袁久剛, 申 璇, 張慶娟, 余圓圓, 王 平, 王 強(qiáng), 范雪榮
(1.江南大學(xué) 生態(tài)紡織教育部重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,江蘇 無錫 214122;2.山東如意集團(tuán),山東 濟(jì)寧 272000)
脂肪酶能在油水界面上催化酯水解、酯交換以及酯合成等反應(yīng),廣泛應(yīng)用于食品、醫(yī)藥、紡織以及日化等工業(yè)中[1-2]。然而受脂肪酶蛋白天然性質(zhì)的局限,這種催化劑在很多情況下不能滿足催化反應(yīng)的要求;另外,昂貴的價(jià)格、較低的回收利用性和催化穩(wěn)定性又使其在工業(yè)上的應(yīng)用受到極大限制。
固定化是脂肪酶改性常用的方法之一,通過固定化修飾,脂肪酶分子穩(wěn)定性得到大幅度提高,而且固定化脂肪酶極易與反應(yīng)物和產(chǎn)物分離,這使得反應(yīng)過程的可控性以及酶的重復(fù)利用性都得到提高,有助于降低成本[3-4]。目前,固定化常用的載體主要有吸附用的多孔性載體如大孔樹脂[5]、有機(jī)硅藻土[6],包埋采用的海藻膠、卡拉膠等[7],此外還有共價(jià)交聯(lián)采用的各種有機(jī)大分子載體如多糖類物質(zhì)等[8]。
這些載體及其固定化方法各有優(yōu)點(diǎn),但是大部分固定化脂肪酶都是采用水不溶性載體,這導(dǎo)致催化反應(yīng)過程中底物與酶的接觸以及產(chǎn)物的擴(kuò)散都被限制,而對(duì)于可溶性大分子底物以及一些高分子聚合物的催化反應(yīng),如動(dòng)物纖維脫脂,紡織品去污、廢棄滌綸的降解等,這種不溶性載體就會(huì)大大限制脂肪酶的催化效率。因此,若能尋找一種智能型的固定化載體,使其在催化反應(yīng)時(shí)處于溶解狀態(tài),而在反應(yīng)結(jié)束時(shí)又可以通過改變某種條件使其不溶,便可以很好地解決這一問題。
Eudragit S-100便是這樣一種智能型的可溶可逆高分子聚合物。它主要由甲基丙烯酸和甲基丙烯酸甲酯共聚而成,其突出的優(yōu)點(diǎn)是溶解性可通過改變pH調(diào)節(jié),在pH值高于5.5時(shí)溶解,pH值低于4.5時(shí)沉淀[9-10]。這種溶解-沉淀可逆特性使其在應(yīng)用于生物酶固定化時(shí)可表現(xiàn)出獨(dú)特的優(yōu)勢(shì),即:固定化改性酶可在溶解狀態(tài)下催化不溶性底物反應(yīng),而反應(yīng)結(jié)束后,固定化酶又可以轉(zhuǎn)變?yōu)椴蝗軤顟B(tài)進(jìn)行回收。而且,EudragitS-100還具有無毒、相對(duì)價(jià)廉、與酶親和性等優(yōu)點(diǎn)。因此,將其作為酶的固定化材料具有得天獨(dú)厚的優(yōu)勢(shì)。
以Eudragit系列樹脂為載體來制備固定化酶,可以通過吸附、包埋和共價(jià)結(jié)合的方法對(duì)酶進(jìn)行固定化。本文作者試圖利用共價(jià)結(jié)合的方法采用該樹脂對(duì)脂肪酶進(jìn)行固定化修飾。該研究有益于改善傳統(tǒng)固定化脂肪酶存在的異相催化效率低以及回收困難的特點(diǎn)。
豬胰脂肪酶 (100-500 units/mg protein(using olive oil (30 min incubation),Sigma 公 司 產(chǎn) 品 ;Eudragit S-100,阿拉丁試劑有限公司產(chǎn)品;EDC,阿拉丁試劑有限公司產(chǎn)品;其他化學(xué)試劑均購(gòu)自國(guó)藥集團(tuán)化學(xué)試劑有限公司,分析純級(jí)別。
Rapid恒溫振蕩水浴鍋,廈門瑞比公司產(chǎn)品;UV-1800紫外可見分光光度儀,日本島津企業(yè)管理(中國(guó))有限公司產(chǎn)品;F-4600熒光分光光度儀,日本Hitachi產(chǎn)品;FA25高速攪拌器,上海弗魯克流體機(jī)械制造有限公司產(chǎn)品。
1.2.1蛋白質(zhì)含量的測(cè)定根據(jù)文獻(xiàn)[11],采用考馬斯亮藍(lán)G-250(Bradford法)測(cè)定蛋白質(zhì)含量。
1.2.2脂肪酶酶活測(cè)定按照江慧芳等人[12]的研究方法,以橄欖油聚乙烯醇乳化液作為底物,采用銅皂法進(jìn)行測(cè)定,其相對(duì)酶活定義為:

式(1)中,ER為相對(duì)酶活,E 為所測(cè)酶活值,Em為該組所測(cè)最大酶活值。
1.2.3Eudragit溶液配制將5 g Eudragit S-100粉末加入到70 mL蒸餾水中,用3 mol/L NaOH溶液調(diào)pH 11,完全溶解后,用3 mol/L HCl溶液調(diào)pH 7.2,然后加蒸餾水定容至100 mL,得到5 g/dL的Eudragit S-100溶液。
1.2.4脂肪酶的固定化取一定量配制好的Eudragit S-100溶液,用pH 7.2的磷酸鹽緩沖液將其稀釋到 2%(W/V),加入 EDC(0.2 g/dL),在 30 ℃下磁力攪拌1 h,使Eudragit S-100分子上的羧基充分活化,然后向溶液中逐滴加入酶液,于恒溫振蕩器反應(yīng) 6 h(200 r/min),反應(yīng)結(jié)束后,用 0.5 mol/L 乙醇銨溶液滴定至pH=8,終止固定化修飾。最后用pH 7的Tris-鹽酸緩沖液(0.1 mol/L)定容至50 mL,得到溶解狀態(tài)下的Eudragit S-100共價(jià)修飾脂肪酶,于4℃下儲(chǔ)存?zhèn)溆谩?/p>
1.2.5平均氨基修飾率測(cè)定采用TNBS分光光度法進(jìn)行測(cè)試[13]。取2份各1 mL TNBS溶液,分別加入1.5 mL未修飾酶和固定化酶溶液,在室溫條件下靜置30 min,然后測(cè)定溶液在420 nm條件下的吸光度值。平均氨基修飾率按以下公式(2)計(jì)算:

式(2)中,X為平均氨基修飾率,A為修飾后蛋白質(zhì)溶液的吸光度值,A0為修飾前蛋白質(zhì)溶液的吸光度值。
1.2.6熒光光譜檢測(cè)采用F-4600熒光分光光度計(jì),設(shè)定激發(fā)波長(zhǎng)為280 nm,狹縫寬度為5 nm,掃描速度為12 000 nm/min,電壓400 V,響應(yīng)時(shí)間為0.1 s。測(cè)定脂肪酶在280~550 nm內(nèi)的發(fā)射光譜。
1.2.7修飾酶可逆可溶性測(cè)試修飾劑Eudragit S-100和其固定化修飾酶的溶解性會(huì)隨著溶液pH的改變而發(fā)生變化,具有可逆可溶性。參照Dourado等人[14]的方法,以溶液在470 nm下的吸光度值來表征修飾劑和修飾酶的溶解性。以溶質(zhì)完全不溶解時(shí)溶液的吸光度值為100%,溶質(zhì)完全溶解時(shí)溶液的吸光度值為0%。
1.2.8重復(fù)使用性能取一定量的修飾酶,邊攪拌邊滴加醋酸溶液,調(diào)節(jié)溶液的pH至4.0,靜置30 min后離心,保留沉淀,沉淀用pH為4.0的緩沖溶液沖洗3次,洗滌后的沉淀溶解于pH為7.5的緩沖溶液,并定容至初始體積,然后測(cè)試該酶液的活力。重復(fù)該操作5次,視為重復(fù)使用修飾酶5次,以酶液的初始酶活為100%,計(jì)算每次使用時(shí)修飾酶的相對(duì)酶活。
蛋白質(zhì)中的游離氨基可以與還原糖的醛基末端發(fā)生羰胺縮合反應(yīng),從而使游離態(tài)的氨基成為結(jié)合態(tài),因此,采用TNBS法可以測(cè)得脂肪酶經(jīng)過Eudragit S-100固定化修飾后的平均氨基修飾率。對(duì)不同固定化時(shí)間下的修飾脂肪酶進(jìn)行TNBS分光光度法測(cè)定,結(jié)果如圖1所示。

圖1 不同反應(yīng)時(shí)間對(duì)氨基修飾率的影響(反應(yīng)溫度15℃)Fig.1 Effect of reaction time on modification rate of free amino(reaction temperature 15 ℃)
從圖1可以明顯看出,脂肪酶中的氨基確實(shí)與Eudragit S-100樹脂中的羧基進(jìn)行了反應(yīng),實(shí)現(xiàn)了在Eudragit S-100上的固定化。另外,從圖中也可以看出:當(dāng)時(shí)間較短時(shí),Eudragit S-100不能對(duì)豬胰脂肪酶進(jìn)行有效的固定化修飾,因此其氨基修飾率較低。隨著固定化時(shí)間的延長(zhǎng),脂肪酶的平均氨基修飾率也逐漸提升,當(dāng)反應(yīng)進(jìn)行6 h后,Eudragit S-100固定化脂肪酶的平均氨基修飾率達(dá)到52.4%,再延長(zhǎng)反應(yīng)時(shí)間,其氨基修飾率并未有較大幅度提升。這主要是由于蛋白質(zhì)的空間位阻以及Eudragit S-100本身含有的活化羧基數(shù)目有限,使得脂肪酶中能夠參與修飾的游離氨基已經(jīng)全部參與反應(yīng),因此,其平均氨基修飾率不再發(fā)生變化。
在天然蛋白質(zhì)分子結(jié)構(gòu)中,酪氨酸(Tyr)、色氨酸(Trp)和苯丙氨酸(Phe)在280 nm的激發(fā)波長(zhǎng)下會(huì)發(fā)射熒光,而固定化修飾劑Eudragit S-100則沒有熒光特性,因此根據(jù)溶液的熒光光譜特征,可以分析蛋白結(jié)構(gòu)的變化[15]。對(duì)不同時(shí)間固定化修飾后的脂肪酶進(jìn)行熒光光譜檢測(cè),結(jié)果如圖2所示。
從圖2中可以看出,在280 nm的激發(fā)波長(zhǎng)下,原酶的最大發(fā)射波長(zhǎng)為343 nm,一般認(rèn)為該內(nèi)源熒光來源于色氨酸殘基。經(jīng)過固定化的脂肪酶則在345~346 nm處有熒光吸收,其強(qiáng)度也發(fā)生了變化,通常認(rèn)為這是由于固定化修飾導(dǎo)致脂肪酶構(gòu)象發(fā)生變化所致。熒光發(fā)射光譜紅移,說明原來位于酶分子內(nèi)部的色氨酸殘基向酶分子表面發(fā)生了遷移[16];而峰強(qiáng)度呈現(xiàn)先增大后下降的趨勢(shì),說明在修飾過程中,隨著反應(yīng)時(shí)間的延長(zhǎng),脂肪酶的蛋白結(jié)構(gòu)由α-螺旋向β-折疊轉(zhuǎn)變,最初蛋白結(jié)構(gòu)被拉伸、展開,使得色氨酸殘基暴露數(shù)量先增加,峰強(qiáng)度變大,而后隨著正確折疊,蛋白質(zhì)分子結(jié)構(gòu)變得緊湊,氨基酸暴露數(shù)量也減少,最終導(dǎo)致熒光強(qiáng)度降低[17]。但是,折疊程度過大不利于脂肪酶酶活的表達(dá),因此,結(jié)合圖1中的氨基修飾率可以看出,固定化修飾時(shí)間不易過長(zhǎng)。

圖2 不同反應(yīng)時(shí)間下原酶與固定化脂肪酶的熒光光譜Fig.2 Fluorescence spectra of native lipase and immobilized lipase after different reaction time
溫度對(duì)酶的催化反應(yīng)影響極大,只有在最適溫度下,酶的催化活力才能得到最大程度的發(fā)揮。對(duì)不同溫度下游離脂肪酶和固定化修飾脂肪酶的酶活力進(jìn)行測(cè)定,結(jié)果如圖3所示。

圖3 固定化修飾對(duì)脂肪酶最適溫度的影響Fig.3 Effectofimmobilization on the optimum temperature of lipase
從圖3可以發(fā)現(xiàn),Eudragit S-100固定化修飾前后脂肪酶的最適溫度均為40℃左右,固定化修飾對(duì)脂肪酶的最適溫度并沒有造成很大影響。但是從實(shí)際的絕對(duì)酶活力也可以看出,除了降低脂肪酶在最適溫度條件下的酶活外,固定化脂肪酶在其它溫度條件下都較游離脂肪酶有更高的絕對(duì)酶活力,尤其是在較低反應(yīng)溫度條件下,固定化修飾后的脂肪酶比游離脂肪酶有更高的水解活力。造成這種現(xiàn)象的原因可能是:固定化修飾后,脂肪酶與Eudragit S-100載體進(jìn)行了多點(diǎn)共價(jià)連接,可以有效防止酶分子伸展變形,提高了脂肪酶對(duì)外界溫度變化的適應(yīng)性。
對(duì)不同pH下游離脂肪酶和Eudragit S-100固定化脂肪酶的酶活分別進(jìn)行測(cè)試,結(jié)果如圖4所示。

圖4 固定化修飾對(duì)脂肪酶最適pH的影響Fig.4 Effect of immobilization on the optimum pH of lipase
從圖4可以發(fā)現(xiàn),無論是游離脂肪酶還是固定化脂肪酶,隨著pH的逐漸增加,酶活均呈現(xiàn)先增大后降低的趨勢(shì)。在酸性條件下游離脂肪酶的酶活較低,而在堿性條件下酶活迅速增大并在pH為7.5~8.0時(shí)酶活達(dá)到最大值,這與豬胰脂肪酶的堿性水解特性非常相符。固定化后脂肪酶的最適反應(yīng)pH也在7.5~8.0之間,相比于游離脂肪酶,其最適pH值向堿性方向略有移動(dòng),這主要是由于Eudragit S-100樹脂本身為陰離子性物質(zhì),因此與其結(jié)合后,脂肪酶的微環(huán)境發(fā)生了變化,導(dǎo)致其最適pH值發(fā)生了變化[18-19]。
Eudragit S-100本身具有pH響應(yīng)的可逆可溶性,但是當(dāng)Eudragit作為載體與脂肪酶共價(jià)連接后,形成的固定化修飾酶能否保留Eudragit的可逆可溶性,其響應(yīng)pH范圍會(huì)否發(fā)生改變,對(duì)于脂肪酶的催化以及回收都有重要影響。本文參照Yu Yuanyuan等人[20]的方法對(duì)Eudragit S-100固定化脂肪酶的可逆可溶性進(jìn)行了研究,結(jié)果如圖5所示。

圖5 固定化脂肪酶的可溶可逆性Fig.5 Reversible solubility of immobilized lipase
從圖5中可以看出,當(dāng)溶液pH大于5.5時(shí),Eudragit S-100和固定化修飾酶溶液在470 nm處的吸光度均為0%,說明此時(shí)修飾劑與固定化脂肪酶均能完全溶解;而當(dāng)溶液pH低于4時(shí),所有溶液的吸光度值達(dá)到最大值,此時(shí)修飾劑與修飾酶均已完全沉淀。另外,從圖中可以看出,Eudragit S-100與酶共價(jià)交聯(lián)后,其溶解度的pH變化范圍向pH大的方向發(fā)生了移動(dòng)。這是因?yàn)镋udragit S-100自身是酸性的,當(dāng)其與酶發(fā)生共價(jià)連接后,結(jié)構(gòu)中的自由羧基數(shù)目減少,從而導(dǎo)致溶解度的pH變化范圍向pH大的方向移動(dòng)。總體來看,脂肪酶與Eudragit S-100進(jìn)行固定化修飾后,樹脂的可溶可逆性沒有被破壞,而且其pH響應(yīng)范圍也介于脂肪酶最適pH以下,對(duì)于脂肪酶的催化水解以及回收都不會(huì)造成太大影響。
將固定化修飾酶溶液的pH調(diào)節(jié)至4.0,修飾酶會(huì)沉淀析出。利用該性質(zhì),可以回收使用固定化酶。對(duì)不同次數(shù)回收后的固定化脂肪酶活力進(jìn)行測(cè)試,結(jié)果如圖6所示。Fig.6Reuse of immobilized lipase

圖6 固定化脂肪酶的可重復(fù)使用性
從圖6可以看出,Eudragit S-100固定化修飾脂肪酶在一次使用后,其脂肪酶酶活力的保留率約為92%,經(jīng)過5次重復(fù)使用后,脂肪酶酶活力的保留率仍為45%,表現(xiàn)出較好的重復(fù)使用性能。在重復(fù)使用過程中出現(xiàn)酶活損失的主要原因如下:首先,酶在每次回收過程中無法確保100%回收,沉淀以及沖洗過程會(huì)損失一部分酶;其次,在回收過程中,反復(fù)調(diào)節(jié)溶液的pH值改變酶的狀態(tài),可能會(huì)對(duì)酶的活性部位產(chǎn)生影響,導(dǎo)致部分酶失活;最后,酶在使用過程中需要在40℃條件下進(jìn)行,長(zhǎng)時(shí)間處于此溫度也會(huì)導(dǎo)致部分酶失活。
從以上分析可以看出,活化后的可溶可逆載體Eudragit S-100能夠成功用于豬胰脂肪酶的固定化修飾,固定化修飾之后,豬胰脂肪酶與載體進(jìn)行了多點(diǎn)共價(jià)交聯(lián),而且經(jīng)過有序折疊,分子結(jié)構(gòu)變得較為緊湊,這導(dǎo)致固定化酶具有較好的溫度穩(wěn)定性和pH穩(wěn)定性,但是酶活有一定損失。同時(shí),固定化之后的脂肪酶保留了原載體pH響應(yīng)的可溶可逆性,能夠比較方便的從溶液中進(jìn)行回收,并且具有一定的重復(fù)使用性能。
參考文獻(xiàn):
[1]HASAN F,SHAH A A,HAMEED A.Industrial applications of microbial lipase[J].Enzyme and Microbial Technology,2006,39(2):235-251.
[2]DAVIS B G,BOYER V.Biocatalysis and enzymes in organic synthesis[J].Natural Product Reports,2001,18(6):618-640.
[3]YANG Yong,LI Yanfeng,BAI Yongxu,et al.Progress in carrier materials employed in immobilization of enzymes[J].Chemistry,2007(4):257-263.(in Chinese)
[4]LIYang,WEIWei,CAOQian,etal.Newmaterialsforimmobilizedlipase[J].Journal of the Chinese Cereals and Oils Association,2014,29(7):122-128.(in Chinese)
[5]HE Jing,XU Yan,MA Hui,et al.Effect of surface hydrophobicity/hydrophilicity of mesoporous supports on the activity of immobilized lipase[J].Journal of Colloid and Interface Science,2006,298(2):780-786.
[6]MEUNIER S M,LEGGE R L.Evaluation of diatomaceous earth as a support for sol-gel immobilized lipase for transesterification[J].Journal of Molecular Catalysis B:Enzymatic,2010,62(1):53-57.
[7]WON K,KIM S,KIM K J,et al.Optimization of lipase entrapment in Ca-alginate gel beads[J].Process Biochemmistry,2005,40(6):2149-2154.
[8]CHIOU S H,WU W T.Immobilization of Candida rugosa lipase on chitosan with activation of the hydroxyl groups[J].Biomaterials,2004,25(2):197-204.
[9]KHAN M Z I,PREBEG Z,KURJAKOVIC N.A pH-dependent colon targeted oral drug delivery system using methacrylic acid copolymers:I.Manipulation of drug release using Eudragit(R) L100-55 and Eudragit(R) S100 combinations[J].Journal of Controlled Release,1999,58(2):215-222.
[10]WANG R,KIM J H,KIM B S,et al.Preparation and characterization of non-covalently immobilized amylosucrase using a pH-dependent autoprecipitating carrier[J].Bioresource Technology,2011,102(10):6370-6374.
[11]叢峰松.生物化學(xué)實(shí)驗(yàn)[M].上海:上海交通大學(xué)出版社,2005:119-120.
[12]JIANG Huifang,WANG Yaqin,LIU Chunguo.Comparison and improvement of three determination methods for lipase activity[J].Chemistry&Bioengineering,2007,24(8):72-75.(in Chinese)
[13]ZHANG Y Q,TANG L R,AN X,et al.Modification of cellulase and its application to extraction of diosgenin from Dioscorea zingiberensis C.H.Wright[J].Biochemical Engineering Journal,2009,47(1-3):80-86.
[14]DOURADO F,BASTOS M,MOTA M,et al.Studies on the properties of Celluclast/Eudragit L-100 conjugate[J].Journal of Biotechnology,2002,99(2):121-131.
[15]BURSTEIN E A,VEDENKINA N S,IVKOVA M N.Fluorescence and the location of tryptophan residues in protein molecules[J].Photochemistry and Photobiology,1973,18(4):263-279.
[16]QIN Yimin,TANG Jiangtao,WEI Yuanan,et al.Chemical modification and active sites of β-fructosyl-transferase from Aspergillus oryzae GX0011β[J].China Biotechnology,2008,28(6):84-88.(in Chinese)
[17]XIONG Yahong,SU Jianhong,LIU Xiaoping.Study on the hydrolysis catalyzed by modified pocine pancreas lipase by kinetics and thermodynamics[J].Journal of Molecular Catalysis(China),2010,24(5):435-442.(in Chinese)
[18]SHARMA S,KAUR P,JAIN A,et al.A smart bioconjugate of chymotrypsin[J].Biomacromolecules,2003,4(2):330-336.
[19]SILVA C J S M,ZHANG Q H,SHEN J S,et al.Immobilization of proteases with a water soluble-insoluble reversible polymer for treatment of wool[J].Enzyme and Microbial Technology,2006,39(4):634-640.
[20]YU Y Y,YUAN J G,WANG Q,et al.Cellulase immobilization onto the reversibly soluble methacrylate copolymer for denim washing[J].Carbohydrate Polymers,2013,95(2):675-680.