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檸檬皮中的檸檬苦素對青霉的抑菌活性和機理研究

2019-03-28 01:33:30王輝曾曉房馮衛華于立梅翟萬京白衛東曾令鋼
食品與發酵工業 2019年5期
關鍵詞:生長

王輝,曾曉房,馮衛華,于立梅, 翟萬京, 白衛東,曾令鋼

1(仲愷農業工程學院 輕工食品學院,廣東 廣州,510550) 2(廣東中興綠豐發展有限公司,廣東 河源,517000)

檸檬苦素是含呋喃的三萜類化合物,分子式為C26H30O8,是一種具有高度生物活性的植物次生代謝產物[1],包括檸檬苦素糖苷和檸檬苦素糖苷配體在內的一系列化合物,已經分離和鑒定的檸檬苦素類化合物約50多種[2]。檸檬苦素具有抗癌活性、抑制HIV、鎮痛抗炎作用、抗焦慮鎮靜作用、調節體內膽固醇水平、防止動脈粥樣硬化形成、防蟲殺蟲活性、抗氧化活性和抑菌活性等功能[3-4]。章斌等[5]的研究表明,檸檬苦素對細菌有較好的抑菌活性。檸檬苦素在柑橘類植物的種子和皮中含量非常豐富,但目前國內對檸檬的加工利用大部分局限于檸檬鮮果、檸檬果汁及檸檬精油等,也有少部分拓展到加工檸檬凍干片及檸檬護膚品等,因此每年產生大量檸檬果皮廢棄物[6]。如果檸檬果皮中的檸檬苦素能得到大量合理利用,提高其提取效率和使用途徑,將具有廣闊的工業前景。青霉廣泛分布于自然界中,少數青霉種類能引發人體與動物的各類疾病,而多數青霉能造成柑桔、蘋果、梨等水果的腐爛,青霉病是水果腐爛的最主要原因之一[7-8]。

因此,本文以青霉作為研究對象,探討檸檬苦素對青霉的抑菌活性以及進行抑菌機理的研究。為開發檸檬苦素作為天然抑菌劑應用于食品領域提供理論依據。

1 材料與方法

1.1 原料、試劑與儀器設備

檸檬皮粉,廣東中興綠豐發展有限公司;青霉(Penicilliumsp.)、根霉(Rhizopus)、黑曲霉(Aspergillusniger)由仲愷農業工程學院輕工食品學院微生物實驗室保藏;馬鈴薯葡萄糖瓊脂(PDA)培養基、馬鈴薯葡萄糖液體(PDB)培養基,廣東環凱微生物科技有限公司;檸檬苦素標準品(純度99.98%),濟寧天之藍生物科技有限公司;堿性磷酸酶試劑盒,上海酶聯生物科技有限公司;考馬斯亮藍-G250、蒽酮,北京索萊寶科技有限公司;福林試劑(分析純),Sigma公司;石油醚、二氯甲烷及無水乙醇等均為國產分析純。

掃描電子顯微鏡(JEOL-6360LV型)、冷凍干燥儀(JFD-320型)、離子濺射儀(JFC-1600型),日本電子株式會社;精密數字式電導率儀(DDS-18A型),上海日島科學儀器有限公司;凈化工作臺(SW-CJ-1FD型),蘇州安泰空氣技術有限公司;生化培養箱(PYX-280S-A型),韶關市科力實驗儀器有限公司;紫外分光光度計(UV-759型),上海橫搖科技有限公司;手提式壓力蒸汽滅菌器(DSX-280型),上海申安醫療器械廠;冷凍水浴恒溫振蕩器(THZ-82型),金壇市中大儀器廠;旋轉蒸發儀(XHRE-52A型),鄭州豫華儀器制造有限公司。

1.2 試驗方法

檸檬皮中檸檬苦素溶液的制備:按照課題組前期的提取方法[9],得到檸檬苦素結晶后,用少量15%乙醇溶解制成檸檬苦素溶液,-18 ℃保藏。

菌種活化和孢子懸浮液的制備:將保存在-20 ℃的青霉菌種在PDA培養基上活化2次后,用無菌生理鹽水將孢子洗脫,制成孢子含量為108個/mL的孢子懸浮液,4 ℃冰箱保藏,備用。

檸檬苦素抑制青霉活性的測定:最低抑菌濃度(minimum inhibibory concentration, MIC)和最小殺菌濃度(minimum fungicidal concentration, MFC)的測定參考王巍等[10]和任先偉等[11]的方法,并略作修改。分別采用試管法和平板法測定檸檬苦素的MIC和MFC。取10支無菌試管,采用倍半濃度稀釋法使8支試管中檸檬苦素質量濃度為10 000~78.125 μg/mL,1支試管為空白對照,不接種菌液,1支試管為菌液對照組,以等量無菌水代替檸檬苦素溶液。28 ℃培養2 d后,以試管中無青霉生長的最低檸檬苦素濃度為其MIC。MIC測定后,在無菌生長的試管中各取100 μL涂布于PDA平板培養基,28 ℃培養5 d后,以平板培養基上無菌生長的最低檸檬苦素濃度為MFC。

(1)

(2)

菌落間距/mm=菌落間距平均值-打孔器直徑

(3)

(4)

1.3 檸檬苦素抑制青霉的機理

對青霉菌絲體總糖含量的測定:將青霉孢子懸液接種于PDB培養基,28 ℃下150 r/min振蕩培養5 d后,加入質量濃度為0、156.25、312.5、625、1 250、2 500 μg/mL的檸檬苦素溶液,繼續振蕩培養3 d后,過濾得青霉菌絲,用蒸餾水沖洗菌絲數遍后用濾紙吸干。按照蒽銅比色法[14]測定菌絲含糖量。以加入等量15%乙醇作為對照。

對青霉胞外可溶性蛋白含量的測定:將青霉孢子懸液接種于PDB培養基,加入檸檬苦素使其最終濃度為MIC后,28 ℃恒溫培養,分別于0、8、16、24、32、40 h移取孢子懸浮液,1 000 r/min離心10 min,取上清液0.1 mL,采用考馬斯亮藍G-250 比色法[15]測定蛋白質的含量。以加入等量15%乙醇作為對照。

對青霉胞外堿性磷酸酶(AKP)活力的測定:將青霉孢子懸液接種于PDB培養基,加入檸檬苦素使其最終濃度為MIC后,于28 ℃下150 r/min振蕩孵育0、2、4、6、8、10 h后,1 000 r/min離心10 min,取上清液按照AKP試劑盒比色法測定和計算AKP活力[16]。以加入等量15%乙醇作為對照。

掃描電鏡觀察青霉菌絲體和孢子:取100 μL 106個/mL的青霉孢子懸浮液涂布在PDA平板培養基上,28 ℃恒溫培養48 h后,用打孔器制得直徑為4 mm的菌餅,將菌餅倒置在含有2倍MIC檸檬苦素的PDA培養基上,28 ℃培養48 h。用無菌的鑷子將平板上的菌絲刮下后,經固定、脫水、干燥、噴金后鏡檢[17]。以加入等量15%乙醇作為對照。

1.4 數據的統計與分析

每個測定均重復3次。結果表示為平均值±標準偏差。應用SPSS 22.0軟件(SPSS Inc., Chicago, IL, USA)中的One-Way ANOVA對所有數據進行方差分析,利用鄧肯式多重比較對差異顯著性進行分析。

2 結果與分析

2.1 檸檬苦素對3種霉菌的MIC和MFC影響

經試管法和平板法試驗測定,檸檬苦素對3種霉菌的MIC和MFC結果見表1。檸檬苦素對青霉的抑制活性最強,黑曲霉次之,根霉最弱。周夢嬌等[12]研究了中草藥對青霉的抑菌活性,其中抑菌活性最強的桂枝提取物對青霉的MIC和MFC為6.25和12.50 mg/mL,相比可知,檸檬苦素對青霉的抑菌活性很強。

表1檸檬苦素對霉菌的MIC及MFC單位:μg/mL

Table 1 The MIC and MFC of limonoids against mould

2.2 對青霉菌絲生長和孢子萌發的影響

由表2可知,檸檬苦素對青霉菌絲生長抑制的EC50值較小。由圖1可知,檸檬苦素質量濃度為78.125 μg/mL時,對菌絲生長的抑制率已達44.20%,對孢子萌發的抑制率僅為27.00%;但隨質量濃度升高至MIC(625 μg/mL)時,對孢子萌發的抑制率大于對菌絲生長的抑制率,并隨質量濃度升高,兩者差值越大。當檸檬苦素質量濃度達到2 500 μg/mL時,對青霉菌絲生長的抑制率和對青霉孢子萌發的抑制率分別為87.56%和98.31%,已基本完全抑制青霉孢子的萌發。因此,低濃度檸檬苦素對青霉菌絲生長具有較好的抑制效果,但高濃度檸檬苦素對青霉孢子萌發的抑制效果更佳。

表2 檸檬苦素對青霉的毒力回歸方程和EC50Table 2 Virulence regression equation and EC50 oflimonoids against Penicillium

圖1 檸檬苦素對青霉的菌絲生長和孢子萌發的抑制率Fig.1 Inhibition rate of limonoids on mycelium growth and spore germination of Penicillium

2.3 檸檬苦素抑制青霉的機理

2.3.1 對細胞膜通透性的影響

2.3.1.1 對菌絲體總糖含量的影響

當細胞膜膜結構遭到破壞時,細胞內容物包括糖類會發生外泄。菌絲體總糖含量的變化,可以反映細菌膜結構的完整性[18]。由圖2可知,隨檸檬苦素質量濃度增大,青霉菌絲體總糖含量顯著下降(P<0.05),但下降趨勢逐漸放緩。當檸檬苦素質量濃度為MIC(625 μg/mL)時,菌絲體內總糖僅為未受檸檬苦素溶液處理的59.39%;當檸檬苦素質量濃度為MFC(2 500 μg/mL)時,菌絲體內總糖為未受檸檬苦素溶液處理的45.73%。因此,檸檬苦素可以對青霉細胞膜造成破壞,使菌體內總糖外滲,且處理濃度越大,破壞性越強。以上結論與周夢嬌等[12]關于中草藥能破壞指狀青霉細胞結構,導致菌絲中總糖含量下降,從而達到抑菌效果的結論一致。

圖2 檸檬苦素對青霉菌絲總糖含量的影響Fig.2 Effects of limonoids on total sugar content ofPenicillium注:不同小寫字母表示差異顯著,P<0.05。

2.3.1.2 對胞外可溶性蛋白的影響

微生物生物膜的磷脂雙分子層內鑲嵌有大量蛋白質分子。當磷脂雙層遭到破壞時,膜上的蛋白質將流到細胞外,且胞內的蛋白質也會流出。測定菌液中的蛋白質含量,可以看出磷脂雙分子層是否被破壞[19]。由圖3可知,經檸檬苦素處理的青霉菌液中蛋白質含量顯著高于CK組(P<0.05)。檸檬苦素作用于青霉菌液后,作用時間為16 h內,尤其是前8 h,菌液中的蛋白質含量迅速上升,16 h后破壞作用趨于穩定。說明檸檬苦素在16 h時基本完成了對細胞膜破壞,導致蛋白質大量泄漏,影響青霉代謝活動的進行[20]。

圖3 檸檬苦素對青霉胞外可溶性蛋白質的影響Fig.3 Effect of limonoids on extracellular soluble protein of Penicillium

2.3.2 對細胞壁完整度的影響

真菌細胞壁是一層重要而堅韌的保護層,在細胞壁和細胞膜之間存在一種叫堿性磷酸酶(AKP)的物質,正常情況下無法在胞外檢測到該種酶的活性。一旦細胞壁遭到破壞,AKP將滲出至胞外。因此可以通過檢測胞外AKP活力的變化來說明細胞壁的透性是否發生改變[21-22]。由圖4可知,經MIC檸檬苦素處理的青霉培養液中AKP活力明顯高于CK組(P<0.05)。MIC檸檬苦素作用后4 h內,菌液中滲出的AKP活力顯著增強(P<0.05)。因此,檸檬苦素對青霉細胞壁的作用很快產生,4 h內基本破壞了青霉細胞壁,致使AKP酶外泄。

圖4 檸檬苦素對青霉胞外AKP酶活力的影響Fig.4 Effect of limonoids on the activity of extracellular AKP enzyme in Penicillium

2.3.3 對菌絲和孢子形態的影響

由圖5可知,經2倍MIC檸檬苦素(2×MIC)處理后的青霉形態與CK組相比發生較為明顯的變化。CK組的青霉孢子(圖5-A)呈現完整的球形,形態規則而飽滿;而2×MIC組的青霉孢子(圖5-B)欠飽滿,有明顯的皺縮和變形,外部附著溶出物。

圖5 青霉掃描電鏡圖Fig.5 Scanning electron microscopy (SEM) of Penicillium

CK組分生孢子梗、梗基、小梗和分生孢子(圖5-C)完好且生長旺盛;而2×MIC組的青霉(圖5-D)可觀察到,分生孢子生長不旺盛,小梗、分生孢子呈現明顯的凹陷,嚴重皺縮和變形,各部分均有明顯附著溶出物,可能是細胞凹裂而流出的物質。試驗中也觀察到青霉菌絲變細,其生長受到抑制,但不是很明顯。這與檸檬苦素對抑制青霉活性的研究結果以及對細胞壁、細胞膜的影響結果一致。

3 結論

檸檬苦素對青霉有強抑菌活性。其抑制青霉的MIC值和MFC值分別為625和2 500 μg/mL;抑制菌絲生長和孢子萌發的EC50值分別為85.618 μg/mL和246.755 μg/mL。高濃度檸檬苦素對青霉孢子的萌發有較強的抑制作用,并能有效抑制菌絲生長。因此,檸檬苦素可以作為青霉抑菌劑加以應用。

檸檬苦素在較短的時間內迅速破壞了青霉細胞膜和細胞壁的完整性,并在4 h和16 h基本完成對青霉細胞膜和細胞壁的破壞,造成大量內容物滲出;而且檸檬苦素的濃度越高,內容物滲出量越大,即破壞性越大。掃描電鏡觀察到2×MIC檸檬苦素處理后,青霉的分生孢子生長不旺盛;孢子和小梗、分生孢子呈現明顯的凹陷、嚴重皺縮和變形,有明顯胞內物質溶出;菌絲形態也發生了一定程度的變化。這些變化影響了青霉胞內的正常代謝,進而抑制了青霉的生長和繁殖。

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