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流式熒光點(diǎn)陣技術(shù)在乙型肝炎病毒基因分型中的應(yīng)用

2018-06-04 07:41:22朱宇清朱嶺峰蔣玲麗
檢驗(yàn)醫(yī)學(xué) 2018年5期
關(guān)鍵詞:檢測(cè)

朱 俊,朱宇清,朱嶺峰,蔣玲麗,徐 翀

(上海市臨床檢驗(yàn)中心,上海 200126)

乙型肝炎病毒(hepatitis B virus, HBV)感染是導(dǎo)致肝硬化和肝癌的首要原因,全球大約有2.4億HBV感染者[1],我國(guó)的乙型肝炎患者達(dá)1.2億[2]。由于HBV雙鏈DNA的復(fù)制過(guò)程中RNA等中間產(chǎn)物和逆轉(zhuǎn)錄酶的作用,以及DNA聚合酶缺乏校正功能而使HBV基因組具有較大的變異性[3]。迄今為止,根據(jù)HBV全基因組序列分析將HBV分為10種(A~J)基因型和多種亞型,不同基因型之間的核酸序列異質(zhì)性≥8%,不同亞型之間序列差異為4%~7%[2,4-6]。有研究結(jié)果表明,HBV基因型與乙型肝炎臨床表現(xiàn)的異質(zhì)性、對(duì)抗病毒治療應(yīng)答及預(yù)后有關(guān)[7-8]。目前,國(guó)內(nèi)外對(duì)于HBV基因分型多采用測(cè)序方法,但測(cè)序方法存在繁瑣耗時(shí)、成本較高的不足。我們研發(fā)了一種基于流式熒光點(diǎn)陣技術(shù)(又稱液態(tài)芯片法)的HBV基因型B型和C型的檢測(cè)方法,具有特異性強(qiáng)、操作簡(jiǎn)便靈活并易自動(dòng)化的特點(diǎn)。

1 材料和方法

1.1 研究對(duì)象

收集2015年4月上海中醫(yī)藥大學(xué)附屬曙光醫(yī)院檢驗(yàn)科采用測(cè)序法進(jìn)行HBV基因分型的血清樣本67份,其中B型24份、C型43份。

1.2 儀器與試劑

1.2.1 儀器 (1)TC-96/G/H(b)A Life Pro梯度基因擴(kuò)增儀(杭州博日科技有限公司)。(2)EPS100核酸電泳儀(上海天能科技有限公司)。(3)FR-200A全自動(dòng)紫外與可見分析裝置(上海復(fù)日科技有限公司)。(4)Luminex 200多功能流式點(diǎn)陣(液相芯片)儀(美國(guó)Luminex公司)。

1.2.2 試劑 (1)DNA提取試劑盒(德國(guó)Qiagen公司)。(2)BestarTaq DNA Polymerase DNA聚合酶(德國(guó)DBI Bioscience公司)。(3)引物和探針由英濰捷基(上海)貿(mào)易有限公司合成。測(cè)序引物 HBV B型擴(kuò)增引物:HBV-BF 5'-GTCCTCTAATTCCAGGAT-3',其中5'端第5個(gè)T用生物素標(biāo)記,HBV-BR 5'-CGTAGGTTTTGTACAGCAACGT-3'。HBV C型擴(kuò)增引物:HBV-CF 5'-ACAACATCTTGAGTCCCTTCTT-3',其中5'端第5個(gè)T用生物素標(biāo)記,HBV-CR 5'-CCATGAAGTTAAGGGAGTTGC-3'。探針(5'起第9個(gè)堿基T用氨基修飾):HBV B型探針ACTCCTGCTCAAGGAACCTCTA;HBV C型探針TCTTTGGGTATACATTTAAACCCTAA。(4)鏈霉親和素-藻紅蛋白(美國(guó)Invitrogen公司)。(5)熒光編號(hào)的(表面羧基修飾)聚苯乙烯微球(美國(guó)Luminex公司)。

1.3 檢測(cè)技術(shù)原理

1.3.1 核酸探針與微球偶聯(lián) 從探針5' 起第9個(gè)堿基T氨基化,聚苯乙烯微球表面用羧基修飾。探針通過(guò)修飾的氨基偶聯(lián)至修飾羧基的微球表面。

1.3.2 多重聚合酶鏈反應(yīng)(polymerase chain reaction,PCR)產(chǎn)物與探針雜交 PCR引物5'端第5個(gè)T用生物素標(biāo)記,PCR擴(kuò)增產(chǎn)物如與微球表面探針互補(bǔ),則生物素連接至微球表面,加入鏈霉親和素-藻紅蛋白后即可通過(guò)鏈霉親和素與生物素的結(jié)合而使藻紅蛋白熒光標(biāo)記至微球。微球表面的藻紅蛋白熒光在激光激發(fā)下發(fā)光。見圖1。

圖1 熒光點(diǎn)陣技術(shù)原理

1.4 方法

1.4.1 多重PCR擴(kuò)增 (1)DNA提取:根據(jù)DNA提取試劑盒的說(shuō)明書進(jìn)行DNA提取。(2)反應(yīng)體系組成:模板DNA2 μL,上、下游引物2 μL,PCR預(yù)混液(含熱啟動(dòng)TaqDNA酶、MgCl2和 dNTP Mix)10 μL,雙蒸水6 μL,至總體積20 μL。(3)反應(yīng)條件:95 ℃ 15 min;94 ℃ 30 s,55 ℃ 90 s,72 ℃ 90 s,35個(gè)循環(huán);72 ℃ 10 min。反應(yīng)產(chǎn)物于4 ℃保存。

1.4.2 雜交檢測(cè) (1)探針與微球偶聯(lián):用蒸餾水將2種寡核苷酸探針溶解,調(diào)節(jié)濃度為1 mM/L。分別從2個(gè)熒光編碼的微球儲(chǔ)存懸液中取2.5×106個(gè)微球到2個(gè)離心管中。以蒸餾水將1 mM/L濃度探針進(jìn)一步稀釋10倍,各取2 mL至混勻的相應(yīng)的微球里混合并避光孵育30 min,探針通過(guò)修飾的氨基偶聯(lián)至修飾羧基的微球表面。偶聯(lián)后的微球經(jīng)洗滌后用pH值8.0的三羥甲基氨基甲烷-乙二胺四乙酸溶液將偶聯(lián)微球重懸浮。將分別偶聯(lián)B型和C型探針的2種微球等比例混合,各種微球的終濃度為1 500個(gè)/μL,2~8 ℃避光保存。(2)PCR產(chǎn)物與探針雜交:用雜交液將偶聯(lián)微球濃度稀釋至150個(gè)/μL作為微球工作液。取33 μL微球工作液,與多重PCR擴(kuò)增產(chǎn)物和TE溶液(共17 μL)混合,在95~100 ℃孵育5 min以去除寡核苷酸的二級(jí)結(jié)構(gòu)。在雜交溫度48 ℃下孵育反應(yīng)60 min,加入10 μg/μL的鏈霉親和素-藻紅蛋白溶液75 μL后繼續(xù)孵育15 min完成雜交和熒光標(biāo)記。(3)上機(jī)檢測(cè):在Luminex 200液相芯片儀上,保持雜交溫度,對(duì)各反應(yīng)孔進(jìn)行檢測(cè)分析,測(cè)定平均熒光強(qiáng)度(mean fluorescence intensity, MFI)值。

1.4.3 結(jié)果分析 檢測(cè)時(shí)以不含有HBV DNA序列的質(zhì)粒作為陰性對(duì)照,以MFI值>150作為陽(yáng)性的判斷標(biāo)準(zhǔn)。陽(yáng)性閾值是以10個(gè)陰性標(biāo)本MFI的平均值加上2s確定。

2 結(jié)果

2.1 特異性試驗(yàn)

將多重PCR擴(kuò)增產(chǎn)物與結(jié)合B型和C型探針的2種微球在同一反應(yīng)體系中雜交,Luminex 200液態(tài)芯片儀檢測(cè)結(jié)果顯示,人DNA、金黃色葡萄球菌(Staphylococcus aureus, Sau)DNA和人乳頭瘤病毒(human papillomavirus, HPV)DNA樣本的MFI均<150,顯示為陰性結(jié)果。18、19和20號(hào)樣本與C型探針雜交呈陽(yáng)性反應(yīng),與B型探針不發(fā)生反應(yīng);33和34號(hào)樣本與B型探針雜交呈陽(yáng)性反應(yīng),與C型探針不發(fā)生反應(yīng)。這2個(gè)組雜交結(jié)果均與測(cè)序結(jié)果相符。見表1。

表1 B型和C型2種探針的特異性試驗(yàn)

2.2 液態(tài)芯片法與測(cè)序法結(jié)果比較

經(jīng)測(cè)序法基因分型確定為B型的24份樣本中,23份經(jīng)液態(tài)芯片法檢測(cè)獲得與測(cè)序同樣的結(jié)果,但有1份樣本同時(shí)顯示與B型和C型探針均有陽(yáng)性雜交信號(hào);經(jīng)測(cè)序法確定為C型的43份樣本中,有40份樣本在液態(tài)芯片法的檢測(cè)中獲得與測(cè)序同樣結(jié)果,但有3份樣本同時(shí)與B型和C型探針有陽(yáng)性雜交信號(hào)。見表2。

表2 液態(tài)芯片法與測(cè)序法結(jié)果的比較

3 討論

HBV屬于嗜肝DNA病毒科家族,呈全球性分布,是導(dǎo)致人類嚴(yán)重慢性肝病(如慢性肝炎、肝硬化和肝細(xì)胞癌)的最主要原因[9]。自1965年BLUMBERG等[10]發(fā)現(xiàn)HBV后,HBV的第1種疫苗于5年后問(wèn)世[11]。從1982年起,由于 >10億支HBV疫苗的使用,使全球感染HBV而導(dǎo)致的死亡率顯著下降[12]。但盡管如此,數(shù)億患者已經(jīng)成為HBV慢性感染的事實(shí)使得根除乙型肝炎的任務(wù)異常艱巨。諾貝爾獎(jiǎng)獲得者Blumberg教授認(rèn)為可以通過(guò)3種重要的方式來(lái)根除HBV[11]:有效的全球疫苗接種、準(zhǔn)確的診斷分析技術(shù)和對(duì)于HBV攜帶者的有效治療。而缺乏對(duì)HBV遺傳特性的了解,則難以達(dá)到此目的。

自從1988年OKAMOTO等[13]首次建立了HBV基因型的分型標(biāo)準(zhǔn)并將HBV分為A、B、C和D 4種基因型以后,經(jīng)過(guò)NORDER等[14]、STUYVER等[15]、WU等[16]、YU等[17]和TATEMATSU等[18]的補(bǔ)充和發(fā)展,根據(jù)HBV全基因系列不同基因型間核酸序列差異≥8%、亞型之間差異為4%~7%的原則,至今可將HBV分為A~J共10種基因型,并可進(jìn)一步分為諸多亞型(以數(shù)字表示)。HBV基因分型與之前報(bào)道的根據(jù)HBV表面抗原2對(duì)互相排斥的亞型決定簇(d/y和w/r)而建立的血清分型部分相關(guān)[6],2種分型方式并不能建立完全的對(duì)應(yīng)關(guān)系,比如血清型adw并不只存在于1種基因型中[19]。目前認(rèn)為以基因型來(lái)反映HBV的變異更為準(zhǔn)確。HBV基因型的分布具有顯著的民族和地理區(qū)域差異[2],并且與乙型肝炎的臨床表現(xiàn)、病程、抗病毒治療應(yīng)答以及預(yù)后有關(guān)[7-8]。因此,準(zhǔn)確的HBV基因分型對(duì)于乙型肝炎的預(yù)防、診斷、治療以及預(yù)后判斷均有重要意義。

迄今為止,通過(guò)與美國(guó)國(guó)家生物技術(shù)信息中心(the National Center for Biotechnology Information, NCBI)網(wǎng)站上的BLAST軟件的比對(duì),對(duì)HBV進(jìn)行全基因組序列分析是區(qū)分HBV基因型和亞型的“金標(biāo)準(zhǔn)”。其他用于HBV基因分型的分子生物學(xué)方法還包括:PCR-限制性片段長(zhǎng)度法、型特異性引物PCR、寡核苷酸基因芯片法、限制性片段質(zhì)譜多態(tài)性技術(shù)、質(zhì)譜分析、實(shí)時(shí)熒光PCR、線形探針?lè)聪螂s交技術(shù)以及反向點(diǎn)雜交等方法。但這些方法的缺點(diǎn)是不能準(zhǔn)確分型、容易受基因組堿基突變而影響引物和DNA或探針和DNA的配對(duì)而導(dǎo)致分型結(jié)果難以歸類,檢測(cè)成本高、需要特殊儀器等[20]。測(cè)序法因其可以直接分析HBV全基因組的序列,所以分型結(jié)果最為可靠。因此,雖然有多種HBV分型方法,基因測(cè)序仍然是HBV分型的“金標(biāo)準(zhǔn)”。但是,測(cè)序方法檢測(cè)成本較高、技術(shù)相對(duì)復(fù)雜且需要測(cè)序儀器,故不適合臨床廣泛應(yīng)用[20]。

本研究以亞洲主要流行的B型和C型HBV為研究目標(biāo),研發(fā)了一種利用多重PCR技術(shù)結(jié)合液態(tài)芯片技術(shù)對(duì)HBV進(jìn)行基因分型的方法,目前市場(chǎng)上尚無(wú)相同產(chǎn)品。引物和探針的設(shè)計(jì)參考了世界衛(wèi)生組織等機(jī)構(gòu)推薦的病毒株序列和引物序列,與NCBI的HBV核酸數(shù)據(jù)庫(kù)進(jìn)行序列比對(duì),以確保所設(shè)計(jì)引物和探針序列的特異性、穩(wěn)定性和代表性,并同時(shí)兼顧我國(guó)地區(qū)高發(fā)毒株的情況。本研究檢測(cè)了經(jīng)測(cè)序確認(rèn)的B型和C型HBV患者樣本各20份,結(jié)果顯示自建的液態(tài)芯片法與測(cè)序法結(jié)果的一致性高達(dá) 94%, 達(dá)到了預(yù)期的目的。值得指出的是,在24份測(cè)序結(jié)果為B型患者中有1份樣本檢測(cè)出B型和C型雙陽(yáng)性探針信號(hào);43份樣本測(cè)序法結(jié)果為C型的患者中有3份樣本檢測(cè)出B和C型雙陽(yáng)性探針信號(hào),我們認(rèn)為這4份樣本的患者可能是HBV B型和C型混合感染。KAO等[21]于2002年即報(bào)道了在日本獻(xiàn)血員中發(fā)現(xiàn)有HBV的B型和C型混合型感染的存在。對(duì)于HBV混合型感染的鑒定,采用型特異性引物擴(kuò)增的方法優(yōu)于測(cè)序方法,因?yàn)槿绻粚?duì)PCR擴(kuò)增產(chǎn)物進(jìn)行直接測(cè)序,通常只能檢測(cè)到優(yōu)勢(shì)毒株的基因型,載量低的毒株序列大多難以測(cè)出,除非我們對(duì)PCR產(chǎn)物先進(jìn)行克隆,再選取多個(gè)克隆進(jìn)行測(cè)序,這樣才有可能檢測(cè)到弱勢(shì)基因型的毒株,但采取這樣的技術(shù)需要更長(zhǎng)的檢測(cè)周期,在臨床常規(guī)檢測(cè)中并不可行。本研究設(shè)計(jì)的液態(tài)芯片法初步顯示能夠更敏感和特異地檢測(cè)出混合型感染,但還需對(duì)這4份樣本作進(jìn)一步驗(yàn)證,以確定本技術(shù)在鑒定HBV混合感染中的優(yōu)勢(shì)。

本研究建立的HBV液態(tài)芯片法有廣泛的應(yīng)用前景。實(shí)驗(yàn)所用的微球如用不同強(qiáng)度的二維熒光編碼,可以做到在同一個(gè)體系中同時(shí)檢測(cè)到100多個(gè)不同熒光編碼的微球群體,通過(guò)對(duì)每個(gè)微球群體標(biāo)記不同的核酸探針,就可以在同一個(gè)體系中同時(shí)檢測(cè)100多個(gè)分析物。因此,本方法開發(fā)成功的意義在于不僅能有效地檢測(cè)HBV和鑒定其亞型,為其他各種病原體的確定及其亞型鑒定、病原體多種耐藥基因分析等提供多重、簡(jiǎn)便、快速檢測(cè)的可能,甚至還能為一些復(fù)雜性疾病、遺傳性疾病多基因多位點(diǎn)實(shí)現(xiàn)多重平行檢測(cè)提供可行的方法。

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