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芍藥苷對糖尿病小鼠腎組織中TLR2信號通路的調(diào)節(jié)作用

2018-09-05 01:13:32段分分楊雯雯邵云俠吳永貴
關(guān)鍵詞:小鼠糖尿病

段分分,楊雯雯,邵云俠,王 坤,吳永貴

作為糖尿病患者臨床常見的一種微血管并發(fā)癥,糖尿病腎病(diabetic nephropathy,DN)已受到學(xué)者的廣泛關(guān)注。研究[1-2]表明巨噬細胞活化介導(dǎo)的腎內(nèi)炎癥在DN發(fā)生發(fā)展中起重要作用。Toll樣受體(Toll-like receptors,TLR)是模式識別受體,負責(zé)啟動炎癥反應(yīng)和免疫應(yīng)答,研究[3]顯示其家族成員 Toll受體 2 (Toll-like receptor 2,TLR2)參與了DN持續(xù)炎癥反應(yīng),加重DN腎組織損傷。因此,探討干擾或阻斷TLR2信號傳導(dǎo)通路的藥物,有助于防治DN的發(fā)展。芍藥苷(paeoniflorin, PF)是白芍總苷(total glucosides of paeony,TGP)的主要生物活性成分,研究[4]顯示PF可抑制糖尿病大鼠腎組織炎癥反應(yīng),減輕腎臟損害。該研究擬探討PF對DN發(fā)揮腎臟保護作用的機制與TLR2信號通路相關(guān),為DN的進一步診治提供新思路。

1 材料與方法

1.1實驗動物健康雄性8~10周齡C57BL/6J同窩野生型小鼠60只,18~20 g,TLR2-/-小鼠24只,均購自南京大學(xué)動物模式中心。進入安徽醫(yī)科大學(xué)SPF級動物房前檢疫1周,合格后進入飼養(yǎng)室。飼養(yǎng)室12 h交替照明、溫度(22±2)℃,相對濕度(55±5)%。

1.2藥品與主要試劑PF (南京廣潤生物制品公司);鏈脲佐菌素(streptozotocin,STZ)(美國Sigma公司);糖原染液D004(南京建成生物工程研究所);通用二步法試劑盒PV-9000、DAB辣根過氧化物酶顯色試劑盒(北京中杉金橋公司);Reverse Transcription System A3500(美國 Promega公司);兔抗CD68、TLR2、髓樣分化因子88(myeloid differentiation primary response gene 88,MyD88)、誘生型一氧化氮合酶(inducible nitric oxidesynthase,iNOS)抗體(美國Abcam公司);兔抗磷酸化核因子κB p65(phospho-nuclear factor kappa B p65,NF-κB p-p65)、核因子κB p65(nuclear factor kappa B p65,NF-κB p65)抗體(美國Cell Signaling公司);兔抗磷酸化白介素受體相關(guān)激酶-1(phospho-IL-1 receptor-associated kinase-1,p-IRAK-1)抗體(美國Santa Cruz公司);鼠抗β-actin、HRP羊抗鼠IgG、HRP羊抗兔IgG抗體(武漢三鷹公司);ECL試劑盒、TRIzol Reagent(美國Thermo Scientific公司);BCA試劑盒(上海碧云天公司)。

1.3方法

1.3.1動物模型建立及分組 C57BL/6J及TLR2-/-小鼠連續(xù)5 d腹腔注射STZ 50 mg/kg,一周后使用血糖儀測小鼠尾靜脈的隨機血糖,以血糖大于16.7 mmol/L者作為糖尿病模型,同時對照組給予同等劑量的枸櫞酸溶液。

動物分組:C57BL/6J對照組(Control);模型組(DM);PF干預(yù)低劑量組[STZ+PF 25 mg/(kg·d)];PF干預(yù)中劑量組[STZ+PF 50 mg/(kg·d)];PF干預(yù)高劑量組[STZ+PF 100 mg/(kg·d)];TLR2-/-對照組(TLR2-/-);TLR2-/-模型組(TLR2-/-+STZ)。每組各12只。PF采取腹腔注射,每天一次至12周。其余組給予同等劑量的生理鹽水。

1.3.2實驗標(biāo)本收集 小鼠標(biāo)準(zhǔn)喂養(yǎng),實驗12周末將各組小鼠取出后置于代謝籠中,收集24 h的尿液,留作24 h尿白蛋白排泄率(urinary albumin excretion rate,UAER)測定。麻醉后稱體重并記錄,眼球取血,分離血清,用于測定血糖。取腎后去腎包膜及腎周脂肪,稱重并記錄腎重,一側(cè)腎臟放至凍存管中,置于液氮,留作后續(xù)Western blot及RT-PCR檢測。另側(cè)腎臟經(jīng)4%多聚甲醛固定,石蠟包埋用于PAS染色及免疫組化檢測。

1.3.3病理形態(tài)學(xué)觀察 PAS染色光學(xué)顯微鏡下隨機選取10個視野的腎小球和腎小管間質(zhì),進行腎小球系膜擴張指數(shù)和腎小管間質(zhì)損傷指數(shù)評分。腎小球評分:正常腎小球為0,系膜基質(zhì)增生面積<25%為1,25%~50%為2,51%~75%為3,>75%為4。腎小管間質(zhì)損傷評分標(biāo)準(zhǔn):正常腎小管間質(zhì)為0,腎小管萎縮、擴張伴管型形成、間質(zhì)炎性反應(yīng)與纖維化面積<25%為1,25%~50%為2,>50%為3。腎小球系膜擴張指數(shù)和腎小管間質(zhì)損傷指數(shù)評分即為切片組織評分的平均值。

1.3.4免疫組織化學(xué) 石蠟切片常規(guī)脫蠟處理,流水沖洗1 min,滴加3% H2O2阻斷內(nèi)源性過氧化物酶活性,切片置于枸櫞酸鈉溶液液中微波下行抗原修復(fù),山羊血清封閉10 min以消除非特異染色,PBS洗滌后,分別滴加一抗CD68(1 ∶50)、TLR2(1 ∶250)、NF-κB p65(1 ∶600),同時滴加PBS溶液于陰性對照中,4 ℃封閉過夜,滴加PV9000試劑1室溫孵育20 min,隨后滴加PV9000試劑2室溫孵育30 min,隨后滴加DAB顯色液。在顯微鏡下控制切片的著色時間,隨后復(fù)染、脫水、透明、封片。光學(xué)顯微鏡下每組切片隨機選取10個視野采集圖片,使用圖像分析軟件Image-Pro Plus 6.0進行半定量分析,測定各組腎小球和腎小管間質(zhì)中的CD68陽性細胞數(shù)目,以及TLR2、NF-κB p65的陽性面積百分比,統(tǒng)計比較各組的平均值。

1.3.5RT-PCR法檢測各組腎組織的mRNA的表達 采用TRIzon法提取各組腎組織總的RNA,并檢測RNA純度,以RNA為模板反轉(zhuǎn)錄成 cDNA。RT-PCR采用SYBR Green法,GAPDH作為校正內(nèi)參,用2-ΔΔCt法分析基因的相對表達。引物均由上海生工生物工程公司合成,引物包括腫瘤壞死因子α(tumor necrosis factor-α,TNF-α)、白細胞介素1β(interleukin-1β,IL-1β)、單核細胞趨化蛋白-1(monocyte chemoattractant protein 1,MCP-1)。引物序列見表1。

表1 各引物序列

1.3.6Western blot法檢測各組腎組織蛋白的表達 將各組腎組織取出適量置于冰上裂解,提取總蛋白。取40 μg蛋白樣品上樣,經(jīng)電泳、轉(zhuǎn)膜、牛奶封閉,加一抗TLR2(1 ∶1 000)、MyD88(1 ∶250)、p-IRAK-1(1 ∶200)、IRF3(1 ∶1 000)、NF-κB p-p65(1 ∶1 000)、NF-κB p65(1 ∶1 000)、iNOS(1 ∶1 000)、β-actin(1 ∶35 000) ,4 ℃孵育過夜,加入相應(yīng)二抗(1 ∶8 000),室溫孵育45 min,ECL發(fā)光試劑盒顯影、成像。用Image J軟件對Western blot條帶進行半定量分析。

2 結(jié)果

2.1各組小鼠一般指標(biāo)變化12周末DM小鼠血糖、腎重/體重、UAER明顯高于Control及TLR2-/-組小鼠(P<0.05,P<0.01);與DM組比較,STZ+PF[25、50、100 mg/(kg·d)]及TLR2-/-+STZ組小鼠血糖差異無統(tǒng)計學(xué)意義(P>0.05),但STZ+PF[25、50、100 mg/(kg·d)]及TLR2-/-+STZ組小鼠體重/腎重、UAER 水平明顯減低(P<0.05,P<0.01)。見表2。

2.2腎組織病理學(xué)改變光鏡下觀察顯示,與Control組小鼠比較,TLR2-/-組小鼠PAS染色差異無統(tǒng)計學(xué)意義,DM組系膜擴張指數(shù)及腎小管間質(zhì)損傷指數(shù)評分明顯高于Control組(P<0.01);與DM組比較,STZ+PF[25、50、100 mg/(kg·d)]及TLR2-/-+STZ組小鼠腎組織病理改變明顯減輕,系膜擴張指數(shù)(F=238.6,P<0.01)及腎小管間質(zhì)損傷指數(shù)評分顯著降低(F=251.5,P<0.01)。見圖1。

2.3腎組織CD68、TLR2及NF-κBp65免疫組化改變免疫組化結(jié)果顯示,Control及TLR2-/-組小鼠的腎小球及腎小管間質(zhì)中CD68陽性巨噬細胞浸潤較少,差異無統(tǒng)計學(xué)意義(P>0.05),DM組腎小球及腎小管間質(zhì)中CD68陽性細胞浸潤較Control組明顯升高(P<0.01),STZ+PF[25、50、100 mg/(kg·d)]與DM組比較,CD68表達明顯減低,差異有統(tǒng)計學(xué)意義(F腎小球=540.8、F腎小管間質(zhì)=89.36,P<0.01),見圖2。TLR2主要表達于腎小管上皮細胞胞質(zhì)中,Control組TLR2僅少量表達,TLR2-/-組幾乎不表達,而DM組腎小管上皮細胞胞質(zhì)中TLR2表達較Control明顯增加(P<0.01),STZ+PF[25、50、100 mg/(kg·d)]中上調(diào)的TLR2表達明顯受到抑制(F腎小管間質(zhì)=507.8,P<0.01),各組小鼠腎小球 TLR2表達差異無統(tǒng)計學(xué)意義(F腎小球=15.58,P>0.05),見圖3。Control及TLR2-/-組腎組織僅有少量NF-κB p65表達,DM組腎小球及腎小管間質(zhì)中NF-κB p65表達明顯高于Control(P<0.01),STZ+PF[25、50、100 mg/(kg·d)]與DM組相比,NF-κB p65表達降低,差異有統(tǒng)計學(xué)意義(F腎小球=827.4,F(xiàn)腎小管間質(zhì)=725.6,P<0.01),見圖4。

圖1 各組小鼠腎組織病理學(xué)改變 PAS×400

A:腎小球系膜擴張指數(shù);B:腎小管間質(zhì)損傷指數(shù);1:Control組;2:DM組;3:STZ+PF 25 mg/(kg·d)組;4:STZ+PF 50 mg/(kg·d)組;5:STZ+PF 100 mg/(kg·d)組;6:TLR2-/-組;7:TLR2-/-+STZ組;與Control組比較:**P<0.01;與DM組比較:##P<0.01

圖2 各組小鼠腎組織CD68的表達 PV二步法×400

A:腎小球CD68陽性細胞數(shù);B:腎小管間質(zhì)CD68陽性細胞數(shù);1:Control組;2:DM組;3:STZ+PF 25 mg/(kg·d)組;4:STZ+PF 50 mg/(kg·d)組;5:STZ+PF 100 mg/(kg·d)組;6:TLR2-/-組;7:TLR2-/-+STZ組;與Control組比較:**P<0.01;與DM組比較:##P<0.01

表2 各組小鼠一般指標(biāo)變化

與Control組比較:*P<0.05,**P<0.01;與DM組比較:#P<0.05,##P<0.01

2.4各組小鼠腎組織TNF-α、IL-1β和MCP-1的mRNA表達與Control組比較,DM組小鼠腎組織中TNF-α、IL-1β和MCP-1的mRNA表達明顯上調(diào)(P<0.01),TLR2-/-組小鼠上述指標(biāo)表達則明顯下降(P<0.05,P<0.01);與DM組比較,STZ+PF[25、50、100 mg/(kg·d)]及TLR2-/-+STZ組小鼠TNF-α、IL-1β和MCP-1表達均明顯下降(P<0.01)。各指標(biāo)組間差異具有統(tǒng)計學(xué)意義(FTNF-α=237.7、FIL-1β=136.6、FMCP-1=63.07,P<0.01)。見圖5。

圖3 各組小鼠腎組織TLR2的表達 PV二步法×400

A:腎小球TLR2陽性面積百分比;B:腎小管間質(zhì)TLR2陽性面積百分比;1:Control組;2:DM組;3:STZ+PF 25 mg/(kg·d)組;4:STZ+PF 50 mg/(kg·d)組;5:STZ+PF 100 mg/(kg·d)組;6:TLR2-/-組;7:TLR2-/-+STZ組;與Control組比較:**P<0.01;與DM組比較:##P<0.01

2.5各組小鼠腎組織TLR2、MyD88、p-IRAK-1、NF-κBp-p65、NF-κBp65、iNOS蛋白表達Western blot結(jié)果顯示,與Control組比較,DM組小鼠TLR2、MyD88、p-IRAK-1、NF-κB p-p65、NF-κB p65、iNOS的蛋白表達明顯上調(diào)(P<0.01),TLR2-/-組小鼠上述指標(biāo)蛋白表達則明顯下降(P<0.01);與DM比較,STZ+PF[25、50、100 mg/(kg·d)]及TLR2-/-+STZ組小鼠TLR2、MyD88、p-IRAK-1、NF-κB p-p65、NF-κB p65、iNOS的蛋白表達受到抑制(P<0.05,P<0.01)。各指標(biāo)組間差異具有統(tǒng)計學(xué)意義(FTLR2=168.1、FMyD88=123.6、Fp-IRAK-1=21.11、FNF-κB p-p65=880.3、FNF-κB p65=92.93、FiNOS=23.17,P<0.05,P<0.01)。見圖6~7。

3 討論

DN作為一種長期并發(fā)癥,預(yù)防其進展仍然是一個重要挑戰(zhàn)。蛋白尿是腎臟疾病進展的主要危險因素[5-6],測定UAER可評價糖尿病治療效果[5,7],其值降低代表明顯的腎臟保護作用。本研究結(jié)果表明PF干預(yù)及TLR2基因敲除均可降低糖尿病小鼠UAER,減輕腎臟組織病理損傷,提示了PF及TLR2基因敲除對糖尿病小鼠腎臟有保護作用。

TLR2信號通路與DN腎組織持續(xù)的微炎癥狀態(tài)有關(guān)。TLR2是Toll樣受體家族一員,是配體激活的膜結(jié)合受體,其可通過MyD88依賴途徑激活NF-κB入核,導(dǎo)致TNF-α、MCP-1等炎性細胞因子上調(diào),促進炎癥反應(yīng)[3]。Li et al[8]研究表明在STZ誘導(dǎo)的糖尿病小鼠腹腔注射TLR2激動劑Pam3CysSK4可上調(diào)TLR2-MyD88-NF-κB的表達,增加MCP-1的分泌,加重腎臟損傷。本研究DM組小鼠腎組織中TLR2、NF-κB p65信號被激活,促炎因子TNF-α、IL-1β和MCP-1表達增加,TLR2、MyD88、p-IRAK-1、NF-κB p-p65和NF-κB p65的蛋白表達顯著上調(diào),而敲除TLR2基因則明顯減弱了上述情況[9]。同時,本研究DM組小鼠腎組織觀察到有大量巨噬細胞(CD68陽性細胞)浸潤,且巨噬細胞活化以M1型為主,其標(biāo)志物iNOS表達上調(diào)。

圖4 各組小鼠腎組織NF-κB p65的表達 PV二步法×400

A:腎小球NF-κB p65陽性面積百分比;B:腎小管間質(zhì)NF-κB p65陽性面積百分比;1:Control組;2:DM組;3:STZ+PF 25 mg/(kg·d)組;4:STZ+PF 50 mg/(kg·d)組;5:STZ+PF 100 mg/(kg·d)組;6:TLR2-/-組;7:TLR2-/-+STZ組;與Control組比較:**P<0.01;與DM組比較:##P<0.01

圖5 各組小鼠腎組織TNF-α、IL-1β和MCP-1的mRNA表達

1:Control組;2:DM組;3:STZ+PF 25 mg/(kg·d)組;4:STZ+PF 50 mg/(kg·d)組;5:STZ+PF 100 mg/(kg·d)組;6:TLR2-/-組;7:TLR2-/-+STZ組;與Control組比較:*P<0.05,**P<0.01;與DM組比較:##P<0.01

圖6 各組小鼠腎組織TLR2、MyD88、p-IRAK-1、iNOS的蛋白表達

1:Control組;2:DM組;3:STZ+PF 25 mg/(kg·d)組;4:STZ+PF 50 mg/(kg·d)組;5:STZ+PF 100 mg/(kg·d)組;6:TLR2-/-組;7:TLR2-/-+STZ組;與Control組比較:**P<0.01;與DM組比較:#P<0.05,##P<0.01

圖7 各組小鼠腎組織NF-κB p-p65、NF-κB p65的蛋白表達

A:NF-κB p-p65; B:NF-κB p65;1:Control組;2:DM組;3:STZ+PF 25 mg/(kg·d)組;4:STZ+PF 50 mg/(kg·d)組;5:STZ+PF 100 mg/(kg·d)組;6:TLR2-/-組;7:TLR2-/-+STZ組;與Control組比較:**P<0.01;與DM組比較:##P<0.01

而敲除TLR2基因后腎組織中棕染的CD68明顯減少,iNOS表達受到抑制。眾所周知,DN的發(fā)展與炎癥關(guān)系密切,其中巨噬細胞浸潤是DN特征性表現(xiàn)之一[2,10]。研究[9-10]顯示DN腎組織中浸潤的巨噬細胞主要是M1型,M1型巨噬細胞能產(chǎn)生大量炎性細胞因子,促進組織損傷。Shao et al[11]研究顯示TLR2-/-可減輕由高糖誘導(dǎo)的骨髓來源巨噬細胞向M1型活化及炎癥因子的產(chǎn)生。由此證明TLR2可通過MyD88依賴性途徑調(diào)節(jié)巨噬細胞聚集和激活。采取有效針對性地抑制DN中TLR2的過度表達可阻礙DN的發(fā)展。 TGP目前已經(jīng)廣泛應(yīng)用于各種疾病如紅斑狼瘡、類風(fēng)濕關(guān)節(jié)炎的治療,PF是TGP的主要活性成分[12]。研究[13-14]表明TGP可抑制腎小球和腎小管間質(zhì)巨噬細胞TLR2和TLR4的表達,TGP有明顯的腎臟保護作用。目前PF對DN保護作用的具體機制尚不明確。Shao et al[11]采用體外研究發(fā)現(xiàn)PF可通過TLR2信號通路抑制高糖誘導(dǎo)的巨噬細胞活化,減輕TNF-α、IL-1β和MCP-1的表達。本研究PF干預(yù)顯示出與TLR2基因敲除相同的治療效果,PF干預(yù)可降低24 h UAER,減輕糖尿病小鼠腎臟損傷,阻斷腎組織中NF-κB p65活化和巨噬細胞募集,抑制促炎因子TNF-α、IL-1β和MCP-1的表達,與Fu et al[4]研究結(jié)果相一致。同時,PF可以抑制糖尿病小鼠腎組織中TLR2水平的升高,降低下游通路MyD88、p-IRAK-1的表達。說明PF可能部分通過抑制TLR2信號通路而發(fā)揮對DN的腎臟保護作用。PF對其他Toll受體信號通路的作用有待進一步研究。

綜上所述,PF可通過抑制糖尿病小鼠TLR2的表達阻止巨噬細胞活化,減輕炎癥反應(yīng)從而發(fā)揮腎臟保護作用,為DN患者PF治療提供了支持性證據(jù)。

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