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氣相色譜—質譜法同步測定水產品中46種多環芳烴、有機氯農藥和鄰苯二甲酸酯

2018-01-04 13:05:57姜蓉
中國綠色畫報 2017年11期
關鍵詞:氣相色譜

姜蓉

[摘要]:本研究運用快速樣品處理技術QuEChERS方法分別對泥鰍、鯽魚和海帶三種水產品中多環芳烴(PAHs)、有機氯農藥(OCPs)、鄰苯二甲酸酯類(PAEs)進行了提取和凈化,并且用氣相色譜-質譜進行定量分析,線性范圍是5~1000ng/mL,加標回收率為69.7%~105.5%之間,相對標準偏差在2.5%~9.8%之間。

[關鍵詞]:分散固相萃??;氣相色譜-質譜法;水產品;多環芳烴;有機氯農藥;鄰苯二甲酸酯類

[引言]:半揮發性污染物如多環芳烴(PAHs)、有機氯農藥(OCPs)、鄰苯二甲酸酯(PAEs)等,其中大部分化合物具有高毒性,難降解性并且能夠長距離遷移的特點[1, 2],并且能夠在生物體內富集[3, 4]。由于生物樣品基質較為復雜,所含脂肪、色素等雜質干擾分析結果,因此建立一種可靠且有效的樣品前處理和分析方法十分必要。

傳統方法在索氏提取或液液萃取基礎上進行皂化和磺化去除脂肪[5],會消耗大量有機溶劑并且造成目標檢測污染物的較大損失。凝膠滲透色譜法和固相萃取連用能夠有效地去除脂肪酸[6],但是成本較高且耗時較長。一種用于農產品檢測的快速樣品處理技術(QuEChERS)近幾年在生物樣品分析中得到廣泛應用,其回收率高,測定結果準確,耗時少,成本較低[7]。因此本研究使用QuEChERS方法與GC-MS對水產品中的多環芳烴、有機氯農藥、鄰苯二甲酸酯類進行檢測。

1、實驗部分

1.1 儀器與試劑

氣相色譜-質譜聯用儀(Agilent 6890N GC/5975B MSD,美國);勻漿機(萊浦儀器LP-35P,中國);渦旋振蕩器(Vortex-Genie 2,美國);高速離心機(江東儀器H-1650,中國)。

多環芳烴、有機氯農藥、鄰苯二甲酸酯類標樣均購于百靈威(美國);二氯甲烷、乙腈溶劑均為色譜純;Z-Sep分散固相萃取劑購于Supelco(美國);測試所用泥鰍樣品來自上海某河道,鯽魚和海帶均購買自市場。

1.2實驗方法

1.2.1 QuEChERS方法步驟

本研究參考Baduel et al. [8] 等人的實驗方法,即取1g水產品干樣,加入10mL乙腈,渦旋30s后勻漿,在4℃,3500rpm轉速下離心10min,取5mL上清液。上清液在-20℃下冷凍4h后取1mL,加入50mg的Z-Sep分散固相萃取劑渦旋1min,手搖1min后在轉速為10000rpm下離心10min,取上清液過0.2μm的聚四氟乙烯濾膜并轉移至進樣瓶中。

1.2.2 GC-MS分析條件

GC分析條件:色譜柱為J & W DB-5MS毛細管柱(30 m×0.25 mm i.d. ,0.25μm);使用高純氦氣為載氣;載氣流速為1.0 ml/min;進樣口溫度為300℃;進樣量1μL,恒流模式,不分流進樣。色譜柱升溫條件:初始溫度40℃,然后以10℃/min的速度升至300℃,保持5分鐘。MS分析條件:質譜傳輸線溫度為280 ℃;離子源溫度為230℃;四級桿溫度為150℃;EI模式;發射電子能量為70 eV;SCAN(全掃描)模式下進行定性分析,定量分析使用SIM模式(選擇離子模式)。

2、 結果與討論

2.1標準曲線和線性范圍

將PAHs,PAEs,OCPs的混合標準溶液分別配制成5, 10, 50, 100, 250, 500 ng/mL的標準工作溶液,按選定的色譜、質譜條件進行分析,其線性關系良好,R?在0.9981-0.9996之間,儀器檢出限在0.1~5ng/mL之間。

2.2回收率和精密度的測定

取干燥研磨過的生物樣品1 g,加入100 ng PAHs, OCPs, PAEs的標準溶液,冷凍1天后取出,讓目標物充分滲透至樣品中,用QuEChERS對樣品進行提取,凈化,用GC-MS檢測,設置5個平行樣品。各個化合物的平均回收率和精密度如表1所示。46種化合物的極性范圍較廣,log Kow為3.37-8.71之間,且回收率達到69.7%-105.5%,證明該方法適用于極性較小和極性較大的化合物檢測。

2.3樣品檢測

稱取1 g左右已制備好的海帶、鯽魚和泥鰍樣品,按選定的實驗方法進行提取、凈化、濃縮并結合GC-MS進行定量分析。結果見表2,共有16種化合物被檢出,其中包括8種多環芳烴、4種有機氯農藥和4種鄰苯二甲酸酯。這些半揮發性污染物在海帶中的濃度較低,在泥鰍樣品中含量最高。

[參考文獻]:

[1]Cai, Q.-Y., et al., The status of soil contamination by semivolatile organic chemicals (SVOCs) in China: A review[J]. Science of The Total Environment, 2008. 389(2): 209-224.

[2]Katsoyiannis, A. and C. Samara, Persistent organic pollutants (POPs) in the sewage treatment plant of Thessaloniki, northern Greece: occurrence and removal[J]. Water Research, 2004. 38(11): 2685-2698.

[3]Gobas, F.A.P.C., B.C. Kelly, and J.A. Arnot, Quantitative structure activity relationships for predicting the bioaccumulation of POPs in terrestrial food-webs[J]. Qsar & Combinatorial Science, 2003. 22(3): 329-336.

[4]Fisk, A.T., K.A. Hobson, and R.J. Norstrom, Influence of chemical and biological factors on trophic transfer of persistent organic pollutants in the northwater polynya marine food web (vol 35, pg 732, 2001)[J]. Environmental Science & Technology, 2001. 35(8): p. 1700-1700.

[5]鄭光明,朱新平, 尹., 分散固相萃取/氣相色譜-質譜聯用法快速測定魚、蝦中的 16 種多環芳烴[J]. 分析測試學報, 2011. 30(10): 1107-1112.

[6]杜娟,呂冰,朱盼, 凝膠滲透色譜-固相萃取聯合凈化氣相色譜-質譜聯用法測定動物性食品中30種有機氯農藥的殘留量[J]. 色譜, 2013. 31(8): 739-746.

[7]Lehotay, S.J., et al., Comparison of QuEChERS sample preparation methods for the analysis of pesticide residues in fruits and vegetables[J]. Journal of Chromatography A, 2010. 1217(16): 2548-2560.

[8]Baduel, C., et al., Development of sample extraction and clean-up strategies for target and non-target analysis of environmental contaminants in biological matrices. J Chromatogr A, 2015. 1426: 33-47.endprint

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