郭輝,張斌,胡利民
天門市第一人民醫院普外科,湖北 天門 431700
甲狀腺癌是一種常見的內分泌系統惡性腫瘤, 發病率居所有惡性腫瘤的第6位[1]。甲狀腺乳頭狀癌(papillary thyroid carcinoma,PTC)是甲狀腺癌中最常見的一種組織學類型,PTC屬于高分化惰性腫瘤,大多數預后良好,但仍有部分患者出現淋巴結轉移或被膜侵犯,影響手術切除率及患者預后。因此,開展PTC相關分子生物學研究,尋找可評估PTC侵襲性、指導術式及評價預后的分子標志物至關重要。研究顯示,除基因重排與突變外,微小RNA(miRNA)也參與PTC的發生和發展[2]。miRNA是一種高度保守的非編碼單鏈小分子RNA,參與細胞增殖、分化及凋亡等過程[3]。由miRNA介導的基因轉錄后調控是一種重要的基因表達調控方式,miRNA突變或異常在腫瘤的發生、發展、侵襲及轉移過程中發揮關鍵作用[4],且與腫瘤的治療反應、分期、預后及復發檢測密切相關[5]。miRNA-214作為miRNA家族成員之一,具有類似癌基因或抑癌基因的功能。研究證實,miRNA-214表達異常與乳腺癌、黑色素瘤、胰腺癌等腫瘤細胞的增殖、分化及凋亡過程密切相關,可作為腫瘤診斷、治療及預后評估的分子標志物[6]。外周血miRNA具有良好的穩定性,miRNA檢測具有靈敏、便捷等優勢,成為近年來腫瘤分子生物學的研究熱點[7]。本研究采用實時熒光定量PCR(quantitative realtime polymerase chain reaction,qRT-PCR)技術檢測PTC及良性甲狀腺腫瘤患者的血清miRNA-214表達水平,分析其與PTC患者臨床特征的關系,旨在探討其在PTC診斷及個體化評估中的臨床意義,現報道如下。
回顧性分析2016年1月至2017年6月天門市第一人民醫院收治的經術后病理檢查確診的50例PTC患者和46例良性甲狀腺腫瘤患者的臨床資料。所有患者均排除其他惡性腫瘤史,術前均未接受抗腫瘤治療。PTC患者中,男20例,女30例;年齡24~63歲,平均(43±12)歲;甲狀腺腫瘤患者中,男14例,女32例;年齡25~71歲,平均(45±14)歲;結節性甲狀腺腫31例,甲狀腺腺瘤15例。兩組患者的性別、年齡比較,差異均無統計學意義(P﹥0.05),具有可比性。
1.2.1 血清采集與保存 采集患者的清晨空腹外周靜脈血4 ml,置于真空血樣采集管中,室溫靜置30~60 min,3500 r/min離心 10 min,收集上層血清于無酶EP管中,保存于-80℃醫用低溫箱。
1.2.2 血清總RNA提取 采用QIAGEN公司的miRNeasy Serum/Plasma Kit抽提和純化標本中的總RNA,具體操作嚴格按照說明書進行。采用分光光度計檢測提取的總RNA純度及濃度,取A260/A280為1.8~2.1的樣本,置于-80℃醫用低溫箱保存用于后續試驗。
1.2.3 逆轉錄 采用QIAGEN公司的miScriptⅡRT Kit將RNA逆轉錄成cDNA,反應體系(20 μl):5×miScript HisSpec Buffer 4 μl,10×miScript Nucleics Mix 2 μl,RNase-free water 6 μl,miScript Reverse Transcriptase Mix 2 μl,RNA 6 μl。反應條件:37℃、60 min,95℃、5 min。將逆轉錄反應液用RNase-free water稀釋11倍后進行分裝,置于-20℃保存備用。
1.2.4 PCR擴增 采用QIAGEN公司的miScript SYBR? Green PCR Kit和miScript Primer Assays對cDNA模板進行PCR擴增。miRNA-214及內參Ce_miR-39_1的特異性引物均為QIAGEN公司專利產品(Assay name:Hs_miR-214_2)。反應體系(20 μl):2 × QuantiTect SYBR Green PCR Master Mix 10 μl,10×miScript Precursor Assay 2 μl,RNasefree water 6 μl,模板 cDNA 2 μl。反應條件:95 ℃、15 min(預變性),94℃、15 (s變性),55℃、30 (s退火),共40個循環;70℃、30 (s延伸)。每個樣本設置兩個復孔,每批樣本設置1個空白對照。
1.2.5 miRNA-214相對表達量的計算 采用2-△△Ct法計算miRNA-214的相對表達量,以Ce_miR-39_1為內參。每個標本的Ct值取復孔均值,△Ct=C(tmiRNA-214)-C(tCe_miR-39_1),△△Ct=△Ct試驗組-△Ct對照組,miRNA-214的相對表達量為2-△△Ct。
采用SPSS 20.0和Medcalc 15.2.2軟件對-數據進行統計分析。計量資料以均數±標準差(x±s)或中位數(四分位數)[M(P25,P75)]表示,組間比較采用t檢驗或Wilcoxon秩和檢驗;計數資料以率(%)表示,組間比較采用χ2檢驗。采用Mann-Whitney U檢驗分析miRNA-214表達水平與PTC患者臨床特征的關系。繪制受試者工作特征曲線(receiver operating characteristic curve,ROC曲線),分析miRNA-214對PTC的診斷效能。以P﹤0.05為差異有統計學意義。
PTC患者的血清miRNA-214表達水平為3.798(1.856,5.094),明顯高于良性甲狀腺腫瘤患者的 1.272(0.711,2.351),差異有統計學意義(Z=-2.941,P=0.003)。
血清miRNA-214表達水平與PTC患者的腫瘤最大徑、被膜侵犯情況、淋巴結轉移情況及TNM分期有關(P﹤0.05),與患者的性別、年齡無關(P﹥0.05)。(表1)

表1 血清miRNA-214表達水平與PTC患者臨床特征的關系
以術后病理結果為金標準繪制ROC曲線,血清miRNA-214診斷PTC的曲線下面積(area under curve,AUC)為 0.762(Z=5.328,P﹤0.01,95%CI:0.664~0.843)。當Youden指數為0.478時,cut off值為3.778,靈敏度為50.00%,特異度為97.83%。(圖1)

圖1 血清miRNA-214診斷PTC的ROC曲線
以術后病理結果為金標準繪制ROC曲線,血清miRNA-214診斷PTC淋巴結轉移的AUC為0.825(Z=4.228,P﹤0.01,95%CI:0.692~0.918),當Youden指數為0.639時,cut off值為4.865,靈敏度為81.82%,特異度為82.05%。血清miRNA-214診斷 PTC 被膜侵犯的 AUC 為 0.757(Z=3.649,P﹤0.01,95%CI:0.615~0.867),當Youden指數為0.427時,cut off值為4.103,靈敏度為75.00%,特異度為67.65%。(圖 2、圖 3)

圖2 血清miRNA-214診斷PTC淋巴結轉移的ROC曲線

圖3 血清miRNA-214診斷PTC被膜侵犯的ROC曲線
miRNA是廣泛存在于動植物體內,長約22個核苷酸的內源性非編碼單鏈小分子RNA,能以堿基互補的形式特異性結合mRNA,抑制靶mRNA的轉錄和翻譯,或直接降解靶mRNA,在轉錄后水平對基因表達進行負性調控,從而參與細胞的增殖、分化及凋亡。miRNA-214是miRNA家族的重要成員,位于染色體1q24.3區域和發動蛋白超家族成員DNM3第14號內含子上。miRNA-214為多功能miRNA,研究表明,miRNA-214在不同腫瘤中的表達水平不同,可通過調控癌基因及抑癌基因的表達水平,從而在腫瘤的發生、發展、侵襲及轉移過程中發揮重要作用[8]。外周血miRNA為最小的非侵入性分子標志物,組織中的miRNA可經主動分泌或被動滲漏等途徑進入外周血。外周血miRNA具有良好的抗RNase活性[9],且受內源性RNA酶保護而免于降解[10],具有較好的穩定性和特異性,能穩定存在于血清、唾液及尿液等體液中[11]。通過現代技術可在體液中檢測到病理狀態下異常表達的miRNA,這使得外周血miRNA成為潛在的無創性診斷、治療及預后評估的新型分子生物學標志物。目前,血清miRNA-214已被證實可作為乳腺癌、前列腺癌、膀胱癌等的特異性腫瘤標志物而應用于臨床[12]。
關于miRNA-214在惡性腫瘤中的表達水平,近年來有大量的研究。Wang等[13]研究發現,miRNA-214在肝癌組織中表達下調,認為miRNA-214在肝癌的發生、發展、侵襲及轉移過程中起重要作用。Schwarzenbach等[14]研究報道,乳腺癌患者的外周血miRNA-214表達水平上調,miRNA-214在評價惡性指標及淋巴結轉移擴散方面具有重要作用。Yang等[15]研究顯示,miRNA-214在胃癌組織及細胞中均高表達,并證明miRNA-214通過綁定PTEN的3’UTR靶點,負性調控基因轉錄后水平,從而調節胃癌細胞的擴散、遷移和侵襲。另有研究表明,miRNA-214在食管癌中的表達下調,miRNA-214高表達能抑制食管癌細胞的增殖、轉移及凋亡,敲除miRNA-214后可促進腫瘤的發生及發展,并由此認為miRNA-214是食管癌的抑癌基因[16]。
本研究通過qRT-PCR檢測PTC及良性甲狀腺腫瘤患者的血清miRNA-214表達水平,結果發現,PTC患者的血清miRNA-214表達水平明顯高于良性甲狀腺腫瘤患者(P﹤0.01),ROC曲線分析證實miRNA-214可作為區分PTC與良性甲狀腺腫瘤的潛在分子標志物,對診斷PTC具有一定的臨床價值。本研究還發現,miRNA-214表達水平與PTC患者的腫瘤最大徑、被膜侵犯情況、淋巴結轉移情況及TNM分期有關,即腫瘤越大、存在被膜侵犯及淋巴結轉移、TNM分期越晚,miRNA-214表達水平越高,提示miRNA-214在PTC的發生、發展、侵襲及轉移過程中發揮重要作用。關于其他miRNA家族成員在PTC中的表達,Lee等[17]研究報道,PTC患者血漿中miRNA-155的表達較甲狀腺良性結節患者或健康人群明顯上調,其表達水平與PTC的侵襲性及預后不良有關。Yang等[18]研究顯示,miRNA-222-3p在PTC組織中表達升高,且其表達量與存在被膜侵犯、TNM分期晚、存在淋巴結轉移等病理因素密切相關,并認為miRNA-222-3p表達異常是PTC發生、發展、侵襲及轉移的重要因素。因此,miRNA-214可作為輔助診斷PTC的新的生物學標志物,并可用于術前臨床評估,通過調節miRNA-214的表達可以抑制腫瘤的侵襲及轉移,為腫瘤治療提供了新思路。
盡管PTC在生物學行為上表現為高分化惰性腫瘤,具有相對較弱的侵襲性和轉移性,腫瘤進展慢,病死率低,但PTC常發生淋巴結轉移,且早期發生頸部淋巴結轉移的可能性較大,從而表現出高侵襲性,影響預后。因此,術前了解PTC的侵襲性等病理學特征對指導術式、術后治療及預后評估十分重要。在miRNA與PTC生物學行為關系的研究中,Yip等[19]認為,在合并局部復發或遠處轉移的侵襲性PTC患者中,miRNA-222-3p和miRNA-146b-3p的表達水平較非侵襲性PTC患者明顯上調;另外一項研究也顯示,miRNA-221-3p、miRNA-222-3p和miRNA-146b-3p在伴有被膜侵犯的PTC組織中高表達[20]。其他研究則認為,血清miRNA-222-3p、miRNA-146b-3p、miRNA-221-3p和miRNA-222-3p在合并有淋巴結轉移的PTC患者中表達水平更高[17,21]。本研究結果顯示,血清miRNA-214表達水平與淋巴結轉移情況及被膜侵犯情況有關,且ROC曲線表明,miRNA-214在評價PTC是否合并淋巴結轉移或被膜侵犯方面具有診斷價值,說明術前檢測miRNA-214表達水平能預測PTC的某些病理特征及生物學行為,對術前PTC患者的個體化病情評估具有重要的指導意義。
綜上所述,miRNA-214在PTC患者的血清中表達上調,其表達水平能反映PTC的進展情況,可作為術前評估PTC淋巴結轉移及被膜侵犯情況的一項輔助指標,并對PTC的臨床診斷具有一定價值。筆者后續將研究miRNA-214在PTC組織中的表達水平,以探究miRNA-214在PTC發生、發展、侵襲及轉移中的具體作用機制,為miRNA-214作為新的診斷、治療及預后評估指標提供依據。
參考文獻
[1]Zheng R,Zeng H,Zhang S,et al.National estimates of cancer prevalence in China,2011[J].Cancer Lett,2016,370(1):33-38.
[2]Omur O,Baran Y.An update on molecular biology of thyroid cancers[J].Crit Rev Oncol Hematol,2014,90(3):233-252.
[3]Biswas S,Roy S,Banerjee J,et al.Hypoxia inducible microRNA 210 attenuates keratinocyte proliferation and impairs closure in a murine model of ischemic wounds[J].Proc Natl Acad Sci U S A,2010,107(15):6976-6981.
[4]Tanoglu A,Balta AZ,Berber U,et al.MicroRNA expression profile in patients with stage II colorectal cancer:a Turkish referral center study[J].Asian Pac J Cancer Prev,2015,16(5):1851-1855.
[5]Krell J,Frampton AE,Stebbing J.MicroRNAs in the cancer clinic[J].Front Biosci(Elite Ed),2013,5:204-213.
[6]Sharma T,Hamilton R,Mandal CC.miR-214:a potential biomarker and therapeutic for different cancers[J].Future Oncol,2015,11(2):349-363.
[7]Lin MS,Chen WC,Huang JX,et al.Aberrant expression of microRNAs in serum may identify individuals with pancreatic cancer[J].Int J Clin Exp Med,2014,7(12):5226-5234.
[8]Wang X,Chen J,Li F,et al.MiR-214 inhibits cell growth in hepatocellular carcinoma through suppression of betacatenin[J].Biochem Biophys Res Commun,2012,428(4):525-531.
[9]Maclellan SA,Macaulay C,Lam S,et al.Pre-profiling factors influencing serum microRNA levels[J].BMC Clin Pathol,2014,14:27.
[10]Allegra A,Alonci A,Campo S,et al.Circulating microRNAs:new biomarkers in diagnosis,prognosis and treatment of cancer(review)[J].Int J Oncol,2012,41(6):1897-1912.
[11]Penna E,Orso F,Taverna D.MiR-214 as a key hub that controls cancer networks:small player,multiple functions[J].J Invest Dermatol,2015,135(4):960-969.
[12]Hao M,Zang M,Zhao L,et al.Serum high expression of miR-214 and miR-135b as novel predictor for myeloma bone disease development and prognosis[J].Oncotarget,2016,7(15):19589-19600.
[13]Wang X,Chen J,Li F,et al.MiR-214 inhibits cell growth in hepatocellular carcinoma through suppression of betacatenin[J].Biochem Biophys Res Commun,2012,428(4):525-531.
[14]Schwarzenbach H,Milde-Langosch K,Steinbach B,et al.Diagnostic potential of PTEN-targeting miR-214 in the blood of breast cancer patients[J].Breast Cancer Res Treat,2012,134(3):933-941.
[15]Yang TS,Yang XH,Wang XD,et al.MiR-214 regulate gastric cancer cell proliferation,migration and invasion by targeting PTEN[J].Cancer Cell Int,2013,13(1):68.
[16]He H,Ding F,Li S,et al.Expression of migfilin is increased in esophageal cancer and represses the Akt-betacatenin activation[J].Am J Cancer Res,2014,4(3):270-278.
[17]Lee YS,Lim YS,Lee JC,et al.Differential expression levels of plasma-derived miR-146b and miR-155 in papillary thyroid cancer[J].Oral Oncol,2015,51(1):77-83.
[18]Yang Z,Yuan Z,Fan Y,et al.Integrated analyses of microRNA and mRNA expression profiles in aggressive papillary thyroid carcinoma[J].Mol Med Rep,2013,8(5):1353-1358.
[19]Yip L,Kelly L,Shuai Y,et al.MicroRNA signature distinguishes the degree of aggressiveness of papillary thyroid carcinoma[J].Ann Surg Oncol,2011,18(7):2035-2041.
[20]Chou CK,Chen RF,Chou FF,et al.miR-146b is highly expressed in adult papillary thyroid carcinomas with high risk features including extrathyroidal invasion and the BRAF(V600E)mutation[J].Thyroid,2010,20(5):489-494.
[21]Yu S,Liu Y,Wang J,et al.Circulating microRNA profiles as potential biomarkers for diagnosis of papillary thyroid carcinoma[J].J Clin Endocrinol Metab,2012,97(6):2084-2092.