李國濤,臧珂,殷榮坤
經動脈化療栓塞術(transcatheter arterial chemoembolization,TACE)是公認的治療不能手術切除的中晚期PLC患者的首選方法之一[1],但由于血供豐富,TACE術通常不能使肝癌病灶完全壞死。隨著三維適形放療(three-dimensionalconformal radiation therapy,3D-CRT)技術的發展,放療在PLC治療中的應用日益增多。多項研究表明[2-4],TACE聯合3D-CRT治療能延長患者生存期。但是,TACE與放療聯合治療毒副反應相應增加,損傷了患者的免疫功能,進而影響患者的生存質量[5]。1986年,德國學者Schmidt-Wolf采用多種細胞因子誘導外周血單個核細胞,分離出細胞因子誘導的殺傷細胞(cytokine-induced killer,CIK),并應用于腫瘤患者的治療。CIK是以CD3+CD56+T細胞為主要效應細胞的一組異質性細胞群,具有自然殺傷細胞的非主要組織相容性復合體(major histocompatibility complex,MHC)限制性的抗腫瘤特性和 T淋巴細胞強大的抑瘤活性,能以非特異性免疫的方式根除患者體內微小的殘余腫瘤病灶,重建患者的免疫功能[6,7]。本研究采用TACE聯合放療治療PLC患者,再回輸CIK細胞治療,以探討其療效情況。
1.1 研究對象 2014年1月~2016年1月我院就診的經影像學或病理學檢查證實的原發性肝癌患者51例,男40例,女11例;年齡35~75歲,平均年齡(58.3±3.5)歲。其中經超聲引導下穿刺活檢病理學檢查診斷為肝細胞癌(HCC)30例。入組患者肝內腫塊直徑為3~10 cm,無黃疸、腹水或遠處轉移,經綜合評價無手術切除指征,預計生存時間大于半年,心電圖及肝腎功能檢查指標基本正常,無放療或TACE治療禁忌證,KPS評分≥70分。患者及其家屬簽署知情同意書,本研究方案經醫院醫學倫理委員會批準同意。采用隨機數字表法將患者分為治療組26例和對照組25例,分別給予三維適形放療聯合TACE治療,然后給予CIK細胞回輸治療或僅行三維適形放療聯合TACE治療。兩組性別、年齡、KPS評分、腫瘤分級、腫瘤數目等一般資料經統計學比較,無顯著性差異(P>0.05,表1),具有可比性。
1.2 TACE治療方法 先行肝動脈造影,以了解腫瘤的具體位置和大小等情況,并明確腫瘤的供血動脈。注入5-氟尿嘧啶 500~750 mg,卡鉑200~300 mg,絲裂霉素20 mg,并應用碘化油栓塞腫瘤血管。對合并有動靜脈瘺患者先行瘺口栓塞,再行碘油栓塞。每隔1月進行一次TACE術,每例共2次。
1.3 三維適形放療 應用電子直線加速器和立體定向放射治療計劃系統進行放療。先行模擬定位,行CT增強掃描,層厚5 mm,范圍為自病灶上下各8~10 cm,將CT圖像傳輸至三維治療計劃系統。大體腫瘤體積(gross tumor volume,GTV)包括原發性病灶。臨床靶體積(clinical target volume,CTV)為在GTV的基礎上向四周外擴1.0 cm。計劃靶體積(planning target volume,PTV)為在CTV的基礎上向上下外擴2 cm,向左右外擴1.5 cm。常規分割(2 Gy,5 次 /w),中位放療劑量為 50 Gy(42~76 Gy)。
表1 兩組一般資料[n(%)/(±s)]比較

表1 兩組一般資料[n(%)/(±s)]比較
治療組(n=26)對照組(n=25) x2/t P值性別 0.899 0.343男19(73.1) 21(84.0)女7(26.9) 4(16.0)年齡(歲) 57.6±2.9 59.9±4.3 17.433 0.154 KPS評分 0.692 0.708 70 3 2 80 6 4≥90 17 19 HbsAg陽性 24(96.0) 22(88.0) 0.267 0.605 AFP(μg/L) 528.6±146.8 511.4±146.3 14.232 0.098 Child-Pugh分級 1.199 0.274 A 級 22(84.6) 18(72.0)B 級 4(15.4) 7(28.0)腫瘤數目 0.339 0.560單發 19(73.1) 20(80.0)多發 7(26.9) 5(20.0)
1.4 CIK細胞培養與回輸方法 參照參考文獻[8,9]的方法培養CIK細胞。在TACE術和放療前,使用CS-3000血細胞分離機采集治療組患者外周血80 ml,用淋巴細胞分離液(上海試劑二廠)分離純化單個核細胞(PBMC),用AIMV無血清培養基(美國Sigma公司)調整細胞數為4×106/mL,置于37℃,5%CO2培養箱培養2 h。收集非貼壁細胞,移至新的培養瓶,計數并用RPMI-1640培養液調細胞數為1×106/mL。第1 d,加入重組人γ干擾素(rh-IFN-γ,R&D公司)1000 U/mL,置于37℃ 3000 ml培養袋(美國Invitrgen公司),在5%CO2條件下懸浮培養。24 h后,加入重組人白細胞介素2(rh-IL-2,R&D公司)1000 U/mL和抗CD3單克隆抗體(美國BD公司)100 ng/mL繼續培養48 h。每隔3 d,等量換液,并加入rh-IL-2繼續培養至21 d。在第21 d時,取細胞懸液1 ml,使用EPICSXL流式細胞儀(美國貝克曼庫爾特公司)檢測CD3+CD56+和CD3+CD8+細胞(美國BD公司)比例。當CD3+CD56+細胞數≥50%,CD3+CD8+細胞≥30%,且細胞懸液細菌、真菌和內毒素檢測均為陰性時,將CIK細胞(5×109)用生理鹽水洗滌3次,并加入含1%人血白蛋白的生理鹽水250 ml中,經外周靜脈回輸,1次/d,連續5 d。
1.5 檢測與療效判定 使用EPICSXL流式細胞儀檢測外周血 T 細胞亞群(CD3+,CD4+,CD8+,CD4+/CD8+比值)和NK細胞(CD16+CD56+)。按照Response E-valuation Criteria Solid Tumors(RECIST)標準[10]評定近期療效,分為完全緩解(complete remission,CR):全部病灶消失,維持4周以上;部分緩解(partial remission,PR):腫瘤縮小至少30%,維持4周以上;穩定(stable disease,SD):介于 PR 和進展(progression,PD)之間;PD:病灶增加超過20%或出現新病灶。客觀有效率(RR)=CR+PR。依據Karnofsky評分變化評價患者的生活質量(QOL):治療后KPS增加≥10分為QOL改善,治療后KPS變化<10分為QOL穩定,治療后KPS減少≥10分為QOL降低。總生存期(overall survival,OS)的計算為自治療結束至患者死亡或末次隨訪日止。
1.6 統計學分析 計數資料以率表示,采用x2檢驗;計量資料以±s表示,采用配對t檢驗,應用SPSS 18.0軟件進行統計學處理,以P<0.05為差異有統計學意義。
2.1 兩組外周血T淋巴細胞亞群和NK細胞變化比較 在接受CIK細胞治療后1月,治療組患者外周血CD3+、CD4+和CD16+CD56+占外周血單個核細胞百分比水平和CD4+/CD8+比值顯著高于,而CD8+顯著低于對照組(P<0.05,表2)。
2.2 生活質量改變情況 在治療結束后,治療組生活質量評分改善率顯著高于對照組(P<0.05,表3)。
2.3 兩組近期療效比較 治療組患者在接受放療/TACE/CIK聯合治療后肝臟腫瘤病灶明顯縮小(圖1、圖2)。在治療結束3個月,治療組客觀有效率明顯高于對照組(P<0.05,表4)。
2.4 生存率比較 隨訪至2017年1月,治療組1 a生存率為73.1%(19/26),顯著高于對照組的52.1%(13/25,P<0.05)。
表2 兩組外周血T細胞亞群和NK細胞比率(±s)比較

表2 兩組外周血T細胞亞群和NK細胞比率(±s)比較
與對照組比,①P<0.05
例數CD3+(%)觀察組 治療前 26 51.25±1.14治療后 66.47±1.25①對照組 治療前 25 52.33±2.21治療后 53.17±0.98 CD4+(%)44.08±1.25 56.98±2.65①45.04±1.64 48.09±0.27 CD8+(%)43.17±1.47 37.56±1.26①43.20±2.19 42.67±4.35 CD4+/CD8+比值1.02±0.85 1.52±2.10①1.04±0.75 1.13±0.06 CD16+CD56+(%)16.18±1.23 22.45±6.41①17.26±4.54 19.74±1.88

表3 兩組治療后生活質量變化情況(%)比較

表4 兩組近期療效(%)比較

圖1 肝癌患者腹部CT表現 65歲男性PLC患者在接受放療和TACE治療后,CT顯示肝右葉腫瘤病灶碘油浸潤良好

圖2 肝癌患者腹部CT表現 圖1患者在接受CIK治療后,CT顯示肝右葉病灶明顯縮小
近年來,隨著對免疫治療方法的不斷研究發現,過繼免疫已逐漸成為腫瘤的生物治療研究重點[11-14]。在繼淋巴因子激活的殺傷細胞(LAK)、腫瘤浸潤性淋巴細胞(TIL)和CD3單克隆抗體激活的殺傷細胞(CD3AK)之后,CIK細胞以較高的增殖活性、更強的殺瘤活性和對骨髓或造血細胞無明顯毒副作用等優點,成為目前腫瘤過繼免疫治療的研究熱點[15,16]。CIK細胞是CD3+CD8+CTL和CD3+/CD56+為主的細胞群,具有T淋巴細胞強大的殺瘤活性和NK細胞的非MHC限制性殺瘤活性,因此又被稱為NK細胞樣T 淋巴細胞[17-19]。
有研究[18]將85例已行TACE聯合射頻消融術治療,經影像學檢查顯示病灶無活性且無遠處轉移的PLC患者隨機選擇45例為研究組,接受CIK細胞經肝動脈回輸治療,其余40例為對照組不進行CIK細胞回輸治療。結果CIK細胞回輸后外周血CD3+、CD4+、CD56+(NK)效應細胞百分比和CD4+/CD8+比值顯著上升,CD8+和CD3+CD56+效應細胞百分比下降,研究組1年和18個月腫瘤復發率分別為8.9%和15.6%,而對照組為30.0%和40.0%(P<0.05)。本研究觀察組患者T細胞亞群和NK細胞均得到改善,與上述研究結論一致。有人將146例無手術指征的PLC患者分為TACE聯合CIK組72例和單純TACE組74例,結果聯合組1 a和 a無進展生存率分別為40.4%和25.3%,顯著高于單純TACE組的7.7%和2.6%。兩組中位生存期分別為31個月(95%CI為27~35個月)和10個月(95%CI為7~13個月)。本研究治療組患者1 a生存率為73.1%,高于郝明志的研究結果,考慮可能與本研究采用了TACE聯合放療治療進一步提高了療效。
[1]Shrimal A,Prasanth M,Kulkarni AV.Interventional radiological treatment of hepatocellular carcinoma:an update.Indian J Surg,2012,74(1):91-99.
[2]Stegmann KA,et al.Interferon α-stimulated natural killer cells from patients with acute hepatitis C virus(HCV) infection recognize HCV-infected and uninfected hepatoma cells via DNAX accessory molecule-1.J Infect Dis,2012,205(9):1351-1362.
[3]張立潔,彭泉,蘆東徽,等.三維適形放療聯合 TACE治療肝癌并發門靜脈癌栓療效的 Meta分析.實用肝臟病雜志,2015,18(3):245-257.
[4]周藹斌,周俊平,蘆東徽,等.經導管肝動脈化療栓塞術聯合三維適形放療治療巨大原發性肝癌療效分析.實用肝臟病雜志,2017,20(2):195-198.
[5]Golfieri R,Cappelli A,Cucchetti A. Efficacy of selective transarterial chemoembolization in inducing tumor necrosis in small (< 5cm)hepatocellular carcinomas.Hepatology,2011,53(5):1580-1589.
[6]Zhang S,Kodys K,Babcock GJ,et al.CD81/CD9 tetraspanins aid plasmacytoid dendritic cells in recognition of hepatitis C virus-infected cells and induction of interferon-alpha.Hepatology,2013,58(3):940-949.
[7]Serti E,Werner JM,Chattergoon M,et al.Monocytes activate natural killer cells via inflammasome-induced interleukin 18 in response to hepatitis C virus replication.Gastroenterology,2014,147(1):209-220.
[8]Meng Q,Rani MR,Sugalski JM,et al.Natural cytotoxicity receptor-dependent natural killer cytolytic activity directed at hepatitis C virus(HCV) is associated with liver inflammation,African American race,IL28B genotype,and response to pegylated interferon/ribavirin therapy in chronic HCV infection.J Infect Dis,2014,209(10):1591-601.
[9]GonzálezMA,M?rten A,Hoffmann P,etal.Patient-derived dendritic cells transduced with an a-fetoprotein-encoding adenovirus and co-cultured with autologous cytokine-induced lymphocytes induce a specific and strong immune response against hepatocellular carcinoma cells.Liver Int,2006,26(3):369-379.
[10]El Sobky SA,El-Ekiaby NM,Mekky RY,et al.Contradicting roles of miR-182 in both NK cells and their host target hepatocytes in HCV.Immunol Lett,2016,169:52-60.
[11]劉成新,鞏貫忠,尹勇.原發性肝癌精確放療技術的臨床應用進展. 中華放射腫瘤學雜志,2014,23(5):440-443.
[12]Keane FK,Wo JY,Zhu AX,et al.Liver-directed radiotherapy for hepatocellular carcinoma.Liver Cancer,2016,5(3):198-209.
[13]Tsai CL,Hsu FM,Cheng JC.How to improve therapeutic ratio in radiotherapy of HCC.Liver Cancer,2016,5(3):210-220.
[14]Todorovic M,Mesiano G,Gammaitoni L,et al.Ex vivo allogeneic stimulation significantly improves expansion of cytokine-induced killer cells without increasing their alloreactivity across HLA barriers.J Immunother,2012,35(7):579-586.
[15]Feng M,Ben-Josef E.Ratiation therapy for hepatocellular carcinoma.Semin Radiat Oncol,2011,21(4):271-277.
[16]Rutella S,Iudicone P,Bonanno G,et al.Adoptive immunotherapy with cytokine-induced killer cells generated with a new good manufacturing practice-grade protocol.Cytotherapy,2012,14(7):841-850.
[17]Peng H,Yao M,Fan H,et al.Effects of autologous cytokine-induced killer cells infusion in colorectalcancer patients:a prospective study.CancerBiother Radiopharm,2017,32(6):221-226.
[18]Introna M,Lussana F,Algarotti A,et al.Phase II study of sequential infusion of donor lymphocyte infusion and cytokine-induced killer cells for patients relapsed after allogeneic hematopoietic stem celltransplantation.BiolBlood Marrow Transplant,2017,S1083-8791(17):30574-30578.
[19]Introna M.CIK as therapeutic agents against tumors.J Autoimmun,2017,S0896-8411(17):30413-30414.