紫花苜蓿根瘤菌分子分型和生物型劃分研究

，,,,*，

(1.甘肅農業大學草業學院，甘肅 蘭州 730070；2.草業生態系統教育部重點實驗室，甘肅 蘭州 730070；3.甘肅省草業工程實驗室，甘肅 蘭州 730070；4.中-美草地畜牧業可持續研究中心，甘肅 蘭州 730070)

紫花苜蓿(Medicagosativa)是重要的豆科牧草，具有很強的環境適應能力和豐富的粗蛋白含量[1]。根瘤菌是有益的土壤細菌，能夠與苜蓿共生結瘤固氮，促進苜蓿生長[2-4]和增強土壤肥力[5]。根瘤菌亦能夠在植物組織內定殖，增強植株的生物[6]和非生物[7]抗性。目前根瘤菌的分類傾向于在種水平上進行[8]，常用的微生物分型技術又在相對分辨率、時間和成本上存在差異[9]，重復性、再現性低。研究發現持家基因(housekeeping gene)在各個發育階段所有組織中均恒定表達，是維持細胞基本生命活動所必需的一類基因。持家基因多位點序列分型(multilocus sequence typing，MLST)通過直接比較核苷酸序列鑒定了至少7個位點的等位基因[10]，相比微生物常用分型技術有重大改善。Berkum等[11]應用MLST技術對土壤根瘤菌種群基因結構進行分析，鑒定出與紫花苜蓿結瘤共生的根瘤菌屬于Sinorhizobiummeliloti和Sinorhizobiummedicae兩個種。張延明[12]采用此方法將309株大豆根瘤菌株分為10個基因種。MLST技術能夠很好地鑒定根瘤菌屬內不同種，然而對同種內根瘤菌株進行劃分的方法存在差異。Martinez[13]將一組可以根據生理或生化特性區別于同一物種其他菌株的細菌菌株劃分為生物變體(biovars)，又根據植物宿主的共生能力和宿主范圍的差異將細菌劃分為共生變體(symbiovars)。關于生物變體和共生變體的劃分在Rhizobium[14]、Bradyrhizobium[15]、Sinorhizobium[16-18]和Mesorhizobium[19]根瘤菌中均有報道。根瘤菌生物型是指同一種內的一組根瘤菌，它們可以根據表型和在苜蓿品種上的特定共生模式而區別于其他菌株。生物型是在種內苜蓿品種水平上而不是種間寄主植物范圍水平上，根據表型生理生化特征和共生基因序列信息對根瘤菌進行的更為深入的鑒定，是表型變體和共生變體的結合。屬于同一物種的菌株表型是有差異的，它們可能具有與共生相關的相同等位基因，但會表現出不同的共生效應[20-21]，這為同一種內基因差異的比較以及根瘤菌的分型奠定了基礎。因此在分子生物學分型的基礎上，可以根據表型差異和在苜蓿品種上的共生模型將同種的根瘤菌株劃分為生物型。近年來根瘤菌分型主要以表型生理生化特征或共生能力為依據，將這兩個因素結合對根瘤菌種內生物型的劃分鮮見報道。本研究采用MLST技術對根瘤菌分型定種，從表型和與苜蓿品種的共生效應兩個角度對種內根瘤菌進行生物型劃分，為準確判斷與苜蓿品種匹配的根瘤菌資源多樣性以及為苜蓿與根瘤菌高效共生奠定基礎。

1 材料與方法

1.1 試驗地概況

采樣時間為2014年5月和8月，地點為甘肅省白銀市會寧縣會師鎮牧草試驗基地、武威市涼州區黃羊鎮牧草試驗站和甘肅農業大學蘭州牧草試驗站，樣地基本概況如表1所示。

1.2 苜蓿品種

5個供試苜蓿品種均為紫花苜蓿，已生長2年，分別為國內選育品種甘農3號(M.sativacv. Gannong No.3)和甘農9號(M.sativacv. Gannong No.9)、地方品種隴中(M.sativacv. Longzhong)和清水(M.sativacv. Qingshui)、引進美國品種WL168HQ(M.sativacv. WL168HQ)，見表1。

表1 樣地概況Table 1 Geographical origin, ecological characteristics, and properties of sampled soils

1.3 培養基和營養液

根瘤菌株培養采用YMA(yeast mannitol agar)培養基[22]，活化采用TY(tryptone yeast)培養基，營養液采用Hoagland有氮和無氮營養液[23]。

1.4 菌株分離及純化

于2014年5月(初花期)在每個苜蓿品種樣地內隨機取5株植株，攜帶10 cm內根際土壤連根挖起，抖落根際土壤并取樣；田間土壤取植株周圍50 cm、深度20 cm內的土壤；8月(成熟期)田間收集種子，并清選。分別裝于自封袋，標記，冰桶冷藏條件下帶回實驗室。清洗植株，晾干表面明水后用無菌剪刀將植株分為花、莖、葉、根瘤、根表皮和根中柱；將種子及以上組織各稱取1 g置于無菌三角瓶內，加碘伏(0.45%～0.55%)溶液震蕩滅菌3 min[24]，無菌水沖洗5次，加2 mL無菌水在研缽中研磨均勻[24]。分別稱取10 g根際土壤和田間土壤置于無菌三角瓶內，加入90 mL滅菌生理鹽水，充分震蕩。將組織研磨勻漿和土壤懸浮液轉入2 mL離心管離心(4000 r·min-1，10 min)，用無菌水依次配置成10-3、10-4、10-5稀釋液，取0.2 mL稀釋平板法涂抹至含剛果紅的YMA培養基上，28 ℃培養48 h，進行內生菌株分離和純化，每個處理4個重復。純化后的菌株經過形態特征和革蘭氏染色檢驗，于4 ℃保存于YMA培養基。

1.5 DNA提取和PCR擴增

用上海生工細菌DNA提取試劑盒(SK8256)提取細菌基因組DNA，方法參見試劑盒說明書。對細菌的16S rRNA以及atpD、glnII和recA持家基因片段進行PCR擴增。擴增引物參考Weisburg等[25]和Vinuesa等[26]的文獻。所有引物均由上海生工生物公司合成，擴增引物和PCR條件見表2。

表 2 16S rRNA, atpD, glnII和recA基因PCR擴增及測序引物Table 2 Primers used for amplification and sequencing of 16S rRNA, atpD, glnII and recA genes

1.6 序列測定分析

供試菌株PCR擴增產物委托上海生工生物公司進行測序。通過EzBioCloud鑒定服務網站 (https://www.ezbiocloud.net/)[27]獲得與目的序列同源性最高的模式菌株16S rRNA序列；通過NCBI數據庫 (www.ncbi.nlm.nih.gov/assembly)選擇與目的序列同源性最高的模式菌株atpD、glnII和recA序列。用MEGA 6.0軟件中的ClustalW進行序列相似性比對[28]，選用Neighbor-joining法(鄰接法)進行UPGMA(非加權組平均法 unweighted pair-group method with arithmetic means)分析生成系統發育樹，發育樹用Bootstrap法(自展法，1000次重復)檢驗。

1.7 表型特征測定及數值分類分析

以YMA固體平板培養基為基礎培養基，對根瘤菌進行唯一碳氮源、抗逆性以及生理生化特性測定。唯一碳源測定項目包括蘋果酸、肌醇、肌酸、甘露醇、蔗糖、葡萄糖、延胡索酸、琥珀酸、D-果糖和乳糖；唯一氮源包括L-色氨酸、甘氨酸、精氨酸、L-組氨酸和苯丙氨酸；染料抗性測定包括溴百里酚藍、甲基紅、甲基綠、溴酚藍、亞甲基紅、中性紅、亞硝酸鈉、孔雀石綠、溴甲基綠和剛果紅；唯一碳氮源利用和染料抗性測定設定濃度為1%；抗生素敏感性測定包括紅霉素、氯霉素、卡納霉素、氨芐霉素、新霉素、鏈霉素和慶大霉素，設置濃度梯度為5、50、100和300 μg·mL-1；NaCl的濃度梯度為2%、4%和6%，耐酸堿性測定pH為5、9和11，生長溫度包括8 ℃、37 ℃和40 ℃。生理生化試驗包括淀粉水解實驗、明膠水解實驗、產硫化氫實驗、VP實驗、吲哚實驗、接觸酶反應、檸檬酸鹽實驗、3-酮基乳糖反應和BTB產酸產堿反應。菌株接種均設有3個陽性重復和1個陰性對照，除生長溫度測定實驗在5～7 d后記錄菌體生長狀況外，其余所有菌株接種后均于28 ℃恒溫培養箱中培養，24～48 h后記錄菌體生長狀況[29]。所有滅菌均采用121 ℃、26 min條件。

對根瘤菌的表型特征進行數值分類分析。將測定的表型性狀結果按陽性記為“1”，陰性記為“0”進行編碼后，輸入計算機。剔除全同性狀，利用NTSYS-PC 2.0 軟件，采用平均連鎖法(UPGMA)生成聚類樹狀圖。

1.8 共生固氮能力測定

種子處理、培苗以及根瘤菌菌液的制備方法參考李劍鋒等[30]的文獻。在幼苗生長第15天時，在無菌條件下用移液槍將制備好的菌液加入幼苗根部，每管4 mL，加棉塞無菌培養。以不含根瘤菌的菌液為對照，每個菌株4個試管作為重復。培養第22和30天，在無菌條件下澆灌Hoagland無氮營養液，30 d后去掉棉塞，然后每隔5 d澆灌1次Hoagland無氮營養液[27]，每管4 mL。

接種效果測定：接種45 d后，收獲苜蓿植株并清洗干凈，用濾紙吸干水分。每管隨機選取3株，測算單株根瘤數、根瘤直徑[28]、固氮酶活性[31]、根瘤等級[32]、單株有效根瘤重、株高、單株葉片數、地上鮮重、地上干重、葉綠素含量[33]、粗蛋白含量[32]、根長、地下鮮重和地下干重[34]。

1.9 數據分析

采用SPSS 19.0軟件進行統計分析，用平均值和標準誤表示測定結果，分別對不同菌株接種處理進行單因素方差分析，并用Duncan法對數據進行多重比較[35]；采用Excel 2007制表；用SPSS 19.0進行主成分分析[36]；Shannon多樣性指數計算方法參考柯春亮等[37]的文獻。

2 結果與分析

2.1 16S rRNA測序分析

對所有細菌的16S rRNA基因進行部分序列測定，結果表明，78個純化的菌株中，僅20株菌屬于根瘤菌屬(圖1)。其中內生菌株分別分離自根表皮(2)、根瘤(5)、根中柱(3)、莖(1)和種子(1)。8株非內生根瘤菌株來自根際土壤(3)和田間土壤(5)。如圖1所示，所有菌株均與模式菌株RhizobiumradiobacterATCC 19358T聚在一起，序列相似性為97.15%～98.72%。

2.2 根瘤菌atpD、glnII和recA基因以及合并序列MLST分析

對20個菌株的持家基因atpD、glnII和recA進行測序分析，結果如圖2所示。基于atpD(圖2a)、glnII(圖2b)和recA(圖2c)系統發育樹的拓撲結構表明菌株的系統發育地位不穩定，雖然所有菌株在3個系統發育樹中均形成8個分支， 但是菌株的進化地位存在差異。單個的持家基因系統發育分析不足以準確地對供試菌株進行分類。因此， 對于持家基因合并序列進行了MLST分析，建立了20個菌株和參比菌株的系統發育樹。 如圖3和表3所示，菌株G3T1、G3P2、WLG2、WLL3、WLJ3、WLL2、WLL4、LT2、WLL5、WTT4、WLN3和LP4與模式菌株R.radiobacterCCBAU 75229T聚在一起；菌株G9TT1、G9TT5、G9TT2和LT3與模式菌株R.radiobacterCCBAU 75204T聚在一起；菌株G9TT4、G3L1、G3G1和G3G2分別與模式菌株R.radiobacterCCBAU 75221T、R.radiobacterHAMBI 1814T、R.radiobacterCCBAU 73262T和R.radiobacterLMG 140T聚在一起。所有菌株序列相似性≥97%。經過持家基因合并序列MLST分析，20個菌株被定種為R.radiobacter(表3)。

圖1 16S rRNA基因系統發育樹Fig.1 Phylogenetic tree based on 16S rRNA gene sequences

圖2 持家基因atpD、glnII和recA系統發育樹Fig.2 Phylogenetic tree based on atpD, glnII, and recA gene sequences

續圖2 持家基因atpD、glnII和recA系統發育樹Continued Fig.2 Phylogenetic tree based on atpD, glnII, and recA gene sequences

圖3 持家基因atpD、glnII和recA合并序列系統發育樹Fig.3 Phylogenetic tree established by MLST from concatenated sequences of atpD, glnII, and recA

菌株Strain name組織和部位Plant part involved系統發育關系最近種Phylogenetically closest species相似性值Similarity (%)基因種名稱Bacterial speciesG3G1中柱 SteleR. radiobacter CCBAU 73262T98放射根瘤菌R. radiobacterG3G2中柱 SteleR. radiobacter LMG 140T98G3L1根瘤 NoduleR. radiobacter HAMBI 1814T97G3P2, LP4表皮 EpidermisR. radiobacter CCBAU 75229T99G3T1, LT2根際土壤 Rhizosphere soilR. radiobacter CCBAU 75229T98G9TT1, G9TT2, G9TT5田間土壤 Field soilR. radiobacter CCBAU 75204T97G9TT4田間土壤 Field soilR. radiobacter CCBAU 75221T97LT3根際土壤 Rhizosphere soilR. radiobacter CCBAU 75204T99WLG2中柱 SteleR. radiobacter CCBAU 75229T99WLJ3莖 StemR. radiobacter CCBAU 75229T99WLL2, WLL3, WLL4, WLL5根瘤 NoduleR. radiobacter CCBAU 75229T99WLN3種子 SeedR. radiobacter CCBAU 75229T99WTT4田間土壤 Field soilR. radiobacter CCBAU 75229T99

注：相似性值和菌株種名由合并序列系統發育樹決定(參考圖3)。

Note: Similarity and bacterial species was determined based on the position of a given strain in the phylogenetic tree (reference Fig.3).

2.3 表型特征數值分類分析

所有根瘤菌在YMA培養基上呈圓形、光滑、乳白色透明狀，有黏質胞外多糖。菌體短桿狀，革蘭氏染色反應陰性。對紫花苜蓿R.radiobacter菌株進行72項生理生化性狀測定，其中29項為全同性狀，對存在差異的43項性狀以UPGMA聚類得到樹狀圖譜，如圖4所示。在78%的相似性水平上，所有菌株聚為7個群。群ⅰ包括7個菌株(G3G1、WLJ3、WLL2、G3L1、G9TT4、G9TT5、G3T1)，群ⅳ包括6個菌株(G9TT1、G9TT2、WLG2、WTT4、LT2、LT3)，群ⅱ(G3G2、LP4)和群ⅶ(G3P2、WLL5)各包含2個菌株。群ⅲ、ⅴ和ⅵ分別包含菌株WLL4、WLN3和WLL3。43項差異性狀的鑒別特征如表4所示。群ⅰ、ⅱ、ⅳ和ⅶ的菌株在唯一碳氮源利用、染料抗性、耐溫性、耐鹽性、抗生素耐性和生理生化反應方面表現均有不同，Shannon多樣性指數(H)分別為5.41、2.43、4.08和2.77，菌株表型多樣性豐富。

圖4 20個R. radiobacter菌株表型數值分類聚類圖Fig.4 Numerical taxonomy dendrogram based on the phenotypic features of 20 R. radiobacter isolates

2.4 主成分分析

基于14個變量的主成分分析表明，在標準化變量中第一主成分解釋了總變異的54.97%，第二主成分解釋了16.65%的標準方差。如圖5所示，在第一主成分上，地上干重(shoot dry weight, SDW)對苜蓿和根瘤菌共生效率的貢獻率最大。因此選擇地上干重進行多重比較，分析菌株的共生效率差異。

2.5 共生效應分析

不同根瘤菌株與苜蓿品種互作，共生效果存在差異(表5)。菌株LP4接種甘農3號、菌株G9TT1、G9TT2、G9TT4和G9TT5接種甘農9號、菌株LT2接種隴中、菌株G3P2和G3T1接種清水苜蓿，植株地上干重分別顯著高于未接種處理CK(P<0.05)。所有菌株接種WL168HQ苜蓿，地上干重與CK差異不顯著(P>0.05)。為了比較根瘤菌株在各苜蓿品種上的共生效果，當接種根瘤菌的苜蓿品種地上干重顯著高于未接種處理CK時，標記根瘤菌與苜蓿品種共生效應為A(P<0.05)，與CK差異不顯著時標記為B(P>0.05)，顯著低于CK時標記為C(P<0.05)。以苜蓿品種為甘農3號、甘農9號、隴中、清水和WL168HQ的順序，將各根瘤菌株的共生效應結合，得到根瘤菌株共生模式，如表5所示。所有R.radiobacter菌株在5個苜蓿品種上存在6種共生模式，分別為BBBBB(9)、BBBAB(4)、BABBB(4)、ABBBB(1)、BBABB(1)和BBAAB(1)。每個共生模式代表根瘤菌株與苜蓿品種之間的一種親屬關系。

2.6 根瘤菌生物分型

具有相同表型，并在苜蓿品種上表現相同共生效應的根瘤菌株代表一種生物型。本研究選擇了5個苜蓿品種在同一物種內根據表型和共生模式進行根瘤菌生物型劃分。結果表明20個R.radiobacter菌株被劃分為14種生物型，分離自各苜蓿品種的菌株具有豐富的多樣性(表6)。來自甘農3號苜蓿的菌株被劃分為生物型Ⅰ(G3G1和G3L1)、Ⅱ(G3G2)、Ⅲ(G3P2)和Ⅳ(G3T1)。來自甘農9號苜蓿的菌株被劃分為生物型Ⅴ(G9TT1和G9TT2)和Ⅵ(G9TT4和G9TT5)。來自隴中苜蓿的菌株被劃分為生物型Ⅶ(LP4)、Ⅷ(LT2)和Ⅸ(LT3)。來自WL168HQ苜蓿的菌株被劃分為生物型Ⅰ(WLJ3和WLL2)、Ⅸ(WLG2)、Ⅹ(WLL3)、Ⅺ(WLL4)、Ⅻ(WLL5)、ⅩⅢ(WLN3)和ⅩⅣ(WTT4)。WL168HQ、甘農3號和隴中苜蓿內生物型多樣性豐富，Shannon多樣性指數H分別為2.03、1.39和1.10，甘農9號和清水苜蓿多樣性單一，H為0。

表4 數值分類特征表Table 4 Characteristics distinguishing tested isolates

續表4 Continued Table 4

注：a由表型聚類分析得到的群(參考圖4)；b每個表型聚類群眾所包含的菌株數量；c供試所有碳源、氮源和染料的濃度均為1%；d+ 菌株反應陽性, - 菌株反應陰性；e反應陽性的菌株數量；fA、B、C、D分別表示抗生素濃度為5、50、100和300 μg·mL-1。

Note:aThe clusters obtained from the numerical analysis based on phenotypic properties (reference Fig.4);bNumbers of strains in each cluster;cThe concentrations of tested carbon sources, nitrogen sources and dyes are 1%;d+ Strains were positive, - strains were negative;eNumber of reactions in which strains were positive;fA, B, C and D mean the concentration of antibiotics is 5, 50, 100 and 300 μg·mL-1, respectively.

3 討論

圖5 基于14個變量的主成分分析Fig.5 Principal component analysis of 14 variables NN(單株結瘤數)，ENW(有效根瘤重)，ND(根瘤直徑)，NG(根瘤等級)，NNC(根瘤固氮酶活性)，LN(單株葉片數)，SH(株高)，RL(根長)，SFW(地上鮮重)，RFW(地下鮮重)，SDW(地上干重)，RDW(地下干重)，CC(葉綠素含量)和CPC(粗蛋白含量)。NN (nodule number), ENW (effective nodule weight), ND (nodule diameter), NG (nodule grade), NNC (nodule nitrogenase activity), LN (leaf number), SH (shoot height), RL (root length), SFW (shoot fresh weight), RFW (root fresh weight), SDW (shoot dry weight), RDW (root dry weight), CC (chlorophyll content) and CPC (crude protein content).

本研究從甘肅省3個栽培區域5個紫花苜蓿品種的不同部位分離得到78株細菌，經16S rRNA基因部分序列測定有20株菌屬于Rhizobium。持家基因MLST分析為種內根瘤菌株系統發育地位差異研究提供了依據，在分子分型以及新種的鑒定方面應用廣泛[38-39]。已有研究應用此方法將紫花苜蓿根瘤菌鑒定為Sinorhizobiumfredii、S.xinjiangense和S.medicae[29]以及R.leguminosarum[40]，而本研究持家基因合并序列MLST分析表明20株根瘤菌屬于R.radiobacter。這進一步證實了16S rRNA序列分析結果，也更詳細地闡明了供試菌株的系統發育地位。與合并序列系統發育樹狀結構相比(6個分支)，在由atpD、glnII和recA基因建立的系統發育樹上，菌株分散在8個不同的進化分支中。與recA和合并序列MLST系統發育樹不同，在atpD系統發育樹中，菌株WTT4和WLL5與其余菌株系統發育關系較遠，與模式菌株R.radiobacterCCBAU 73262T形成獨立的分支。同樣的，在glnII系統發育拓撲結構中，菌株WLL3、WTT4、G3L1和WLL5與模式菌株R.radiobacterCCBAU 75204T聚在一起，遠離其余菌株形成獨立分支。這種不確定的系統發育地位也許是受到水平基因轉移現象的影響[16]。

研究表明基因型的改變會導致可遺傳的變異，然而由它所引起的表型改變是自然選擇的底物[41]。相同基因型的菌株表現出不同的表型特征，這可能是菌株在多個不同的環境中生存的結果[41]。本研究20個R.radiobacter菌株中有7種表型，說明同一個種的根瘤菌表型多樣性豐富[20]。表型的形成過程很復雜，這個過程會影響新的和有益的表型的首次產生，以及進化適應和創新的可能性[42]。表型的多樣性因此也會導致根瘤菌株對苜蓿品種共生適應性的差異。

注：同列不同小寫字母表示菌株處理間差異顯著(P< 0.05)。下同。

Note: Different lowercase letters within the same column indicate significant differences among strain treatments atP< 0.05 level. The same below.

表6 20株R. radiobacter菌株基于表型和共生模式的生物分型Table 6 Biotyping of 20 R. radiobacter isolates based on phenotype and symbiotic pattern

注：g表型聚類結果如圖4所示；h共生組合中的A、B、C分別表示接種苜蓿品種(甘農3號、甘農9號、隴中、清水、WL168HQ)的地上干重顯著高于CK、與CK差異不顯著、顯著低于CK；i羅馬數字代表由表型和共生模式決定的生物型。

Note:gPhenotype cluster was shown in Fig.4;hA, B, C in each symbiotic pattern indicates that the shoot dry weight of inoculated plants (in the order ofM.sativacv. Gannong No.3, Gannong No.9, Longzhong, Qingshui, and WL168HQ) was significantly higher than (P<0.05), not significantly different from (P>0.05), or significantly lower than (P<0.05) that of non-inoculated control plants, respectively;iRoman numerals refer to rhizobial biotype for strains determined based on the combined results of phenotype cluster and symbiotic pattern.

同一物種的根瘤菌株在5個苜蓿品種上共生效應表現存在差異。就地上干重而言，所有菌株接種WL168HQ苜蓿均與未接種處理CK差異不顯著(B)。菌株接種甘農3號、甘農9號、隴中和清水苜蓿地上干重顯著高于CK(A)、與CK差異不顯著(B)或顯著低于CK(C)，共生效應表現多樣。共生效應表現A的菌株在這4個苜蓿品種上表現出強的共生能力和適應性，為根瘤菌與苜蓿品種間的親屬關系提供了證據。共生適應性越強，親屬關系越近。6種共生模式代表菌株與苜蓿品種之間的6種親屬關系。共生模式BBBBB(9)表示菌株與5個苜蓿品種均無親屬關系；BBBAB(4)、BABBB(4)、ABBBB(1)和BBABB(1)表示菌株分別僅與清水、甘農9號、甘農3號和隴中苜蓿有親屬關系；模式BBAAB(1)代表菌株與隴中和清水苜蓿均有親屬關系。根瘤菌與苜蓿品種之間的親屬關系與菌株的寄主來源沒有關系。

同一種基因型根瘤菌中不同生物型的存在是菌株對不同豆科植物微環境適應性的體現[13]。同時，由于共生模式可能與共生的質粒、島嶼或其他攜帶共生決定因素的染色體有關，所以側基因轉移和共生信息基因丟失的假設也可以被用來解釋同一根瘤菌基因型中生物型的出現[13,16]。根瘤菌生物型由苜蓿品種和根瘤菌共同決定，這也使得對種內根瘤菌劃分成為可能。R.radiobacter基因型根瘤菌株在5個苜蓿品種上被劃分為14個生物型，每個生物型具有特定的表型特征和共生模式。不同苜蓿品種間根瘤菌生物型的種類有差異，WL168HQ、甘農3號和隴中苜蓿內根瘤菌生物型多樣性很豐富。甘農9號和清水苜蓿多樣性指數為0，多樣性單一，這可能與數量太少有關。就生物型內苜蓿品種的多樣性而言，生物型Ⅰ(H=0.69)包含來自甘農3號和WL168HQ苜蓿的菌株，生物型Ⅸ(H=0.35)包含來自隴中和WL168HQ苜蓿的菌株，這兩個生物型內苜蓿品種多樣性豐富。其余12個生物型(H=0)多樣性單一。根瘤菌生物型的劃分對與苜蓿品種匹配的根瘤菌資源的準確判斷具有指導意義。除了通過根瘤菌表型和與苜蓿品種的共生模式劃分根瘤菌生物型之外，應進一步利用根瘤菌和苜蓿品種基因組的研究結果加深對生物型的理解。

4 結論

同物種根瘤菌株根據表型和共生效應可以劃分為不同的生物型。WL168HQ、甘農3號和隴中苜蓿品種內生物型多樣性豐富，甘農9號和清水苜蓿生物型多樣性單一。