黃翔雨申曉青ZHOU Zheng 徐平平
1南方醫科大學口腔醫學院(廣州 510280);2南方醫科大學珠江醫院口腔科(廣州 510280);3底特律大學牙學院(底特律 48208)
牙周炎和種植體周圍炎都是以牙齦組織炎癥及牙槽骨破壞吸收,導致牙齒或者種植體松動為主要臨床表現的疾病。巨噬細胞作為主要的效應細胞參與到此病理過程中,在牙周致病菌脂多糖(LPS)等刺激下釋放細胞因子,行使吞噬功能,引起骨吸收破壞。最近研究發現[1]LPS可激活巨噬細胞內相關信號分子誘導高遷移率族蛋白1(HMGB1)的合成、轉位和釋放表達,提示HMGB1處于LPS作用的下游,但HMGB1在LPS引起巨噬細胞炎癥和破骨效應中的作用和地位尚不清楚。本研究旨在探討HMGB1作為LPS信號通路的下游,在巨噬細胞相關的炎癥和破骨效應中的作用。
1.1 材料與試劑胎牛血清(Amizona Scientific LLC,美國);DMEM高糖培養基(Gibco,美國);LPS(Sigma,美國);HMGB1(R&D Systems,美國)。
1.2 細胞培養與處理小鼠巨噬細胞系RAW264.7培養于含有10%胎牛血清、100 U/mL青霉素和100 μg/mL鏈霉素的DMEM高糖培養基中。置于37℃,5%二氧化碳培養箱中貼壁生長。每2~3天更換培養液。待RAW264.7生長至80%時,分別用HMGB1 1 μg/mL和LPS 1 μg/mL刺激18 h,陰性對照以DMEM培養基培養。
1.3 實時熒光定量PCR(Q-PCR)刺激后細胞用PBS洗3次,用Trizol(invitrogen)提取總RNA,檢測濃度。取1 μg RNA逆轉錄成20 μL cDNA(Bio-Red),用10 μL體系,在Q-PCR儀器中擴增檢測各組巨噬細胞極化基因。M1型巨噬細胞極化基因:一氧化氮合酶2(NOS2)、腫瘤壞死因子α(TNF-α)、白介素6(IL-6);M2型巨噬細胞極化基因:精氨酸酶1(ARG-1)、抵抗素樣分子α(RELM-α)的表達情況。GAPDH作為內參基因,Cq值用2-△△Ct公式求出倍數變化值。實驗所用的引物見表1。

表1 Q-PCR相關引物Tab.1 Q-PCR Primer sequences
1.4 統計學方法使用SPSS 20.0軟件進行分析,計量資料以±s表示,兩組間均值比較采用獨立樣本t檢驗,P<0.05為差異有統計學意義。
2.1 LPS刺激下RAW264.7相關極化基因表達情況巨噬細胞中加入1 μg/mL LPS刺激18 h,與空白對照相比,M1相關指標:NOS2、IL-6、TNF-α相對基因表達量較對照組明顯上調(P<0.01)。M2相關指標:ARG-1、RELM-α相對基因表達量較對照組下調(P>0.05)。見表2、圖1。
表2 LPS實驗組M1/M2型巨噬細胞極化基因相對表達量Tab.2 The relative expression level of macrophage in LPS group ±s
2.2 HMGB1刺激下RAW264.7相關極化基因表達情況HMGB1刺激過后的巨噬細胞,M1及M2的相對基因表達量較對照組上調。其中NOS2、TNF-α、RELM-α相對基因表達量較對照組明顯上調(P<0.01)。見表3、圖2。
近年研究發現,巨噬細胞是功能上異質的一種細胞群體,在不同的微環境刺激下形成不同的亞類[2]。根據細胞表型、分泌的細胞因子及其功能可為兩種亞類:M1型巨噬細胞、M2型巨噬細胞[3]。M1型巨噬細胞通過“經典途徑”,由Th1細胞因子活化[4],分泌NOS、TNF-α、IL-1β、IL-6等細胞因子發揮宿主防御免疫功能,介導殺菌、促炎的作用[5],與骨破壞有密切關系[6]。M2型巨噬細胞通過“替代途徑”,由Th2細胞因子活化[4],分泌IL-10、TGF-β等細胞因子,促進組織再生穩定,尤其在炎癥反應后期發揮抗炎作用[7-8],促進創傷修復和纖維變性[9]和骨重建[6]。巨噬細胞通過誘導炎癥的始發,激活由淋巴細胞介導的固有免疫反應,分化為破骨細胞促進牙槽骨吸收[10-11]等,參與到在牙周炎的病理過程中[12]。巨噬細胞M1/M2分型比例失調,M1比例增加,M2比例減少,牙周炎進展破壞加劇;反之牙周炎進入穩定修復期。
HMGB1是一種非組核蛋白。當主動分泌或被動釋放到細胞外環境時,HMGB1可充當細胞因子,因此在炎性疾病的發病機制中起著多重作用,并介導從炎癥和細菌殺傷到組織修復的免疫應答[13]。
牙周炎患者的齦溝液中HMGB1蛋白的表達量相對于正常組有顯著上調[14],提示其與牙周炎的發生發展可能存在密不可分的聯系。LPS可以激活巨噬細胞分泌HMGB1[15-16]。LPS通過依次激活巨噬細胞內信號分子P38、MAPK、NF-κB及CBP來誘導HMGB1的合成、轉位和釋放表達[17]。其釋放及起效較其他促炎分子晚[18]。以上發現均提示,HMGB1處于LPS的下游,并可作為LPS的延遲介質起作用[18],可能是LPS誘發的牙周炎的信號通路上關鍵的一環。
本研究對小鼠巨噬細胞系RAW264.7進行LPS、HMGB1刺激后,檢測M1和M2方向相關基因表達,發現LPS的刺激使小鼠巨噬細胞基因水平表達M1型增加、M2型減少,M1/M2的比例上調。這與以往研究一致。在HMGB1的刺激下,同樣發現RAW264.7細胞向M1方向極化顯著增加。上述結果說明,HMGB1作為LPS的下游因子,LPS可通過HMGB1促進巨噬細胞向M1極化,引起促炎因子IL-6、TNF-α等的釋放,加重局部組織炎性反應;同時介導破骨細胞分化,激活破骨細胞活性,從而加速了牙周炎患者的牙齦炎癥和骨吸收破壞。

圖1 LPS對M1/M2型巨噬細胞極化基因表達的影響Fig.1 The effect of LPS on M1/M2 macrophage related mRNA expression

圖2 HMGB1對M1/M2型巨噬細胞極化基因表達的影響Fig.2 The effect of HMGB1 on M1/M2 macrophage related mRNA expression
表3 HMGB1實驗組M1/M2型巨噬細胞極化基因相對表達量Tab.3 The relative expression level of macrophage in HMGB1 group ±s

表3 HMGB1實驗組M1/M2型巨噬細胞極化基因相對表達量Tab.3 The relative expression level of macrophage in HMGB1 group ±s
另外本研究還發現,HMGB1刺激后,巨噬細胞M2分化的標志性分子表達顯著上調,提示HMGB1還有促進巨噬細胞M2分化的作用,HMGB1作為LPS的下游因子,在LPS引起的牙周炎這一信號轉導通路中除了扮演已知的“破壞者”的角色,還可能有“剎車”的作用——可以啟動修復反應,避免機體組織受到無限制的破壞,從而調控組織破壞的程度,維持組織的穩態。但該功能何時啟動、如何啟動?對牙周炎和種植體周圍炎的防治有無啟示作用?這些均值得下一步深入研究。近年也有研究發現HMGB1與M2型巨噬細胞存在一些關聯[20-21],HMGB1可以通過RAGE增強M2型巨噬的細胞的活性[22]。但未有研究闡明作為下游分子的HMGB1在LPS通路中對巨噬細胞分化所起的“雙向調節”作用。
綜上所述,本研究首次發現HMGB1除了可促進巨噬細胞往M1型極化,加重組織損傷以外,還能促進巨噬細胞往M2型極化,阻止炎癥破壞進一步惡化,促進組織再生修復。通過研究并干預增強此過程的信號通路,進而促進牙周炎癥破壞后的組織重建,有望為牙周炎和種植體周圍炎的治療提供新的參考思路。
[1]LOTZE M T,TRACEY K J.High-mobility group box 1 protein(HMGB1):nuclear weapon in the immune arsenal[J].Nat Rev Immunol,2005,5(4):331-342.
[2]ZHU L,ZHAO Q,YANG T,et al.Cellular metabolism and macrophage functional polarization[J].Int Rev Immunol,2015,34(1):82-100.
[3]COLIN S,CHINETTI-GBAGUIDI G,STAELS B.Macrophage phenotypes in atherosclerosis[J].Immunol Rev,2014,262(1):153-166.
[4]MOSSER D M,EDWARDS J P.Exploring the full spectrum of macrophage activation[J].Nat Rev Immunol,2008,8(12):958-969.
[5]BISWAS S K,CHITTEZHATH M,SHALOVA I N,et al.Macrophage polarization and plasticity in health and disease[J].Immunol Res,2012,53(1-3):11-24.
[6]HORWOOD N J.Macrophage Polarization and Bone Formation:A review[J].Clin Rev Allergy Immunol,2016,51(1):79-86.
[7]WYNN T A,BARRON L,THOMPSON R W,et al.Quantitative assessment of macrophage functions in repair and fibrosis[J].Curr Protoc Immunol,2011,Chapter 14:Unit14-22.
[8]GORDON S.Alternative activation of macrophages[J].Nat Rev Immunol,2003,3(1):23-35.
[9]鎖漉萱,張真真,開紅英,等.子宮內膜異位癥纖維化與M2型巨噬細胞的關系[J].實用醫學雜志,2017,33(12):1928-1932.
[10]SIMA C,GLOGAUER M.Macrophage subsets and osteoimmunology:tuning of the immunological recognition and effector systems that maintain alveolar bone[J].Periodontol 2000,2013,63(1):80-101.
[11]HASTURK H,KANTARCI A,Van DYKE T E.Oral inflammatory diseases and systemic inflammation:role of the macrophage[J].Front Immunol,2012,3:118.
[12]YU T,ZHAO L,HUANG X,et al.Enhanced activity of the macrophage M1/M2 phenotypes and phenotypic switch to M1 in Periodontal Infection[J].J Periodontol,2016,87(9):1092-1102.
[13]YANG H,WANG H,CHAVAN S S,et al.High Mobility Group Box Protein 1(HMGB1):The prototypical endogenous danger molecule[J].Mol Med,2015,21(Suppl 1):S6-S12.
[14]韓永剛,陳忠壽,黃風云.牙周炎齦溝液中HMGB1、2的表達及意義[J].中國醫學創新,2014,17(21):83-85.
[15]ELFEKY M,KAEDE R,OKAMATSU-OGURA Y,et al.Adiponectin Inhibits LPS-Induced HMGB1 Release through an AMP Kinase and Heme Oxygenase-1-Dependent Pathway in RAW 264 Macrophage Cells[J].Mediators Inflamm,2016,2016:5701959.
[16]CHANG K C,KO Y S,KIM H J,et al.13-Methylberberine reduces HMGB1 release in LPS-activated RAW264.7 cells and increases the survival of septic mice through AMPK/P38 MAPK activation[J].Int Immunopharmacol,2016,40:269-276.
[17]何林祥,孫航,吳傳新,等.LPS通過P38MAPK-CBP誘導巨噬細胞RAW264.7表達和釋放HMGB1[J].基礎醫學與臨床,2012,32(5):474-480.
[18]WANG H,BLOOM O,ZHANG M,et al.HMG-1 as a late mediator of endotoxin lethality in mice[J].Science,1999,285(5425):248-251.
[19]SON M,PORAT A,HE M,et al.C1q and HMGB1 reciprocally regulate human macrophage polarization[J].Blood,2016,128(18):2218-2228.
[20]SCHAPER F,de LEEUW K,HORST G,et al.High mobility group box 1 skews macrophage polarization and negatively influences phagocytosis of apoptotic cells[J].Rheumatology(Oxford),2016,55(12):2260-2270.
[21]ROJAS A,DELGADO-LOPEZ F,PEREZ-CASTRO R,et al.HMGB1 enhances the protumoral activities of M2 macrophages by a RAGE-dependent mechanism[J].Tumour Biol,2016,37(3):3321-3329.