞為本實驗室保存；LentiCRISPRv2載體、psPAX2和pMD2G慢病毒包裝載體購于Addgene；BsmB I 購于Fermentas；WST-1細胞活力檢測試劑盒購于Roche；細胞周期及凋亡檢測試劑盒購于BD；抗FERMT2鼠單克隆抗體購于Millipore；抗增殖細胞核抗原(proliferating cell nuclear antigen，PCNA)鼠單克隆抗體(2586)、抗細胞凋亡抑制因子survivin兔單克隆抗體(2808)、抗Bcl-2兔多克隆抗體(2872)、抗caspase-3兔單克隆抗體(9665)、抗周期蛋白依賴性激酶2(cyclin-dependent kinases 2， CDK2)兔單克隆抗體(2546)、抗p-CDK2兔多克隆抗體(2561)、抗細胞周期蛋白B1(cyclin B1)兔單克隆抗體(12231)及HRP標記的羊抗兔 II 抗(7074)購于CST；抗cyclin A1+A2兔單克隆抗體(ab185619)、抗cyclin E1兔單克隆抗體(ab33911)、抗GAPDH鼠單克隆抗體(ab8245)及HRP標記的羊抗鼠 II 抗(ab97023)購于Abcam。

2 方法

2.1Real-time PCR實驗 用TRIzol試劑提取HCC及相應癌旁肝組織總RNA，經55 ℃、 30 min逆轉錄合成cDNA，按照LightCycler 480 SYBR Green定量PCR試劑盒(Roche)說明配制反應液，在Roche LightCycler 480 PCR儀上運行，循環參數為95 ℃ 15 s、60 ℃ 1 min，40個循環。FERMT2的上游引物序列為 5’-TGAAATCTGGCTTCGTTGT-3’，下游引物序列為5’-CTCGCTGTTATCTGCTTGT-3’；GAPDH的上游引物序列為5’-GCCGCATCTTCTTTTGCGTC-3’，下游引物序列為5’-TACGACCAAATCCGTTGACTCC-3’。以2-ΔΔCt法計算HCC及癌旁肝組織中FERMT2的相對表達量。

2.2免疫組織化學染色 采用EliVisionTMPlus二步法，予HCC與癌旁肝組織以抗FERMT2抗體(1∶100)進行 I 抗孵育。免疫組化染色結果由2名病理醫師在不參考臨床病理資料的情況下對染色強度及染色范圍進行評定。染色強度在表達最強的區域按著色程度評分：無著色為0分、淡染色為1分、中強染色為2分、強染色為3分；染色范圍按陽性細胞數所占比例評分：≤10% 為0分、11%～25% 為1分、26%～50% 為2分、51%～75% 為3分、≥76% 為4分。染色總分≥3分為蛋白高表達，<3分為蛋白低/無表達。

2.3細胞培養 在37 ℃、5% CO2的細胞培養箱內，使用含10% 胎牛血清、1×105U/L青霉素和100 mg/L鏈霉素的DMEM完全培養基常規培養MHCC97H、293T及stbl3細胞。

2.4小向導RNA(small-guide RNA， sgRNA)靶點選擇及設計 查詢Pubmed的GenBank 數據庫，獲得FERMT2基因序列號為NM_006832，基因大小為2 043 bp。FERMT2基因有3個異構體，3者N端序列一致，差別在于中間和C端序列，且其第1外顯子(exon)主要為mRNA的5’端非翻譯區(5’-UTR)，因此設計的sgRNA靶向其第2外顯子。進入sgRNA設計網站(http://crispr.mit.edu/)，輸入FERMT2基因的exon2序列，根據結果選取前3個得分最高的sgRNA序列進行載體構建，同時在靶位點上、下游各設計1條鑒定引物，用于后續PCR或測序檢測陽性克隆，sgRNA及引物序列見表1。

表1靶向FERMT2基因的sgRNA和鑒定引物序列

Table 1. Three small-guide RNA (sgRNA) sequences targetingFERMT2 and the primer sequences for verifying clones withFERMT2 knockout

NameThesequencehFERMT2-sgRNA-F1CACCGCAGATGGCTGCTACGCGGAChFERMT2-sgRNA-R1AAACGTCCGCGTAGCAGCCATCTGChFERMT2-sgRNA-F2CACCGCGCGGTTCAGGTCCGTCACAhFERMT2-sgRNA-R2AAACTGTGACGGACCTGAACCGCGChFERMT2-sgRNA-F3CACCGTCAGGGTGACATCGCGGTTChFERMT2-sgRNA-R3AAACGAACCGCGATGTCACCCTGAChKindlin2-genomic-FCTGCGAATTCGGTGGGAThKindlin2-genomic-RTTCTCAAATGGGCCCCTC

2.5構建重組質粒 LentiCRISPRv2單載體系統已包含hSpCas9表達盒，用限制性核酸內切酶BsmB I單切空載體，將線性化的載體與sgRNA連接，常規轉化，挑取克隆，用PCR測序鑒定所構建的質粒。

2.6病毒包裝 將LentiCRISPRv2質粒與慢病毒包裝質粒psPAX2和pMD2G按3∶2∶1的比例混合，共轉染293T細胞，12 h后換液，于48 h和72 h分別收集上清液，離心，0.45 μm濾器過濾獲得病毒液，濃縮后保存于-80 ℃以備后用。

2.7FERMT2基因敲除的穩定HCC細胞系的建立及鑒定 將上述制備的病毒液感染MHCC97H細胞(MOI=10)，72 h后用嘌呤霉素(終濃度為2 mg/L)篩選穩定細胞系，未感染病毒的細胞作為對照組也使用相同濃度的嘌呤霉素處理；3～4 d后待對照組細胞全部死亡，停止加藥，將病毒感染的細胞稀釋成單細胞懸液，接種于96孔板，并確保每孔最多1個細胞，每3～5 d換液1次；生長20～25 d后，待單克隆細胞長滿，接種于24孔板；繼續生長10 d左右，將24孔板內的細胞一分為二，其中一份待細胞長滿后提取總蛋白用于Western blot檢測FERMT2的表達，另一份待相應Western blot結果鑒定為FERMT2蛋白缺失表達后，繼續擴大培養，同時提取基因組DNA，使用鑒定引物擴增目的片段后送DNA測序分析，鑒定FERMT2基因編輯情況。

2.8WST-1法檢測細胞活力 按照WST-1試劑的操作說明，消化細胞，按每孔5×103接種至96孔板中，每組細胞接種15孔(設3個復孔，按鋪板后0、24、48、72和96 h檢測)，每孔100 μL，常規培養細胞；于各檢測時點加入WST-1試劑10 μL，37 ℃孵育2 h，酶標儀于450 nm波長測定吸光度(A)值，繪制細胞生長曲線。

2.9流式細胞術檢測細胞周期和凋亡 按照CycletestTMPlus DNA Reagent Kit的說明操作，采用碘化丙啶(propidium iodide，PI)染料標記細胞DNA，于FACS Canto II流式細胞儀(BD)檢測，Cell Quest 軟件自動獲取2～3萬個細胞/樣品， ModFit LT細胞周期擬和軟件分析細胞的DNA倍體數及細胞周期分布情況。

按照PE Annexin V Apoptosis Detection Kit I with 7-AAD的說明書操作，采用Annexin V和7-氨基放線菌素(7-aminoactinomycin D，7-AAD)雙染法標記細胞，于FACS Canto II流式細胞儀檢測并分析細胞的凋亡情況。

2.10Western blot實驗 提取細胞總蛋白，BCA法定量，取20 μg總蛋白經SDS-PAGE分離后轉印至PVDF膜上，分別予以抗FERMT2(1∶2 000)、PCNA(1∶2 000)、survivin(1∶1 000)、Bcl-2(1∶1 000)、caspase-3、(1∶1 000)、CDK(1∶1 000)、p-CDK2(1∶1 000)、cyclin A1+A2(1∶1 000)、cyclin B1(1∶1 000)、cyclin E1(1∶2 000)和GAPDH(1∶3 000)抗體進行 I 抗的孵育，4 ℃過夜，洗滌后加入相應 II 抗(1∶3 000)孵育2 h，加入化學發光底物并置于Bio-Rad ChemiDoc XRS成像系統進行顯影及圖像分析。

3 統計學處理

采用SPSS 19.0統計學軟件進行數據處理和統計分析。計量資料以均數±標準差(mean±SD)表示。采用t檢驗對計量資料進行組間比較，采用Wilcoxon符號秩檢驗對配對樣本的等級資料進行統計分析，采用Wilcoxon秩和檢驗對2個獨立樣本的等級資料進行分析。以P<0.05為差異有統計學意義。

結 果

1 FERMT2在HCC組織中高表達

IHC結果顯示，FERMT2蛋白定位于正常肝細胞和HCC細胞的細胞質，間質中的纖維細胞及平滑肌細胞也呈陽性表達，以此作為內部的陽性對照；在HCC組織中，FERMT2的表達明顯高于相應的癌旁肝組織。Real-time PCR結果顯示，FERMT2在HCC中的表達量為3.82±0.89，相應的癌旁肝組織則為1.95±0.46，差異具有統計學意義(P<0.01)。同時，FERMT2高表達可能與HCC患者的復發有關，免疫組化結果顯示，在23例手術后2年內復發的患者中，有17例(17/23， 73.91%)癌組織中FERMT2呈高表達，而術后2年未復發的7例患者，則全部呈低水平表達。見圖1、2。

Figure 1. FERMT2 expression in HCC and adjacent liver tissues by IHC staining (×100). A: FERMT2 expression is upregulated in HCC tissues; B: FERMT2 expression is downregulated in adjacent liver tissues.

圖1免疫組化染色檢測FERMT2在HCC及癌旁肝組織中的表達

Figure 2. FERMT2 expression in HCC and adjacent liver tissues by real-time PCR. Mean±SD.n=30.**P<0.01vsadjacent liver group.

圖2Real-timePCR檢測FERMT2在HCC及癌旁肝組織中的表達

2 FERMT2基因敲除質粒的鑒定

分別將3對退火的sgRNA oligo與線性化的LentiCRISPRv2載體連接，轉化感受態細胞stbl3，挑取陽性克隆，行PCR鑒定，挑取陽性轉化子接種培養并送測序，測序結果分別與3對sgRNA序列比對，結果完全一致，證實3個重組敲除質粒均構建成功，見圖3。

Figure 3. Validation of recombinant lentivirusFERMT2 knock-out vector. A: amplification of recombinant lentivirusFERMT2 knock-out vector by PCR. 1～3: LentiCrisprv-hFERMT2-sgRNA-1; 4～6: LentiCrisprv-hFERMT2-sgRNA-2; 7～9: LentiCrisprv-hFERMT2-sgRNA-3; B: sequence ofFERMT2 recombinant lentivirus knock-out vector. Upper:hFERMT2-sgRNA-1; middle:hFERMT2-sgRNA-2; lower:hFERMT2-sgRNA-3. Sequence with red underline represents sgRNA sequence.

圖3重組慢病毒FERMT2敲除質粒的鑒定

3 FERMT2基因敲除穩定HCC細胞系的鑒定

本實驗共獲得22個細胞克隆，選取其中7個細胞形態及生長狀態良好的克隆，應用Western blot法檢測每個單克隆細胞中FERMT2蛋白的表達情況。結果顯示，第1、4和7號克隆FERMT2蛋白仍然正常表達，而第2、3、5和6號克隆均不表達FERMT2，見圖4A。提取第2、5和6號細胞克隆的基因組DNA，擴增sgRNA靶向的FERMT2第2外顯子片段，回收送測序。測序結果顯示，第5號細胞克隆在sgRNA-2靶向序列處缺失了2個堿基，出現移碼突變，見圖4B；第2與第6號細胞克隆FERMT2基因編輯情況類似，分別缺失了5個及2個堿基。實驗選擇5號細胞克隆進行后續實驗，命名為97H-ko-FERMT2，未轉染的野生型MHCC97H細胞為其對照，命名為97H-wt-FERMT2。

Figure 4. Validation of stable MHCC97H cells infected with the sgRNA-Cas9 knockout vector. A: Western blot analysis of FERMT2 expression in different clones of stable MHCC97H cells infected with the sgRNA-Cas9 knockout vector; B: sequence map of the region ofFERMT2 that misses bases in clone No. 5 of the stable CRISPR/Cas9-knockout MHCC97H cells. The red box highlights the missing two bases. The target site of sgRNA-2 is underlined in blue.

圖4FERMT2基因穩定敲除的MHCC97H細胞的鑒定

4 敲除FERMT2抑制HCC細胞的活力

WST-1法分別檢測97H-ko-FERMT2和97H-wt-FERMT2細胞在體外的活力。結果顯示，自接種24 h起，各時點97H-ko-FERMT2細胞的WST-A450與0 h的WST-A450的比值(A450/fold)明顯低于97H-wt-FERMT2細胞(P<0.05)，說明敲除FERMT2抑制HCC細胞的活力，見圖5。

5 敲除FERMT2使處于細胞周期S期的HCC細胞比例降低

流式細胞術結果顯示，與97H-wt-FERMT2細胞相比，97H-ko-FERMT2處于S期的細胞比例顯著降低(P<0.01)；以S期與G2/M期細胞比例之和反映細胞的增殖能力，結果發現,97H-ko-FERMT2細胞的活力明顯低于97H-ko-FERMT2細胞，差異有統計學意義(P<0.01)，見圖6。

Figure 5. Effect ofFERMT2 knockout on HCC cell viability. Mean±SD.n=3.*P<0.05vs97H-wt-FERMT2 group.

圖5敲除FERMT2基因對HCC細胞活力的影響

Figure 6. Effect ofFERMT2 knockout on cell-cycle distribution of HCC cells measured by flow cytometry. Mean±SD.n=3.**P<0.01vs97H-wt-FERMT2 group.

圖6敲除FERMT2基因對HCC細胞周期的影響

6 敲除FERMT2促進HCC細胞凋亡

流式細胞術結果顯示，與97H-wt-FERMT2細胞相比，97H-ko-FERMT2細胞的凋亡率明顯升高(P<0.05)，敲除FERMT2具有促進HCC細胞凋亡的作用，見圖7。

Figure 7. Effect ofFERMT2 knockout on the apoptosis of HCC cells measured by flow cytometry. Mean±SD.n=3.**P<0.01vs97H-wt-FERMT2 group.

圖7敲除FERMT2基因對HCC細胞凋亡的影響

7 敲除FERMT2對HCC細胞增殖、細胞周期及凋亡相關蛋白表達的影響

Western blot結果顯示，與97H-wt-FERMT2細胞相比，97H-ko-FERMT2細胞中增殖相關蛋白PCNA，細胞周期相關蛋白cyclin A1+A2、cyclin B1、cyclin E1、CDK2和p-CDK2及凋亡相關蛋白survivin和Bcl-2的表達均明顯減弱(P<0.01)，并且可檢測到裂解后的cleaved caspase-3，見圖8。

討 論

Kindlin家族已被證實能夠誘導整合素的活化，通過與整合素的相互作用不僅可調節機體的生理過程，還可調控腫瘤的發生發展[12-14]。目前研究發現，FERMT2在多種內胚層來源的組織器官發生惡性腫瘤時表達上調，如食管癌、胃癌、肺癌、乳腺癌和胰腺癌等[3-5, 8, 15]。肝細胞由內胚層細胞發育分化而來，本研究中IHC及real-time PCR結果均證實FERMT2在HCC中的表達要明顯高于癌旁肝組織，與前期研究結果一致。

在目前已研究的相關腫瘤中，FERMT2的主要功能為調控腫瘤細胞的生長和遷移，促進腫瘤的進展。FERMT2可與轉化生長因子β(transforming growth factor-β，TGF-β)和表皮生長因子受體(epidermal growth factor receptor，EGFR)等信號通路相互作用，調控腫瘤細胞的增殖[5-6]，還可通過調節細胞凋亡蛋白酶和Bcl-xL等的表達抑制腫瘤細胞的凋亡，進而影響腫瘤的發生及生長[9-10]。Ge等[11]已證實，FERMT2的表達水平可影響HCC患者的總生存期。本研究也發現，FERMT2高表達的HCC患者約70%在術后2年內復發，而術后2年未復發的7例患者，全部呈低水平表達。FERMT2自發現之時就被證實為一種有絲分裂原誘導基因[16]，能夠調控細胞從G0/G1期進入S期，隨后在多種腫瘤中也被發現其可促進腫瘤細胞的增殖并抑制腫瘤細胞的凋亡[5-6, 9-10]。那么，FERMT2是否也可通過調控HCC細胞的增殖和凋亡進而促進HCC的發生及進展？

Figure 8. Effect ofFERMT2 knockout on the expression of functional related protein in HCC cells. Mean±SD.n=3.**P<0.01vs97H-wt-FERMT2 group.

圖8敲除FERMT2基因對HCC細胞增殖、細胞周期及凋亡相關蛋白表達的影響

正常組織細胞生長和分裂周期的精密調控維持了細胞數量的動態平衡及組織正常的結構和功能。當腫瘤發生時，這些調控出現異常，惡性腫瘤細胞獲得了其最重要的一個特性持續增殖的能力[17]。本研究采用WST-1實驗及流式細胞術檢測評價HCC細胞的增殖能力。結果發現，敲除FERMT2基因后，MHCC97H細胞在體外的生長速度明顯減慢，標志細胞增殖的PCNA蛋白表達也明顯減弱；同時，敲除FERMT2基因后，處于S期及S+G2/M期的細胞比例明顯下降。結果提示FERMT2具有促HCC細胞增殖的作用。但這一作用是如何實現的？既往研究已證實，cyclin E與cyclin A均能夠與CDK2結合，調控細胞由G1期進入S期，啟動并促進DNA的復制，cyclin B1則能夠促進G2/M檢驗點時期的移位，起始細胞進行有絲分裂[18-19]。本實驗發現，敲除FERMT2基因后，MHCC97H細胞內cyclin A1+A2、cyclin E1以及CDK2(尤其是活化狀態的p-CDK2)表達均明顯減弱，cyclin B1的表達也明顯減弱。推測FERMT2可能通過調控細胞周期調節蛋白，加速細胞進入S期和/或M期，從而促進HCC細胞增殖。

抵抗凋亡是惡性腫瘤細胞的另一個重要生物學特性，其對腫瘤的發生發展及抗腫瘤治療過程都有著重要意義[17]。本實驗發現，敲除FERMT2基因后，MHCC97H細胞的凋亡比率明顯增加，抗凋亡蛋白Bcl-2和survivin的表達也明顯減弱。Bcl-2可結合并抑制凋亡啟動因子Bcl-2相關X蛋白(Bax)和Bcl-2同源拮抗劑(Bak)的功能，進而抑制線粒體細胞色素C等凋亡信號蛋白的釋放和下游caspase-3的活化[20-21]。Caspase-3又被稱為“死亡執行蛋白酶”，是多個凋亡途徑共同的下游效應分子，占據著凋亡過程的核心地位。Caspase-3本身不具有催化活性，必須先經顆粒酶B或caspase-10剪切后才被部分活化，并進行下一步的自我催化，此時細胞內可檢測出cleaved caspase-3的存在[22]。本實驗也發現，敲除FERMT2基因后，MHCC97H細胞中caspase-3前體減少，并出現了cleaved caspase-3片斷。Survivin不僅可通過直接結合抑制caspase-3，還可通過p21間接抑制caspase-3的活性，同時survivin可選擇性地表達于G2/M期，對抗G2/M期的凋亡誘導，因此HCC中survivin高表達不僅能抑制腫瘤細胞凋亡，還可促進細胞有絲分裂進而促進腫瘤細胞的異常增殖[23]。

本研究成功構建了FERMT2基因敲除穩定HCC細胞系，通過體外功能實驗結合臨床病理特征，初步證實了FERMT2通過調控細胞周期調節蛋白及抗凋亡蛋白的表達，調控肝癌細胞的增殖與凋亡，進而在肝癌形成及發展過程中發揮促癌作用，為后續深入探索HCC腫瘤發生和進展過程中FERMT2發揮的具體功能及參與的相關信號通路打下了基礎。

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FERMT2 expression in hepatocellular carcinoma and its effect on cell growth

LIN Jie1, CHEN Xiao-yan1, LI Jie-yu2, 3, WANG Li-ping1, CHEN Hui-yu1, LIN Wan-song2, 3

(1DepartmentofPathology,FujianProvincialHospital,ShengliClinicalMedicalCollegeofFujianMedicalUniversity,Fuzhou350001,China;2LaboratoryofImmuno-Oncology,FujianCancerHospital，AffiliatedCancerHospitalofFujianMedicalUniversity，3FujianProvincialKeyLaboratoryofTranslationalCancerMedicine,Fuzhou350014,China.E-mail:linwansong82@163.com)

AIM: To identify the expression of fermitin family homolog 2 (FERMT2) in hepatocellular carcinoma (HCC) tissues and the effect of FERMT2 on the cell growth and related protein expression.METHODSReal-time PCR and immunohistochemistry were used to detect FERMT2 expression in the HCC tissues. The technique of CRISPR/Cas9 was applied to construct stableFERMT2 knockout MHCC97H cell line. WST-1 assay and flow cytometry were used to measure the cell viability, cell-cycle distribution and cell apoptosis. Western blot was used to determine the expression of related proteins in the MHCC97H cells.RESULTSIn HCC tissues, the expression level of FERMT2 was higher than that in adjacent liver tissues (P<0.05). High expression of FERMT2 was significantly correlated with postoperative recurrence of tumor. Knockout ofFERMT2 gene evidently inhibited MHCC97H cell viability and accelerated cell apoptosis. Meanwhile, the expression levels of proliferating cell nuclear antigen, cyclins, cyclin-dependent kinases 2 and anti-apoptotic factors were significantly downregulated in MHCC97H cells withFERMT2 knockout (P<0.05).CONCLUSIONFERMT2 may function as a promoter of hepatocarcinogenesis and progression via regulating the cell viability, cell-cycle distribution and cell apoptosis, which is related with the expression of cell cycle regulators and anti-apoptotic factors．

Hepatocellular carcinoma; CRISPR/Cas9 technique; Fermitin family homolog 2; Cell proliferation; Cell cycle； Apoptosis

1000- 4718(2017)12- 2157- 08

2017- 07- 25

2017- 10- 19

福建省自然科學基金資助項目(No. 2016J01510)；福建省衛生計生委青年科研課題(No. 2017-1-2)

△通訊作者 Tel: 13805087511; E-mail: linwansong82@163.com

R363.2; R735.7

A

10.3969/j.issn.1000- 4718.2017.12.008

(責任編輯： 陳妙玲， 宋延君)